Summary
Le nanoparticelle di ossido di ferro sono sintetizzati tramite una procedura sol gel non acquosa e rivestiti con molecole corte anioniche o polimeri. L'uso della magnetometria per monitorare l'incorporazione e le biotrasformazioni di nanoparticelle magnetiche all'interno delle cellule staminali umane è dimostrato utilizzando un magnetometro a campione vibrante (VSM).
Abstract
Le nanoparticelle magnetiche, fatte di ossido di ferro, presentano un interesse particolare per una vasta gamma di applicazioni biomediche per le quali sono spesso interiorizzate nelle cellule e poi lasciate all'interno. Una sfida è valutare il loro destino nell'ambiente intracellulare con metodologie affidabili e precise. Qui, introduciamo l'uso del magnetometro a campione vibrante (VSM) per quantificare con precisione l'integrità delle nanoparticelle magnetiche all'interno delle cellule misurando il loro momento magnetico. Le cellule staminali sono prima etichettate con due tipi di nanoparticelle magnetiche; le nanoparticelle hanno lo stesso nucleo prodotto attraverso una sintesi di sol gel non acquosa a base di microonde veloce ed efficiente e differiscono nel loro rivestimento: la molecola di acido citrico comunemente usata viene confrontata con l'acido poliacrilico. La formazione di sferoidi cellulari 3D viene quindi ottenuta tramite centrifugazione e il momento magnetico di questi sferoidi viene misurato in momenti diversi con il VSM. Il momento ottenuto è un'impronta digitale diretta dell'integrità delle nanoparticelle, con valori decrescenti indicativi di una degradazione delle nanoparticelle. Per entrambe le nanoparticelle, il momento magnetico diminuisce nel tempo della coltura rivelandone la biodegradazione. Viene mostrato anche un effetto protettivo del rivestimento in acido poliacrilico, rispetto all'acido citrico.
Introduction
C'è un maggiore interesse per le caratteristiche magnetiche delle nanoparticelle di ossido di ferro per una vasta gamma di applicazioni biomediche. La loro risposta alla risonanza magnetica li rende agenti di contrasto affidabili per la risonanza magnetica (MRI), un vantaggio nella medicina rigenerativa in cui le cellule etichettate con nanoparticelle magnetiche possono essere tracciate in vivo dopo l'impianto1. Usando campi magnetici, le cellule possono anche essere guidate a distanza; in questo modo, gli sferoidi cellulari2,3,anelli 4o fogli5 possono essere progettati magneticamente e anche da remotostimolati 6,una risorsa nello sviluppo di tessuti senza impalcature. La gamma di possibilità per queste nanoparticelle comprende anche i sistemi di somministrazione dei farmaci7,8 e il trattamento ipertermico magnetico e fotoindotto per uccidere le cellule cancerose9,10,11. Per tutte queste applicazioni, le nanoparticelle sono integrate nell'ambiente biologico mediante iniezione endovenosa o per internalizzazione diretta nelle cellule e vengono quindi lasciate all'interno, il che mette in discussione il loro destino intracellulare.
Le analisi in vivo hanno trasmesso una comprensione generale del destino delle nanoparticelle nell'organismo: dopo l'iniezione nel flusso sanguigno, vengono prima catturate principalmente dai macrofagi del fegato (cellule di Kupffer), milza e midollo osseo, vengono progressivamente degradate e si uniscono alla pozza diferro dell'organismo 12,13,14,15,16,17,18,19. Osservazioni qualitative sono possibili solo a causa della circolazione delle nanoparticelle in tutto l'organismo. Tipicamente, la microscopia elettronica a trasmissione (TEM) può essere utilizzata per osservare direttamente le nanoparticelle e la presenza di ferro negli organi può essere determinata tramite dosaggio. Più recentemente, il loro destino è stato valutato direttamente su un pool di cellule, il che significa in circuito chiuso senza fuga di ferro, consentendo una misurazione quantitativa delle loro biotrasformazioni alivello cellulare 20,21,22. Tali misurazioni sono possibili attraverso l'analisi delle proprietà magnetiche delle nanoparticelle strettamente legate alla loro integrità strutturale. La magnetometria a campione vibrante (VSM) è una tecnica in cui il campione viene vibrato periodicamente in modo che la misurazione della bobina del flusso indotto fornisca il momento magnetico del campione al campo magnetico applicato. Tale rilevamento sincrono consente una misurazione rapida, che è una risorsa per determinare i momenti magnetici di un gran numerodi campioni 20,21,22,23. La firma magnetica macroscopica recuperata da VSM fornisce quindi una panoramica quantitativa dell'intero campione biologico direttamente correlato alle dimensioni e alla struttura delle nanoparticelle. In particolare, fornisce il momento magnetico alla saturazione (espresso in emu) dei campioni, che è una quantificazione diretta del numero di nanoparticelle magnetiche presenti nel campione, rispettivamente alle loro specifiche proprietà magnetiche.
