Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Chemistry

マウス網膜色素上皮の光誘発電気応答を記録するための直接結合電解電解(DC-ERG)

doi: 10.3791/61491 Published: July 14, 2020
* These authors contributed equally

Summary

ここでは、2000年代初頭にマルモラシュタイン、ピーチー、および同僚が最初に記述したDC-ERGとして知られている技術を用いて、マウスにおける網膜色素上皮(RPE)の光誘発電気応答を記録する方法を提示する。

Abstract

網膜色素上皮(RPE)は、網膜と絨毛キャピラリスの間に戦略的に位置する細胞の特殊な単層であり、光受容体の全体的な健康と構造的完全性を維持します。RPEは、極偏光され、アピカルに、そして基底位置の受容体またはチャネルを示し、水、イオン、代謝物、およびいくつかのサイトカインを分泌するベクター輸送を行う。

インビボでのRPE機能の非侵襲的な測定は、直接結合されたERG(DC-ERG)を使用して行うことができます。DC-ERGの背後にある方法論は、Marmorstein、Peachey、およびカスタマイズされた刺激記録システムを使用して、後に市販のシステムを使用して実証された研究グループによって開拓されました。DC-ERG技術は、ハンクの緩衝塩溶液(HBSS)で満たされたガラス毛細血管を使用して、感光体活性によるレリンタル空間の光誘発濃度変化から引き出されるRPEの遅い電気応答を測定する。長時間の光刺激とDC-ERG記録の長さは、それがドリフトやノイズに対して脆弱になり、使用できる録音の低収率をもたらします。ここでは、HBSSと電極ホルダーの外気に起因する気泡を減らす/除去するために真空圧を使用することにより、ノイズを低減しながら、記録の安定性を向上させる迅速で信頼性の高い方法を提示します。さらに、電源ラインのアーチファクトは、電圧レギュレータ/パワーコンディショナを使用して減衰されます。市販のERGシステムに必要な光刺激プロトコルと、C波、高速振動、光ピーク、オフレスポンスのDC-ERG成分の分析に必要な光刺激プロトコルが含まれています。記録の改善された容易さおよび急速な分析のワークフローのために、この簡易な議定書はRPE機能、疾患の進行、および薬理学的介入の評価の加齢に関連する変化を測定するのに特に有用である。

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

網膜色素上皮(RPE)は眼の後部セグメントに並び、網膜恒常性1を維持するために重要な機能を発揮する特殊な細胞の単層である。RPEは、可視周期2と呼ばれるプロセスで光子捕捉視覚顔料を再生することによって、小屋外セグメント先端3の日経食類に参加することによって、光受容体と絨毛キャピラリ4,5との間の栄養素および代謝産物の輸送において光受容体を支持する。RPE機能の異常は、加齢黄斑変性症6、レーバーの先天性アマウロシス7、8およびベストビテッラ状黄斑ジストロフィー9のような多数のヒト網膜疾患の根下にある。ドナー眼組織は研究目的のためだけに得ることがしばしば困難であるので、遺伝子組み換えのある動物モデルは、10,11の疾患の発症を研究する別の方法を提供することができる。さらに、CRISPR cas9技術の出現と応用により、ゲノム導入(ノックイン)または欠失(ノックアウト)が、以前の遺伝子標的化技術12の限界を超える単純なワンステッププロセスで可能になりました。新しいマウスモデル13の可用性のブームは、非侵襲的にRPE機能を評価するために、より効率的な記録プロトコルを必要とする。

RPEの光誘発電気応答の測定は、直接結合された電気レティノグラム(DC-ERG)技術を用いて達成することができる。この感光体(a-wave)およびバイポーラ(b波)細胞応答を測定する従来のERG記録と組み合わせて使用すると、DC-ERGは、RPEの応答特性が、レチナル変性15、16、17、またはRPE機能障害が感光体喪失に先行するかどうかでどのように変化するかを定義することができる。このプロトコルは、最初にDC-ERG技術16、18、19、20を開発したMarmorstein、Peachey、および同僚の仕事から適応した方法を記述し再現性と使いやすさを改善する。

DC-ERG記録は、ノイズの中断や導入がデータの解釈を複雑にする可能性がある、取得時間(9分)が長いため、実行が困難です。この新しい方法の利点は、ベースラインが短時間で定常状態に達し、動物が麻酔から早期に目覚め、毛細血管の気泡形成を起こしにくい可能性を減らすことです。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

このプロトコルは、国立眼科研究所の動物ケアおよび使用委員会によって承認された動物研究プロトコルで概説されている動物ケアガイドラインに従います。

1. DC-ERG用光刺激プロトコルのインポート

注: 以下の指示に従って、DC-ERG の光刺激プロトコルを ERG システム ソフトウェア () にインポートします。プロトコルは0.5分前刺激間隔で構成され、その後に7分間の光のステップ(10 cd/m2)が続き、1.5分のポスト刺激間隔で終了する。10 cd/m2の光強度(1ログ10 cd/m2)は、WTマウス18,21におけるDC-ERGの全成分に対する最大応答の約半分を呼び起こすため選択された。c波および高速振動は、これらの電気応答の起源が十分に特徴付けられるため特に興味深く、インビトロRPEモデル(例えば、iPSC-RPE)で分離および研究することができる。他の光強度の適用は、追加の情報を抽出することができ、例えば、オフ応答は、明るい光刺激で極性の逆転を受け、この反転が起こる強度で違いを示す可能性があります。ユーザーは、自分の裁量で光強度の設定を自由に変更することができます。