È stato dimostrato che l'elaborazione intracellulare delle nanoparticelle magnetiche è strettamente legata alle loro caratteristiche strutturali20. Queste funzionalità possono essere controllate tramite protocolli di sintesi ottimali. Ogni protocollo presenta vantaggi e limitazioni. Le nanoparticelle di ossido di ferro sono comunemente sintetizzati in soluzioni acquose attraverso la coprecipitazione di ioni diferro 24. Per superare i limiti della polidispersità delle dimensioni delle nanoparticelle, sono stati sviluppati altri metodi di sintesi come i metodi sol-gel mediati in poliolo25. Approcci non acquosi per decomposizione termica portano alla produzione di nanoparticelle di ossido di ferro molto ben calibrate26. Tuttavia, l'uso di enormi quantità di tensioattivi come l'oleylamina o l'acido oleico complica la loro funzionalizzazione e il trasferimento di acqua per applicazioni biomediche. Per questo motivo, sintetizzano tali nanoparticelle magnetiche attraverso una via sol gel non acquosa che porta ad alta cristallinità, purezza e riproducibilità27. Questo protocollo produce nanoparticelle di dimensioni ben controllate che possono essere sintonizzate attraverso la variazione ditemperatura 28. Tuttavia, la via sol-gel non acquosa assistita da microonde ha un limite di dimensione superiore delle nanoparticelle ottenute di circa 12 nm. Questa procedura non sarebbe adattata per applicazioni che utilizzano particelle ferromagnetiche a temperatura ambiente. Oltre alla sintesi del nucleo, un'altra caratteristica principale da considerare è il rivestimento. Situato sulla superficie della nanoparticella, il rivestimento agisce come una molecola di ancoraggio, aiutando l'internalizzazione mirata delle nanoparticelle, o può proteggere la nanoparticella dalla degradazione. Poiché l'alcol betilico agisce come fonte di ossigeno e ligando allo stesso tempo, le nanoparticelle nude sono prodotte senza la necessità di ulteriori tensioattivi o ligandi. Le nanoparticelle vengono quindi facilmente funzionalizzate in superficie dopo la sintesi senza un processo di scambio di tensioattivi.
Qui vengono valutati due tipi di nanoparticelle che possiedono lo stesso nucleo e differiscono nel rivestimento. Il nucleo è sintetizzato utilizzando una tecnica a microonde veloce e altamente efficiente. I due rivestimenti confrontati sono costituiti da acido citrico, uno dei più utilizzati come agente di rivestimento inapplicazioni biomediche 29,30,e acido poliacrilico (PAA), un rivestimento polimerico con un alto numero di funzioni chelating. Le misurazioni della magnetometria VSM vengono quindi utilizzate prima per quantificare l'assorbimento delle nanoparticelle da parte delle cellule, e poi come valutazione diretta dell'integrità strutturale della nanoparticella all'internalizzazione nelle cellule staminali. I risultati dimostrano che la concentrazione di incubazione influisce sull'assorbimento delle nanoparticelle e che il rivestimento influenza la loro degradazione, con il gran numero di molecole di ancoraggio di PAA che proteggono il nucleo dalla degradazione.
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Protocol
1. Sintesi di nanoparticelle magnetiche
- Sintesi di base - assistita da microonde
- Sciogliere 400 mg di acetilacetonato di ferro (III) (>99,9%) in 10 mL di alcol bendilico (BA, 99,8%) all'interno di una fiala di vetro monocromatico da 30 mL.
- Aumentare la temperatura della sospensione da 25 a 250 °C in 20 min (ad una velocità di 11,25 °C/min) e mantenerla a 250 °C per 30 minuti utilizzando un reattore a microonde.
- Trasferire le nanoparticelle risultanti sospese in alcol bendilico in una fiala di vetro e separare le nanoparticelle usando un magnete al neodimio per 30 minuti.
- Lavare il precipitato nella precedente fiala di vetro da 100 mL con 10 mL di diclorometano, 1 M idrossido di sodio, etanolo, acqua pH 7 (tre volte) utilizzando un magnete al neodimio per 5 minuti ogni passo per pellettizzare le nanoparticelle e rimuovere il supernatante.
- Regolare la sospensione della nanoparticella in acqua in pH 2 usando 1 M di acido cloridrico, quindi centrifugare in filtri ultracentrifali da 100 kDa a 2.200 x g per 10 min.
- Rimuovere il filtrato, aggiungere 12 mL di acidocloridrico da 10-2 M alla soluzione di nanoparticelle e centrifugare in filtri ultracentrifali da 100 kDa a 2.200 x g per 10 min (tre volte). Quindi diluire la soluzione di nanoparticelle entro 10 mL di acido cloridrico10-2 M prima del rivestimento.
- Rivestimento
- Diluire 175 mg di acido citrico e acido poliacrilico in acqua a pH 2 in una fiala di vetro da 100 mL e regolare il pH a 2 con una soluzione di acido cloridrico da 1 M.
- Aggiungere la dispersione acquosa delle nanoparticelle da 10 mL alla soluzione della molecola di rivestimento, corrispondente a un rapporto di massa di 5 tra la molecola di rivestimento e le nanoparticelle. Agitare per 2 ore sotto agitazione magnetica a temperatura ambiente.
- Dopo la reazione, regolare il pH a 7 con 1 M idrossido di sodio.
- Centrifugare la soluzione di nanoparticelle 3 volte con acqua deionizzata (DI) in filtri ultracentrifali da 100 kDa a 2.200 x g per 10 min; rimuovere il filtrato e diluire la soluzione di nanoparticelle in 12 mL di acqua DI.
2. Coltura ed etichettatura magnetica delle cellule staminali
- Coltura delle cellule staminali mesenchimali umane (MSC) in un mezzo completo di crescita delle cellule staminali mesenchimali (MSCGM) a 37 °C e al 5% di CO2. Quando le cellule sono al 90% di confluenza, aggiungere 10 ml di tripsiderina-EDTA pre-riscaldata a 37 °C per pallone da 150 cm² e lasciare per 2-3 minuti per staccare le cellule.
- Per sapere quando le cellule sono staccate, osservale con un microscopio a campo luminoso. Rimospendare le celle staccate in MSCGM e dividerle in quattro contenitori da 150 cm². Amplificare le cellule in questo modo fino al passaggio da 4 a 5.
- Preparare la soluzione di nanoparticelle magnetiche per l'etichettatura cellulare: disperdere la concentrazione scelta di nanoparticelle di ossido di ferro in mezzo roswell park memorial institute privo di siero (RMPI-1640) senza glutammina. L'RPMI è usato per l'incubazione di nanoparticelle (e i relativi passaggi di risciacquo) in quanto ha una forza ionica inferiore rispetto al DMEM e previene meglio gli eventi di aggregazione delle nanoparticelle.
- Quando le cellule sono al passaggio 4 o 5 e 90% confluenti, rimuovere il mezzo MSCGM, sciacquare le cellule con RPMI senza siero (senza glutammina) e aggiungere 10 ml di soluzione di nanoparticelle di ossido di ferro per pallone da coltura 150 cm2, che è il volume minimo necessario per coprire tutte le cellule.
- Incubare a 37 °C e 5% CO2 per 30 min e quindi scartare la soluzione di nanoparticelle. Lavare una volta con RPMI-1640 senza siero (senza glutammina) e incubare con il Mezzo aquila modificato (DMEM) di Dulbecco integrato con FBS al 10% e 1% di penicillina-streptomicina (25 mL per pallone da 150 cm2) durante la notte a 37 °C e 5% di CO2 per consentire una completa internalizzazione delle nanoparticelle.