  1. ERG システム ソフトウェアを開きます。
  2. [ データベース センター ] をクリックします。
  3. [ 新規作成 ] をクリックします (新しいデータベース ファイル名を指定します)。[ 保存 ] をクリックします。ポップアップ ボックスに "データベースが作成されました、新しいデータベース ファイルに接続しますか" と表示されます。[ はい] をクリックします。現在のデータベース名に新しいファイル名が反映されます。
  4. データベース コントロール センター ウィンドウで [ 転送 ] をクリックします。
  5. 補足ファイル 1: LightProtocols - 転送を選択します。EXP.[開く] をクリックします。
  6. プログレス バーの完了時に[ 閉じる ](データベース コントロール センター)をクリックします。
  7. 緑色の [スタート ] ボタンをクリックします。
  8. [患者の選択] ウィンドウで [新規] をクリックします。マウスモデルを説明する新しい患者の姓を作成し、生年月日(DOB、mm/dd/y)を入力し、性別(M/F)ボタンを適切な説明に切り替えます。[閉じる]をクリックして、実験の詳細を保存します。
  9. [ プロトコル] をクリックします。暗く適合する ERG および DC-ERG プロトコルが表示されるようになります。
  10. 最後に、Long Flash.col ファイルを次のフォルダ C:\ERG ユーザー ファイル\Long Flash.col に配置します。

2. 毛細管電極の準備

  1. セラミックタイル(材料表)を使用して1.5mmのガラス毛細血管を半分に切り、ガラスを採点し、テーブルを使用してきれいに割って物理的なカウンターフォースを提供し、ガラスを安定させます。
    注:必要に応じてカットエンドを鈍らせ。
  2. ブンゼンバーナー(材料表)を使用すると、火の上に鉗子を持ちながら、熱が毛細血管に小さな曲がりを作ることができます。

3. 毛細管電極の充填

  1. 真空デシケータをインラインフィルタ(材料表)を介して実験室の真空ラインに接続します。
  2. ハンクスのバランス塩溶液(HBSS)( 材料表)の 30 mLを開いた50 mL円錐形チューブに注ぎ、真空チャンバーに(キャップを取り外して)入れます。
  3. コンピュータと録音機器の電源を入れながら、真空をオンにしてHBSSの電源を切ります。
  4. 5\u201210分後に真空をオフにし、脱ガスしたHBSSを使用して、付属の25G針を通して12 mLの注射器を充填します。気泡を導入しないように特別な予防措置を取って電極ホルダーの基盤を満たすためにそれを使用してください。
    1. これを行うには、ねじねじキャップを取り外し、シリコーンゴムガスケットを通してシリンジ針を慎重にスライドさせてホルダーの裏壁(銀/塩化銀ペレット)に到達します。
      注: 銀/銀塩化物ペレットは、銀線を使用するホルダーよりも有利であり、より多くの表面積を提供し、安定した低ノイズベースラインを実現します。しかし、銀/塩化銀ペレットは、良好な接続を達成するために気泡から自由に液体界面を必要とします。そのため、このプロセス中に気泡を導入しないように細心の注意を払ってください。
    2. 徐々にHBSSを注入してマイクロ電極全体を充填し、注射針をゆっくりと引き込みます。ネジ付きキャップを再び取り付けますが、締め付けはしないでください。ギリンジ針を再挿入して、キャップ内の空きスペースをHBSSで埋めます。その後、ガラスの毛細管を水平に保持したまま、溶液が他の端から逃げるのを防ぎます。
    3. 曲がった端からガラスの毛細管を保持し、緩んだキャップを通して反対側の端をゆっくりと挿入し、スクリューキャップを所定の位置に締めます。
      注:HBSSで満たされたガラス電極は、マウスの目の潤滑を維持し、標準的な金ループ電極の使用で発生する角膜脱水を防ぎます。
  5. 気泡が流出できるように、キャピラリー電極を上向きに傾けた電極ホルダーを配置します。5\u201210分間真空を実行して脱気します。ガラスやプラスチック表面からガスが抜け出すと、電極ホルダーからHBSSが押し出されます。
  6. 停止し、ゆっくりと真空を解放します。前述のように電極ホルダーとガラスキャピラリを補充します。
    注:気泡はシリコーンゴムガスケットの上または近くに集まり、また、スレッドキャップの溝に隠すことができるので、これらの領域をバブルフリーに保つために特別な注意を払う必要があります。
  7. マイクロ電極ホルダーをカスタムメイドのTクリップ/磁気ボールジョイントスタンドに取り付けて固定します(図1A、インセット)。マイクロ電極ホルダーのカスタムスタンドを作るために、片側の黒いポリアセタールクリップを取り除いてTクリップ(5/16"-11/32"ODチューブ)#8(材料表)を修正します。磁気ボールジョイントのシリンダーベースを半分に加工して高さを調整します(材料表)。M3サイズのナットで磁気ボール取り付けネジに修正されたTクリップを固定します。
  8. マイクロ電極ホルダーを修正されたTクリップに入れ、綿の先端クリーニングスティック(材料表)を斜めで壊して作られた約1インチの先細り木製ハンドルをスライドさせてしっかりと固定します。希土類磁石シリンダーベースを使用して、カスタマイズされた電極ホルダーをステージの金属板にしっかりと配置し、180°軸上で360°回転を可能にします。