3. Formazione di sferoidi delle cellule staminali
- Preparare al momento un terreno di coltura cellulare-sferoide composto da glucosio alto DMEM con L-glutammina integrato con 50 μM L-acido ascorbico 2-fosfato, 0,1 μM di desametasone, 1 mM di piruvato di sodio, 0,35 mM L-prolina e 1% di integratore di coltura universale contenente insulina, transferrina umana e acido selenoso (ITS-Premix).
- Staccare gli MSC magnetici aggiungendo 10 mL dello 0,05% di tripsiderina-EDTA pre-riscaldata a 37 °C per pallone da 150 cm2 per 2-3 minuti. Quando le cellule sono staccate, inattivare immediatamente la tripparina aggiungendo 1/3 del volume di DMEM integrato con FBS al 10% e 1% di penicillina-streptomicina pre-riscaldata a 37 °C.
- Centrifugare le cellule dissociate a 260 x g per 5 minuti, aspirare il mezzo e sospendere di nuovo le cellule in un piccolo volume (meno di 1 ml per pallone da 150 cm²) di mezzo di coltura cellulare-sferoide come avere 200.000 cellule in circa 50 μL di mezzo. Contare il numero di cellulare usando un emocitometro e regolare il volume, se necessario.
- Aggiungere 1 ml di mezzo di coltura cellulare-sferoide appena preparato in un tubo di centrifuga conico sterile da 15 ml e aggiungere il volume di soluzione rimorsizzata corrispondente a 200.000 cellule.
- Centrifuga queste cellule etichettate magneticamente a 180 x g per 3 minuti come la formazione di un pellet cellulare nella parte inferiore del tubo e mantieni il supernatante, che è il mezzo di coltura cellulare.
- Aprire leggermente i tubi per consentire lo scambio d'aria e l'incubazione a 37 °C con 5% di CO2 per un massimo di 21 giorni, tempo di coltura lungo il quale le cellule formano una struttura 3D coesa che si traduce in uno sferoide completamente formato. Cambiare il mezzo due volte a settimana.
- In alcuni giorni, lavare gli sferoidi due volte con tampone cacodilato composto da 0,2 M cacodilato diluito in acqua demineralizzata e fissarli utilizzando il 2% di glutaraldeide in tampone cacodilato da 0,1 M diluito in acqua distillata per 30 minuti a temperatura ambiente. Conservare gli sferoidi fissi in PBS fino a quando non vengono utilizzati per la misurazione VSM o l'imaging TEM. Questa fase di fissazione interrompe tutti i processi biologici e consente la conservazione a lungo termine.
4. Quantificazione delle nanoparticelle magnetiche in soluzione e in cellulo utilizzando un magnetometro a campione vibrante (VSM)
- Posizionare un dato volume di soluzione magnetica di nanoparticelle (massimo 10 μL) o una singola cellula-sferoide nel portacampioni specificamente progettato per adattarsi al VSM.
- Inserire l'esempio nel VSM e cercare l'offset del campione. Posizionare il campione nella posizione corrispondente al massimo di magnetizzazione.
- Eseguire la prima misurazione a basso campo magnetico (tra -1500 Oe e +1500 Oe) con una velocità di 20 Oe/s.
- Eseguire una seconda misurazione ad alto campo magnetico (tra -30 000 Oe e +30 000 Oe) con una velocità di 200 Oe/s.
5. Analisi della microscopia elettronica a trasmissione (TEM)
- Per le soluzioni di nanoparticelle, depositare 10 μL della soluzione acquosa su una griglia di rame rivestita di carbonio e lasciarla asciugare a temperatura ambiente.
- Per le nanoparticelle internalizzate nelle cellule, confrontare gli sferoidi cellulari fissi con estratto di tè Oolong (OTE) allo 0,5% diluito in tampone cacodilato da 0,1 M, post fissare con l'1% di tetrossido di osmio contenente l'1,5% di cianoferrato di potassio e quindi disidratarsi nei bagni di etanolo graduati, inclusi in Epon. Tagliare le ultrasezioni di 70 nm e depositarle su griglie di bottaio.
- Scatta immagini usando un microscopio elettronico a 80 kV con un ingrandimento da 1k per l'osservazione di intere cellule a 40k per l'osservazione di compartimenti endosomiali.
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Representative Results
Utilizzando la sintesi assistita da microonde, le nanoparticelle magnetiche con una dimensione del nucleo monodispersa da 8,8 ± 2,5 nm sono prodotte e rivestite con citrato o PAA(Figura 1A). Le cellule staminali vengono quindi incubate con queste nanoparticelle disperse nel mezzo di coltura ad una data concentrazione per 30 minuti, con conseguente endocitosi e confinamento all'interno degli endosomi cellulari (Figura 1B). Le cellule staminali magnetiche vengono quindi sospese in mezzo, centrifugate e il pellet cellulare formato viene coltivato per un massimo di 21 giorni(Figura 1C). Gli sferoidi ottenuti sono fissi, come fermare i processi biologici, e conservati in PBS fino a quando non vengono misurati tramite VSM.
In primo luogo, il momento magnetico della soluzione di nanoparticella viene misurato utilizzando il VSM: 10 μL della dispersione acquosa della nanoparticella contenente 7 μg di ferro, e la curva ottenuta viene visualizzata nella figura 2A. A causa della presenza di acqua in questa soluzione, e del portacampioni, un segnale diamagnetico viene catturato in aggiunta al segnale superparamagnetico delle nanoparticelle. Una costante diamagnetica (Mdia) corrispondente alla pendenza della seconda parte della curva può essere misurata, come mostrato nella Figura 2A, e questa costante può essere sottratta come ottenere il momento magnetico delle nanoparticelle solo(campione M = M - Mdia). La magnetizzazione della saturazione delle nanoparticelle (Ms)può quindi essere estratta; corrisponde a 518 μemu per la dispersione acquosa, il che significa che la soluzione è a 74 emu/g di ferro (Fe) corrispondente a 52 emu/g di nanoparticelle (Fe3O4).
Il momento magnetico degli sferoidi cellulari può essere ottenuto in modo simile. In questo caso, una cellula-sferoide (composta da 200.000 cellule) viene inserita nel portacampioni, posizionata nel VSM e misurata (Figura 2B). I valori del momento magnetico ottenuti sono qui molto più bassi di quelli della soluzione iniziale di nanoparticelle; tuttavia, rimangono all'interno dell'intervallo di rilevamento. La magnetizzazione di saturazione di questo particolare campione è di 69 μemu. Inoltre, questo sferoide contiene 1,3 μg di nanoparticelle (6,7 pg di nanoparticelle per cellula), coerentemente con il valore di saturazione a 52 emu/gFe3O4. Questo valore può quindi essere usato per determinare la quantità di nanoparticelle nei campioni cellulari. Nella figura 2C, gli sferoidi corrispondenti alle cellule etichettate con tre concentrazioni di nanoparticelle rivestite di citrati vengono misurati un giorno dopo l'etichettatura. I risultati mostrano chiaramente che l'assorbimento delle nanoparticelle dipende dalla concentrazione di incubazione, con concentrazioni di 0,125, 0,25 e 0,5 mM che portano ad assorbimenti rispettivamente di 0,3, 0,7 e 1,3 μg di ferro per sferoide, vale a dire rispettivamente 1,3, 3,3 e 6,7 pg di ferro per cellula.
L'attenzione è stata portata sull'importanza del rivestimento superficiale, che interagisce direttamente con l'ambientebiologico 20. Qui sono stati prodotti due rivestimenti: un rivestimento a citrato, comunemente usato per applicazioni biomediche, e un rivestimento PAA, con un numero maggiore di funzioni chelating. Le cellule staminali sono etichettate con questi due tipi di nanoparticelle e centrifugate come la formazione di un pellet cellulare che diventa quindi una cellula-sferoide coesa (Figura 3A). Il magnetismo di questi sferoidi cellulari è misurato tramite VSM al giorno 1 e al giorno 21 (Figura 3B e Figura 3C). I risultati dimostrano una diminuzione del magnetismo nei 21 giorni di coltura, indicando la biodegradazione delle nanoparticelle, questa degradazione è più importante per le nanoparticelle rivestite di citrati (Figura 3B) rispetto a quelle rivestite di PAA(figura 3C). Le immagini TEM confermano la degradazione delle nanoparticelle e mostrano l'aspetto di punti grigio chiaro più piccoli (6 nm di dimensioni), tipici della ferritina carica di ferro. Si possono anche osservare alcune nanoparticelle rimaste intatte, in particolare con il rivestimento PAA.