4. テスト電極

  1. 小さな容器(例えば、50 mL円錐管のキャップ)にHBSSを注ぎます。
  2. 完全に組み立てられたHBSS充填されたキャピラリー微小電極をHBSSを含むキャップにそっと下げて電極を事前平衡化し、同じHBSS内に針接地電極(尾/後脚)とAg/AgCl焼結ペレット参照電極(口)を配置して回路を完成させる(図1A)。
    注:薄暗い赤色のライトの下で、以降のすべての手順を実行します。赤い光の懐中電灯を使用して、マウスとキャピラリー電極を配置します。録音を開始する前に、すべての光源を完全にオフにすることを忘れないでください。
  3. テストするマウスを説明する適切な識別子(ファミリ名)を選択または作成し、次の順序に従って登録を完了して実行するDC-ERGプロトコルを選択します。
    1. [ プロトコル] をクリックします。 [DC-ERG]を選択します。[ 実行] をクリックします。ダイアログ ボックスがポップアップ表示されます:"現在の患者は XXX [DOB: XX/XX/XX) これは実行されているテストに対して正しいですか?"[ はい] をクリックします。その後、「ステップ1/6」に進みます。
  4. ファラデーケージのドアを閉めます。
  5. インピーダンスモードを表示するには、 インピーダンス をクリックし、口参照、テールグラウンド、および記録電極の値が許容可能であることを確認します( 図 1Bを参照)。
  6. ステップ(前方矢印)をクリックして ステップ 4/6「長いフラッシュなしの光」を選択して、ベースラインの安定性(ノイズとドリフト)をテストします。
    注:HBSSバスに電極を置いたときに観測されるドリフトの量は、一般的に安定化した後、80sあたり500μV未満であり、電極がマウスに接続されたときに観察されるドリフトと同等です。したがって、HBSS浴中の電極の電気的読み出しは、電極の状態の重要な指標である。ピークからピークまでのノイズは、一般にHBSS浴よりもマウスの場合は10\u201215%大きくなります。これはおそらく呼吸からの動きのアーティファクトの付加によるものである。
  7. [プレビュー] をクリックしてトレースの表示を開始します。トレースは、ピークからピークへの振幅<200 μVの低ノイズである必要があります。ベースラインに徐々にフェードするわずかなドリフト(<500 μV/80 s)は許容可能です(図1C)。

5. マウスと電極の位置決め

  1. 暗い適応のために換気の良いライトタイトボックスに一晩マウスを保管してください。
  2. ケタミン(80mg/kg)およびキシラジン(8mg/kg)の腹腔内注射によって動物を麻酔する。
  3. 角膜を麻酔するために局所的に0.5%プロパラカインHClの低下を適用するだけでなく、2.5%フェニレフリンHClと0.5%のトロピックアミドの低下は、瞳孔を拡張するために。
  4. 録音中に不注意なぴくぴくがガラスの毛細血管電極を乱さないように、マウスウィスカーをハサミでトリミングします。
    注: ERG システム内の DC-ERG 刺激プロトコルには、 ステップ (前方矢印) または ステップ (後方矢印) をクリックして選択できる、いくつかの組み込みの刺激ルーチンがあります。DC-ERG 記録を準備して実行するには、ソフトウェアのステップ 1、4、および 5 のみが必要です。
  5. ERGシステムソフトウェアで、正しい患者が選択されていることを確認します。緑色の [プロトコル] ボタンをクリックします。[ プロトコルの説明]、[DC-ERG] を選択します。次に、[ 実行] をクリックします。 [はい] をクリックして、正しいテストが実行されていることを確認します。
  6. ステップ 1/6 指定赤信号刺激を使用して、ドーム内の赤色光を点灯し、インピーダンスの変化を観察しながらマウスと電極を配置します。
  7. 熱くした記録テーブルの上にマウスを置き、鉗子を使用して後脚の皮膚を慎重にテントに入れる。針の電極を片手にしっかりと持ち、皮下に後脚に挿入して所定の位置に固定します。
  8. 目印Ag/AgCl電極(材料表)を口の中に入れて、焼結したペレットが後頬に沿って置かれ、歯の後ろに所定の位置に保持されるようにします。
    注: 金線電極は、インピーダンス特性が異なり、ピークからピークまでのノイズが増すため、口の参照電極として使用しないでください。
  9. マウスの目に毛細血管を配置する前に、電極ホルダーをガラスキャピラリーを垂直に保持し、電極ホルダーを人差し指でフリックして、導入された気泡を除去します。25G針をシリンジに取り付けてHBSSでチップを充填し、先端にエアバブルが閉じ込められないように点検します。HBSS充填キャピラリーの開いた先端が角膜に優しく接触するように、電極ホルダーを立ててください。
  10. 潤滑剤の目のゲルディスペンサーを逆に保持し、初期の滴を捨てて気泡を導入しないように特別な注意を使用してください。各目に潤滑剤の目のゲルを滴下して、導電性を維持し、記録中の乾燥を防ぎます。