Figura 1: Sintesi assistita da microonde di nanoparticelle di ossido di ferro (Fe3O4),loro internalizzazione nelle cellule staminali e successiva coltura delle cellule come sferoidi. (A) Schema dei vari passaggi della sintesi delle nanoparticelle. In primo luogo, il nucleo viene sintetizzato tramite una procedura sol gel non acquosa. La molecola di rivestimento, citrato (Cit) o acido poliacrilico (PAA), viene quindi innestata sulla superficie del nucleo di ossido di ferro. Un'immagine TEM rappresentativa mostra le nanoparticelle sintetizzati con un rivestimento di citrato. (B) Schema dell'internalizzazione della nanoparticella all'interno delle cellule staminali, mostrando le nanoparticelle confinate negli endosomi all'internalizzazione. Immagini TEM rappresentative mostrano anche le nanoparticelle rivestite di citrato e PAA all'interno delle cellule, confinate negli endosomi. (C) Schema della formazione di sferoidi delle cellule staminali. Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2: Misurazione del momento magnetico dei campioni tramite VSM. (A) 10 μL di nanoparticelle disperse in una soluzione acquosa sono misurati tramite il VSM. Il segnale ottenuto rappresenta il momento magnetico di questa soluzione di nanoparticelle in funzione del campo magnetico (B). Il diamagnetismo proveniente dalla presenza di acqua e il detentore del campione possono quindi essere misurati in quanto corrisponde alla pendenza della seconda parte della curva e sottratti come ottenere solo il momento magnetico delle nanoparticelle. È quindi possibile determinare il momento magnetico alla saturazione (Ms). (B) Il momento magnetico degli sferoidi cellulari può essere ottenuto in modo analogo; In questo caso una singola cellula-sferoide viene misurata in un dato periodo di tempo. (C) Curve di sferoidi corrispondenti a cellule etichettate con nanoparticelle rivestite di citrati a tre concentrazioni indipendenti di 0,125 mM (arancione), 0,25 mM (grigio) e 0,5 mM (blu). Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3: Quantificazione della degradazione della nanoparticella magnetica nel cellulo tramite VSM. (A) Al momento dell'etichettatura cellulare con nanoparticelle magnetiche, un pellet di cellule è formato dalla centrifugazione (giorno 0). Le cellule formano quindi una struttura coesiva che si traduce in uno sferoide cellulare facile da maneggiare che può essere mantenuto in coltura senza perdita cellulare per lunghi periodi di tempo (mesi). (B, C) Nel presente documento, due tipi di nanoparticelle magnetiche, rivestite con citrato (B) o PAA (C), sono internalizzate nelle cellule staminali e le cellule sono coltivate come sferoidi per un massimo di 21 giorni. Il magnetismo degli sferoidi coltivati per 1 giorno (curve arancioni) e 21 giorni (curve grigie) viene misurato con il VSM, con una diminuzione del magnetismo che indica una degradazione delle nanoparticelle. Le immagini TEM rappresentative scattate al giorno 21 mostrano punti grigio chiaro di circa 6 nm di dimensioni all'interno degli endosomi e del citoplasma delle cellule, dimensioni e forma tipiche della ferritina, la proteina di stoccaggio del ferro (frecce nere). Si possono anche osservare alcune nanoparticelle intatte, principalmente per le nanoparticelle rivestite di PAA (freccia marrone). Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
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Discussion
Utilizzando una sintesi rapida ed efficiente a microonde, le nanoparticelle magnetiche possono essere facilmente sintetizzati, con dimensioni controllate e ulteriormente rivestiti con date molecole. Un passo fondamentale è quello di stoccare il sale di ferro e l'alcol benzile sotto vuoto per mantenere una piccola dispersione di dimensioni. L'alcol benzile agisce sia come solvente che come ligando allo stesso tempo permettendo di ottenere direttamente ossido di ferro nudo calibrato senza la necessità di ligandi aggiuntivi. Dopo il trasferimento delle nanoparticelle nell'acqua, le nanoparticelle magnetiche nude possono essere facilmente rivestite con una grande varietà di ligandi. Questo rivestimento conferisce proprietà interagenti inter-nanoparticelle e nanoparticelle che possono influenzare la loro internalizzazione cellulare, un parametro che deve essere strettamente controllato in quanto è necessaria un'internalizzazione minima per applicazioni biomediche mentre un'internalizzazione troppo elevata potrebbe essere dannosa per le cellule e potenzialmente originare eventi citotossici31. La magnetometria è un potente strumento per valutare questa internalizzazione così come il destino delle nanoparticelle magnetiche nel cellulo. Dopo l'incorporazione di nanoparticelle magnetiche nelle cellule staminali, gli sferoidi possono essere formati attraverso una semplice centrifugazione seguita da coltura in un mezzo che ferma la proliferazione delle cellule e guida la produzione di matrici extracellulari. Le cellule diventano altamente coese e iniziano a creare un tessuto. Gli sferoidi sono quindi molto facili da maneggiare e possono essere coltivati per lunghi periodi di tempo (mesi) che consentono il tracciamento a lungo termine del destino delle nanoparticelle magnetiche in un ambiente biologico. Fermando la divisione cellulare, non c'è diluizione delle nanoparticelle da madre a cellula figlia; inoltre, è stato verificato che, con questo modello cellula-sferoide, non c'è fuga di ferro in un mesedi coltura 21,22,23. Di conseguenza, una diminuzione dei valori del magnetismo può corrispondere solo a una degradazione delle nanoparticelle e non all'esportazione di ferro dalle cellule.
Il magnetismo degli sferoidi cellulari è qui misurato tramite VSM che fornisce una quantificazione rapida e precisa. Altri metodi sono stati esplorati anche per misurare il magnetismo cellulare, come l'uso di un dispositivo di interfaccia superconduttore (SQUID), una macchina tipicamente più precisa del VSM con una sensibilità intorno a 10-7 emu rispetto a 10-6 emu per il VSM, ma il costo operativo èpiù alto di 32. La sensibilità del VSM che consente misurazioni della dose magnetica di ferro inferiore a 2 pg/cella nella configurazione sperimentale è sufficientemente precisa in quanto dosi di ferro inferiori a 2 pg/cella sarebbero troppo basse per le applicazioni mirate, come l'attrazione cellulare verso un magnetico per scopi di guida cellulare e ingegneria tissutale. Sia la magnetometria VSM che la magnetometria SQUID, oltre a consentire una quantificazione del magnetismo cellulare, possono fornire ulteriori dettagli sulle caratteristiche delle nanoparticelle. Attraverso l'analisi del segnale ottenuto, la dimensione delle nanoparticelle può essere detratta22,23 e può essere ottenuta anche una nozione generale delle loro caratteristiche magnetiche, l'isteresi e la coercitività dei nanomateriali possono essere rivelate ad esempio. Esistono anche approcci alternativi alla magnetometria, come la magnetoforesi che consiste nel misurare la velocità delle singole cellule quando sono attratte verso un magnete e il magnetismo delle singole cellule viene estrapolato33,34. Il magnetismo a livello di singola cellula può essere ottenuto in questo modo; tuttavia, non è possibile determinare ulteriori caratteristiche delle nanoparticelle. Inoltre, un piccolo sensore magnetico che fornisce un segnale proporzionale al magnetismo del campione è stato recentemente utilizzato con un modello di sferoide cellulare simile. Questo sensore magnetico ha permesso il tracciamento della biodegradazione delle nanoparticelle magnetiche in tempo reale, continuamente, per 7 giorni35. Tuttavia, il segnale di questo sensore magnetico non può essere tradotto direttamente in un momento magnetico in quanto dipende dalle dimensioni delle nanoparticelle. Per questo motivo, è necessario eseguire una curva di calibrazione per ogni progetto di nanoparticella, curva che può essere realizzata utilizzando il VSM.