6. DC-ERG記録

  1. ステップ 4/6「長いフラッシュなしの Li」を選択するには、 ステップ (前方矢印) をクリックします。
  2. インピーダンスをクリックします。インピーダンスチェック画面を使用して、左右の目の抵抗を調べます。各眼の記録電極のインピーダンス値は、類似していると予想されます(〜39 kΩ)。接地電極と基準電極の両方のインピーダンス値は、10 kΩ未満と予想されます。
  3. [ プレビュー ]をクリックして、左右の目のトレースを表示します。安定したベースラインが達成されるまで待ちます(<10分)。[ 停止 ]をクリックしてトレースプレビューを終了します。
    注:録音中のドリフト方向や異常なノイズの急激な変化は時間とともに改善されず、注意が必要な毛細管電極を識別する必要があります。最も可能性の高い原因は、電極の先端に導入された気泡である。先端にHBSSを補充します。ベースラインを確認するには、もう一度 [プレビュー] をクリックします。
  4. ステップ(前方矢印)をクリックしてステップ5/6「長いフラッシュ10 cd 7分」を選択します。
  5. [実行] をクリックして記録を開始します (図 1D)。

7. データエクスポート

  1. エクスポートするマウス記録を説明する「患者」(家族名)を選択します。
  2. [ 古いテスト] をクリックします。
  3. [ プロトコルの説明][DC-ERG]を選択します。緑色の [ロード ]ボタンをクリックして、以前に取得したデータをロードします。
  4. ステップ5/6 「長いフラッシュ10 cd 7分」に進むには、 ステップ (前方矢印)をクリックしてください。
  5. [ エクスポート] をクリックします。
  6. ファイル名を指定します (ファイル名.csvなど)。有効なファイル名は、文字、数字、またはアンダースコアの後に文字で始まる必要があります。特殊文字やハイフンは使用しないでください。データ分析プログラム (DCERG_Analysis.exe) では、テーブル項目が変数名の要件を満たしている必要があります。
  7. [ データ テーブル] の横にチェックマークを付けます。[区切り記号] の横にある [タブ] を選択します。チェックマークを付ける (タイトル縦方向) 、すべて含める (ステップステップ、結果 、 データ列 ) (コンテンツ結果スイープ)、およびフォーマット (ファイル) 。
  8. 次に、[ エクスポート ] をクリックします (図 1E)。これにより、*.csvファイルがC:\マルチフォーカルフォルダに保存されます。

8. データ分析

  1. 適切なランタイムインストーラをダウンロードしてインストールする (資料一覧)
  2. DCERG_Analysis.exeインストーラをダウンロードしてインストールします。
    注 : このコマンドは、DC-ERG コンポーネントの分析を実行するスクリプトをインストールし、[スタート] メニュー] フォルダでプログラムを実行するためのショートカットを作成します。
  3. [ スタート] メニュー > [プログラム] フォルダに作成したショートカット クリックします。
  4. 分析用にエクスポートされたデータ ファイル (*.csv) を選択します。複数のファイルを選択するには、Ctrl キーを押しながらマウスを左クリックします。
    注: 実行可能ファイルは 2 種類のプロットを生成します: 1) 生データは測定されたドリフトを示す最適な線でプロットされます。2)ドリフト補正応答は、移動平均(〜5秒のスパン)で平滑化された後にプロットされます。このプロットから、DC-ERG成分の振幅とピークまでの時間が特定されます:c波、高速振動、光ピーク、およびオフ応答。その後、データはテーブル形式でエクスポートされ、各シートが異なるマウス記録に対応するExcelにエクスポートされます。これらのシートの後には、(i) DC-ERG振幅 (mV) がコンパイルされた 2 つの要約シートが続きます。(ii) コンパイルされたDC-ERG時間ピーク(ライトオンセット、t = 0分)。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

図2はmiR-204 ko/ko cre/+(条件付きKO)マウスと野生型(WT)マウスからのサンプルデータセットです。MiR-204 ko/ko cre/+は、網膜色素上皮におけるマイクロRNA204の条件付きノックアウトを有するマウスである。これらのマウスは、VMD2-CREマウス23を用いてフロックスmiR-204マウス(NEIGEFによって産生される)22を交流することによって生成される。MiR-204は、緊密な接合完全性を維持する上皮機能(例えばクローディン)に対して重要なタンパク質の発現を調節するRPEで高発現している(例えば、クローディン)、Kir 7.1カリウムチャネルの発現による恒常カリウムの維持、およびいくつかの視覚サイクル遺伝子の発現(例えば、LRAT、RPE65)24。

異常なRPEモルフォロジーは、マウスライン25を発現する複数のRPE特異的クレで報告されたので、WT表現型を有するCre発現マウスにおける正常なRPE形態を監視した。miR-204 ko/ko cre+(条件付きKO)マウスのretinaの構造的および機能的異常は、過自己蛍光(リポフスチン様沈着)およびRPEのアペカル表面に局在するミクログリアの増加を特徴とするmiR-204ヌルマウス15 に見られる特徴に類似している。ヌルマウスでは、これらの変化はRPEの光誘発電気応答の減少を伴い、光受容体応答への変更を最小限に抑えた(retinal ERGによって評価される)。従って、miR-204 ko/ko cre/+マウスにおけるmiR-204発現の摂動もRPEの電気応答を変化させると予想される。

提示された例では、マウスを加熱されたプラットホームに置き、電極はドームを下げる前に適切に配置される。インピーダンスとドリフトは、風呂溶液を使用して前述したようにチェックされます。代表的な「否定的な」結果を 図2Aに示します。 図2A( 上パネル)では、トレースは、トレースのピークからピークへのノイズを増加させる電極内の微小気泡に苦しんでいます(青色でシェーディング)。別の例(図2A、下パネル)では、気泡がガラスの表面から剥離し、電極の長さに沿って移動すると、ドリフト減算では補償できないベースラインドリフトの方向に急激な変化が生じる。 図2B は、電極ホルダースタンドに微小電極を組み立てる前に真空チャンバーを使用して気泡が除去されたWTおよびmiR-204 ko/ko cre/+マウスの代表的な「陽性」記録を示しています。

初期25s(緑)に最適な線が計算され、青で示されます(図2B)。ドリフト補正応答は、DC-ERG成分の振幅の識別と共に 図2C に再プロットされます。WTおよびmiR-204 ko/ko cre/+株の両方からこのプロトコル動物に記載されているDC-ERG技術を使用して、迅速に記録および分析することができます。

c波は、光受容体活性による亜レチナル空間におけるカリウムの減少に応じてカリウム伝導率が増加したRPE素子膜の超分極化と、内側のレチナル細胞(遅いP3成分-ミュラー細胞の活性を反映する)から生じる別の寄与の2つの成分から構成される。この高速振動は、主に嚢胞性線維症膜貫通伝導調節器(CFTR)27と呼ばれるClトランスポーターのコンダクタンスの変化に起因するRPEバソラショナル膜26の超分極性に関する情報を提供する。光ピークは、第2のメッセンジャーシステムを介してCa2+依存Clチャネル21の活性を調節することによってRPEのバソラショナル膜を脱分極する光受容体駆動物質28の濃度の変化に由来すると考えられる。最後に、オフ応答は、極性が異なり、光強度18によって異なる応答の複雑な相互作用である。

予想通り、Kir 7.1K+チャネルの発現低下は、図2Dの平均応答に示すようにc波29と高速振動を大幅に減衰させ、RPEの電気的特性の著しい障害を示す。DC-ERG のコンポーネントの変更点の概要を図 2Eに示します。DC-ERG 成分の相対振幅(WT に正規化)は、相対 2 つの最大光誘発 a 波振幅 (1 cd·s/m2; 10 cd·s/m2)(WT に正規化) に対してプロットされ、図 2F\u2012Hに示されています。最も明るい光強度(10cd·s/m2)に対する波動応答の減少(図2F\u2012H、補助図S1A、B)は、視覚サイクル障害による感受性の回復の遅れを示唆している(例えば、miR-204ゲノムノックアウトの結果としてLRATまたはRPE65発現の低下に起因する)。

Figure 1
図 1: 図は、DC-ERG プロトコルの主要な手順を示しています。(A)記録(ガラス毛細管マイクロ電極)、参照電極、および接地電極を同じ浴液に下げることによって達成された完成回路の画像。この構成により、(マウスを麻酔する前に)予備テストを実行して、特性インピーダンス、ノイズ、およびドリフトを評価することができます。インセット(左上)は、カスタム微小電極ホルダースタンドの側面図を示す。(B)電極インピーダンスの適切な値を示すインピーダンスチェックモードの代表的な画像。左右の目の電極のインピーダンスは、互いに5 KΩ以内に相当するはずです(例えば、左目:38.7 KΩ対右目:40.36 KΩ)。口参照電極のインピーダンスは1 KΩ未満である必要がありますが、尾電極は約2.5 KΩでなければなりません。(C)プレビュートレースの代表的な画像(ステップ4/6)が表示されます。ステップ 4(ロング フラッシュ 無灯)は、このステップのプレビュー中にライトが配信されないので選択されます。トレースは低ノイズで、ベースラインに時間が経つにつれて徐々にフェードするわずかなドリフトを持つ可能性があります。トレースが両方のチャンネルで一定のドリフトを達成し、比較的フラットになると、実際の記録を開始することができます。(D) 0.5 分の暗闇の後のステップ 5/6 (長いフラッシュ 10 cd 7 分) を使用して、10 cd/m2のライトステップがマウスに 7 分間送達され、その後、1.5 .csv 分の暗闇に戻ります。この正確なフォーマットはDC-ERGの分析ソフトウェアを実行するために必要である。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 2
図2:DC-ERG分析の代表的なトレースとワークフロー過剰な(A、上パネル)ピークからピークへのノイズと(A、底面パネル)ドリフトを表示する負のDC-ERG結果の画像。(B) WTマウスおよびmiR-204 ko/ko cre/+マウスからの正のDC-ERG記録結果の画像。ライトの発症前に最初の25 s(緑)に最も適した線(青)を示す生のトレースの生成されたプロット。(C) ドリフトのプロットは、Bに示すWTおよびmiR-204 ko/ko cre/+マウスに対するDC-ERG応答を補正した。DC-ERG のコンポーネントの振幅は、凡例に示されています。(D) 3~8ヶ月齢のWT(n=6)およびmiR-204 ko/ko cre/+ (n = 6)マウスの平均DC-ERG応答。DC-ERG コンポーネントは WT トレースでラベル付けされ、光刺激パラメータは以下に定義されます。(E) WTマウスおよびmiR-204 ko/ko cre/+マウスの記録から取られたDC-ERG成分の概要。バープロットは平均を表し、誤差範囲は標準誤差を示します。(F)c波、(G)の相対振幅、および(H)オフ応答は、相対的な2つの最大の光誘発a波振幅(1 cd·s/m 2; 10 cd·s/m2)(WTに正規化)に対してプロットされます。有意性はアスタリスクで示されます: (学生の t 検定; * = p < 0.05, ** = p < 0.01, *** = p < 0.001)。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