Le misurazioni effettuate nel presente documento con il VSM dimostrano una progressiva degradazione delle nanoparticelle magnetiche nell'ambiente cellulare, indicata da una diminuzione del magnetismo. Dimostrano anche che uno stesso nucleo rivestito con molecole diverse viene degradato a velocità variabili a seconda del rivestimento. Quando si confronta un PAA e un rivestimento di citrato, PAA porta a una maggiore protezione del nucleo alla degradazione, molto probabilmente a causa del suo forte ancoraggio al nucleo magnetico20. Il destino delle nanoparticelle magnetiche nell'ambiente intracellulare è valutato sugli sferoidi cellulari; tuttavia, il metodo non si limita ad esso. In effetti, può essere estrapolato alle sospensioni cellulari, che è già stato utilizzato per valutare l'effetto della differenziazione delle cellule staminali sul destino delle nanoparticelle22. Ha rivelato che, a seconda della via di differenziazione, le nanoparticelle magnetiche vengono elaborate in modo diverso dalle cellule, con, in alcuni casi, la neocristallizzazione del ferro alla sua dissoluzione. La magnetometria VSM è quindi uno strumento utile per esplorare ulteriormente l'influenza delle caratteristiche sia delle nanoparticelle che delle cellule sulla lavorazione intracellulare dei nano-oggetti di ossido di ferro.
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Disclosures
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Acknowledgments
Questo lavoro è stato sostenuto dall'Unione europea (progetto ERC-2014-CoG MaTissE #648779). Gli autori vorrebbero riconoscere la piattaforma di caratterizzazioni fisico-chimiche CNanoMat dell'Università di Parigi 13.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.05% Trypsin-EDTA (1x) | Life Technologies | 25300-054 | |
| Benzyl alcohol for synthesis | Sigma Aldrich | 8.22259 | |
| Dexamethasone | Sigma | D4902 | Prepare a 1 mM stock solution diluted in Ethanol 100% and store at -20°C |
| Dichloromethane ≥99% stabilised, GPR RECTAPUR | VWR Chemicals | 23367 | |
| DMEM with Glutamax I | Life Technologies | 31966-021 | No sodium pyruvate, no HEPES |
| Ethanol absolute | VWR | 20821.310 | |
| Fetal Bovine Serum | Life Technologies | 10270-106 | |
| Formalin solution 10% neutral buffered | Sigma | HT5012 | |
| Hydrochloric acid, 1.0N Standardized Solution | Alfa Aesar | 35640 | |
| Iron(III) acetylacetonate (> 99.9%) | Sigma Aldrich | 517003 | |
| ITS Premix Universal Culture Supplement (20x) | Corning | 354352 | |
| L-Ascorbic Acid 2-phosphate | Sigma | A8960 | Prepare a fresh concentrated solution (25 mM) diluted in distilled water |
| L-Proline | Sigma | P5607 | Prepare a 175 mM stock solution diluted in distilled water and store at 4°C |
| Mesenchymal Stem Cell (MSC) | Lonza | PT-2501 | |
| Monowave glass vial | Anton Paar | 82723_us | |
| Microwave reactor | Anton Paar | Monowave 300 | |
| MSCGM BulletKit medium | Lonza | PT-3001 | For the complete medium, add the provided BulletKit (containing serum, glutamine and antibiotics) to the MSCGM medium |
| PBS w/o CaCl2 w/o MgCl2 | Life Technologies | 14190-094 | |
| Penicillin (10.000U/mL)/Streptomicin (10.000µg/mL) | Life Technologies | 15140-122 | |
| Poly(acrylic acid, sodium salt) | Sigma Aldrich | 416010 | MW = 1200 g/mol |
| RPMI medium 1640, no Glutamine | Life Technologies | 31870-025 | No sodium pyruvate, no HEPES |
| Sodium hydroxide, 1.0N Standardized Solution | Alfa Aesar | 35629 | |
| Sodium pyruvate solution 100mM | Sigma | S8636 | |
| Sterile conical centrifuge tube | Falcon | 352097 | 15 mL tubes |
| Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red | Thermo Fisher Scientific | 25300054 | |
| Tri-sodium citrate | VWR | 33615.268 | Prepare a 1 M stock solution diluted in distilled water and store at 4°C |
| Tri-Sodium Citrate Dihydrate, Certified AR for Analysis | Sigma Aldrich | 10396430 | |
| Ultra centrifugal filter | Amicon | AC S510024 |
References
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