補足図1:WTおよびmiR-204 ko/ko cre/+マウスのERG応答 (A) WT(黒)とmiR-204 ko/ko cre/+マウス(マゼンタ)の応答から4ミリ秒の光の増加強度の点滅:0.0001 cd·s/m2(n = 5)、0.001 cd· s/m2 (n = 5), 0.01 cd·s/m2 (n = 3), 0.1 cd·s/m2 (n = 3), 1 cd·s/m2 (n = 3), 10 cd·s/m2 (n = 2).(B)フラッシュ強度に対してプロットした平均波振幅。(C)フラッシュ強度に対してプロットした平均b波振幅。(D) フラッシュ強度に対してプロットされた波波応答の平均時間からピークまでの時間。(E) フラッシュ強度に対してプロットされた B 波応答の平均ピーク時間。表示されている全プロットの誤差範囲は、SEMを示し、有意性はアスタリスクで示されています: (学生のt検定; * = p < 0.05)。 こちらをダウンロードしてください。

補足図2:電圧レギュレータ/パワーコンディショナを使用して軽減できる電源ラインのDCオフセットの例。(A)電圧調節電圧スパイクがない場合(例えば、OCTの隣接する部屋での機器の使用によって引き起こされる)は、DC-ERGコンポーネント、特に光ピークの測定を妨げる可能性のあるDCオフセットを生成する。破壊的なオフセットは右側に拡大されます。(B) 電圧レギュレータ/パワーコンディショナーが有効になっていると、最初のスパイクは目立ちますが、損傷したDCオフセットは削除されます。電圧レギュレータ/パワーコンディショナの効果が拡大され、右側に表示されます。こちらをダウンロードしてください。

補助ファイル。これらのファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

重要なステップ

良好なDC-ERG記録は、アウトガスや温度変化に非常に敏感であるため、アーティファクトや不要なドリフトを作成する気泡から自由である安定した電極を必要とします。マウスの記録を進める前に、HBSSバス溶液に電極を配置する際に安定したベースラインを達成することが不可欠です。小さな気泡は、キャピラリー電極の基部またはシリコンガスケットの周りに集まりがちで、電極ホルダーが完全に組み立てられると見えにくくなります。気泡が少ない場合は、ホルダーを軽くフリックすると、除去のためにそれらを解放します。気泡が多すぎる場合や、ドリフトやノイズを除去できない場合は、電極を分解して、プロセスの各ステップで慎重に気泡を検査しながら最初からやり直す方が良い場合が多いです。

変更とトラブルシューティング

DC-ERG の録音の忠実度を向上させるために、次のカスタマイズをセットアップ (材料表) に対して行うことができます。マイクロ電極ホルダー用の低ノイズケーブルを使用して、既存のケーブルを32ビットアンプから記録テーブルまで延長できます。追加の長さは、ガンツフェルトドームが閉じられた後、その位置を乱すことなく、電極ホルダーの慎重な配置と調整を可能にします。電圧レギュレータ/パワーコンディショナは、オン/オフされている隣接する部屋のライトや機器から発生するラインノイズや電力サージを排除するために使用できます(図S2)。さらに、卓上ガンツフェルトドーム刺激装置と32ビットアンプは、追加の電気ノイズに対してシールドするために、建物のグラウンドバーに接地ファラデーケージの内側に配置することができます。

メソッドの制限事項

DC-ERGは、暗い適応動物にのみ忠実に記録することができ、光刺激がオンになると、望ましくない電位やドリフトを排除するためにできることはほとんどないことを意味します。もう一つの制限は、DC-ERGの一部の成分の極性(光ピーク、オフ応答)が16を用いる光強度に従う点である。これは、WTからの最大偏差は、このプロトコルが使用する光強度(10 cd/m2)で本質的に存在しない強度で発生する可能性があることを意味します。この時点で、DC-ERG解析ソフトウェアは、応答のマイナス値(応答最小値)を想定して設計された。オフ応答の極性の反転をもたらす明るい光強度は、含まれている分析スクリプトファイルを変更する必要があります。

意義

RPEは、眼科環境の恒食維持に関与し、いくつかの疾患の病態に重要な役割を果たしています。この方法では、従来のERG記録と組み合わせて行う際に外部の肛門およびRPE機能の客観的な尺度を提供するRPE電気応答を記録するDC-ERGシステムを設定する方法を詳細に説明します。これらのRPE機能の尺度は、変性表現型を示すトランスジェニックマウスラインを評価したり、RPEに対する薬物効力または薬物誘発性細胞毒性を試験するために使用することができる。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

著者らは開示するものは何もない。

Acknowledgments

この作品はNEIの壁内資金によって支えられた。著者らは、シェルドン・ミラー博士の科学的指導、技術的助言、RPE生理学と疾患の専門知識について心から認めている。著者らは、マウスコロニーを管理してくれたメーガン・コペラと動物ケアスタッフ、タルン・バンサル博士、レイモンド・ジョウ博士、元王博士に技術支援を求めた。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ag/AgCl (mouth) Electrode WPI Inc EP1 Mouth reference electrode for mouse
Ceramic Tile Sutter Instrument CTS Used to cut the glass capillary tube to an appropriate size
Cotton Tipped Cleaning Stick Puritan Medical Products 867-WC No Glue To be used as a spacer to improve the fit of the electrode holder assembly
Electroretinogram (ERG) System Diagnosys LLC E3 System Visual electrophysiology system to diagnose ophthalmic conditions in vision research and drug trials
Bunsen Burner Argos Technologies BW20002460 Or equivlaent to shape glass under flame
Glass Capillary Tube (1.5 mm) Sutter Instruments BF150-75 For filling with HBSS and making contact to the cornea
Hank’s Buffered Salt Solution (HBSS) Thermo Fisher Scientific Inc 14175-095 Commercially available. Maintain at RT
In-Line Filter Whatman 6722-5001 To protect vacuum pump from aerosols
Low Noise Cable for Microelectrode Holders WPI Inc 5372 Suggested for improving the length and placement of the cables and electrode holder assemblies
Magnetic Ball Joint WPI Inc 500871 For magnetically positioning the electrode holder assembly on the stage
MatLab Mathworks MatLab: For editing the analysis software
MatLab Curvefit Toolbox Mathworks Toolbox for MatLab (only required for editing the analysis software)
MatLab Compiler Mathworks Toolbox for MatLab (only required for editing and re-releasing the analysis software)
MatLab Runtime version 9.5 Mathworks R2018b (9.5) Required to run the analysis software: https://www.mathworks.com/products/compiler/matlab-runtime.html
Microelectrode Holders (45 degrees) WPI Inc MEH345-15 For holding the capillaries
Needle (25 ga) Covidien 8881250313 For filling the capillary tubes with HBSS
Needle (ground) Electrode Rhythmlink 13mm - one elctrode Subdermal needle electrode (ground) for mouse (13mm long, 0.4mm diameter needle, 1.5m leadwire)
Regulator/Power Conditioner Furman P-1800 Or equivalent to remove DC-offset from noise introduced through power line
Syringe (12 mL) Monoject 1181200777 For filling the capillary tubes with HBSS
T-clip Cole-Parmer 06852-20 For electrode holder assembly
Vacuum Desiccator Bel-Art 420120000 Clear polycarbonate bottom & cover
Pharmacological treatment
Lubricant eye gel Alcon 0078-0429-47 Helps lubricate corneal surface and maintain electrical contact with capillary electrodes
Phenylephrine Hydrochloride 2.5% Akorn 17478-201-15 Short acting mydriatic eye drops (for pupil dilation)
Proparacaine Hydrochloride 0.5% Akorn 17478-263-12 Local anesthetic for ophthalmic instillation
Tropicamide 0.5% Akorn 17478-101-12 Short acting mydriatic eye drops (for pupil dilation)
Xylazine AnaSed sc-362949Rx Analgesic and muscle relaxant
Zetamine (Ketamine HCl) VetOne 501072 Anesthetic for intramuscular injections

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Steinberg, R. H. Interactions between the retinal pigment epithelium and the neural retina. Documenta Ophthalmologica. 60, (4), 327-346 (1985).
  2. Sahu, B., Maeda, A. RPE Visual Cycle and Biochemical Phenotypes of Mutant Mouse Models. Methods in Molecular Biology. 1753, 89-102 (2018).
  3. Mazzoni, F., Safa, H., Finnemann, S. C. Understanding photoreceptor outer segment phagocytosis: use and utility of RPE cells in culture. Experimental Eye Resarch. 126, 51-60 (2014).
  4. Wimmers, S., Karl, M. O., Strauss, O. Ion channels in the RPE. Progress in Retinal Eye Research. 26, (3), 263-301 (2007).
  5. Gundersen, D., Orlowski, J., Rodriguez-Boulan, E. Apical polarity of Na,K-ATPase in retinal pigment epithelium is linked to a reversal of the ankyrin-fodrin submembrane cytoskeleton. Journal of Cell Biology. 112, (5), 863-872 (1991).
  6. Fletcher, E. L., et al. Studying age-related macular degeneration using animal models. Optometry and Vision Science. 91, (8), 878-886 (2014).
  7. Gu, S. M., et al. Mutations in RPE65 cause autosomal recessive childhood-onset severe retinal dystrophy. Nature Genetics. 17, (2), 194-197 (1997).
  8. Marlhens, F., et al. Mutations in RPE65 cause Leber's congenital amaurosis. Nature Genetics. 17, (2), 139-141 (1997).
  9. Marmorstein, A. D., et al. the product of the Best vitelliform macular dystrophy gene (VMD2), localizes to the basolateral plasma membrane of the retinal pigment epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 97, (23), 12758-12763 (2000).
  10. Chang, B. Mouse models for studies of retinal degeneration and diseases. Methods in Molecular Biology. 935, 27-39 (2013).
  11. Collin, G. B., et al. Mouse Models of Inherited Retinal Degeneration with Photoreceptor Cell Loss. Cells. 9, (4), (2020).
  12. Shrock, E., Güell, M. CRISPR in Animals and Animal Models. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 152, 95-114 (2017).
  13. Smalley, E. CRISPR mouse model boom, rat model renaissance. Nature Biotechnology. 34, (9), 893-894 (2016).
  14. Benchorin, G., Calton, M. A., Beaulieu, M. O., Vollrath, D. Assessment of Murine Retinal Function by Electroretinography. Bio Protocol. 7, (7), (2017).
  15. Zhang, C., et al. Regulation of phagolysosomal activity by miR-204 critically influences structure and function of retinal pigment epithelium/retina. Human Molecular Genetics. 28, (20), 3355-3368 (2019).
  16. Samuels, I. S., et al. Light-evoked responses of the retinal pigment epithelium: changes accompanying photoreceptor loss in the mouse. Journal of Neurophysiology. 104, (1), 391-402 (2010).
  17. Wu, J., Marmorstein, A. D., Peachey, N. S. Functional abnormalities in the retinal pigment epithelium of CFTR mutant mice. Experimental Eye Research. 83, (2), 424-428 (2006).
  18. Wu, J., Peachey, N. S., Marmorstein, A. D. Light-evoked responses of the mouse retinal pigment epithelium. Journal of Neurophysiology. 91, (3), 1134-1142 (2004).
  19. Peachey, N. S., Stanton, J. B., Marmorstein, A. D. Noninvasive recording and response characteristics of the rat dc-electroretinogram. Visual Neuroscience. 19, (6), 693-701 (2002).
  20. Samuels, I. S., Bell, B. A., Pereira, A., Saxon, J., Peachey, N. S. Early retinal pigment epithelium dysfunction is concomitant with hyperglycemia in mouse models of type 1 and type 2 diabetes. Journal of Neurophysiology. 113, (4), 1085-1099 (2015).
  21. Marmorstein, L. Y., et al. The light peak of the electroretinogram is dependent on voltage-gated calcium channels and antagonized by bestrophin (best-1). Journal of General Physiology. 127, (5), 577-589 (2006).
  22. Zhang, C., et al. Invest. Ophtalmol. Vis. Sci. Annual Meeting for the Association for Research in Vision and Ophthalmology. 3568 (2017).
  23. Iacovelli, J., et al. Generation of Cre transgenic mice with postnatal RPE-specific ocular expression. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52, (3), 1378-1383 (2011).
  24. Wang, F. E., et al. MicroRNA-204/211 alters epithelial physiology. FASEB Journal. 24, (5), 1552-1571 (2010).
  25. He, L., Marioutina, M., Dunaief, J. L., Marneros, A. G. Age- and gene-dosage-dependent cre-induced abnormalities in the retinal pigment epithelium. American Journal of Pathology. 184, (6), 1660-1667 (2014).
  26. Gallemore, R. P., Steinberg, R. H. Light-evoked modulation of basolateral membrane Cl- conductance in chick retinal pigment epithelium: the light peak and fast oscillation. Journal of Neurophysiology. 70, (4), 1669-1680 (1993).
  27. Blaug, S., Quinn, R., Quong, J., Jalickee, S., Miller, S. S. Retinal pigment epithelial function: a role for CFTR. Documenta Ophthalmologica. 106, (1), 43-50 (2003).
  28. Gallemore, R. P., Griff, E. R., Steinberg, R. H. Evidence in support of a photoreceptoral origin for the "light-peak substance". Investigative Ophthalmology and Visual Science. 29, (4), 566-571 (1988).
  29. Shahi, P. K., et al. Abnormal Electroretinogram after Kir7.1 Channel Suppression Suggests Role in Retinal Electrophysiology. Science Reports. 7, (1), 10651 (2017).
  30. Li, Y., et al. Mouse model of human RPE65 P25L hypomorph resembles wild type under normal light rearing but is fully resistant to acute light damage. Human Molecular Genetics. 24, (15), 4417-4428 (2015).
マウス網膜色素上皮の光誘発電気応答を記録するための直接結合電解電解(DC-ERG)
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Miyagishima, K. J., Zhang, C., Malechka, V. V., Bharti, K., Li, W. Direct-Coupled Electroretinogram (DC-ERG) for Recording the Light-Evoked Electrical Responses of the Mouse Retinal Pigment Epithelium. J. Vis. Exp. (161), e61491, doi:10.3791/61491 (2020).More

Miyagishima, K. J., Zhang, C., Malechka, V. V., Bharti, K., Li, W. Direct-Coupled Electroretinogram (DC-ERG) for Recording the Light-Evoked Electrical Responses of the Mouse Retinal Pigment Epithelium. J. Vis. Exp. (161), e61491, doi:10.3791/61491 (2020).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter