Summary
Total Vaporization Solid Phase Microextraction (TV-SPME) verdampt een vloeibaar monster volledig terwijl analyten worden geabsorbeerd op een SPME-vezel. Dit maakt het mogelijk om de analyt te verdelen tussen alleen de oplosmiddeldamp en de SPME-vezelcoating.
Abstract
Gaschromatografie - Mass Spectrometry (GC-MS) is een veelgebruikte techniek voor de analyse van talrijke analyten van forensisch belang, waaronder gereguleerde stoffen, ontvlambare vloeistoffen en explosieven. GC-MS kan worden gekoppeld aan Solid-Phase Microextraction (SPME), waarbij een vezel met een sorptiecoating in de headspace boven een monster wordt geplaatst of in een vloeibaar monster wordt ondergedompeld. Analyten worden geabsorbeerd op de vezel die vervolgens in de verwarmde GC-inlaat wordt geplaatst voor desorptie. Total Vaporization Solid-Phase Microextraction (TV-SPME) maakt gebruik van dezelfde techniek als immersie SPME, maar dompelt de vezel onder in een volledig verdampt monsterextract. Deze volledige verdamping resulteert in een scheiding tussen alleen de dampfase en de SPME-vezel zonder interferentie van een vloeibare fase of onoplosbare materialen. Afhankelijk van het kookpunt van het gebruikte oplosmiddel maakt TV-SPME grote monstervolumes mogelijk (bijv. tot honderden microliters). On-fiber derivatisatie kan ook worden uitgevoerd met behulp van TV-SPME. TV-SPME is gebruikt om geneesmiddelen en hun metabolieten in haar, urine en speeksel te analyseren. Deze eenvoudige techniek is ook toegepast op straatdrugs, lipiden, brandstofmonsters, explosieve residuen na ontploffing en verontreinigende stoffen in water. Dit artikel belicht het gebruik van TV-SPME om illegale overspelige stoffen te identificeren in zeer kleine monsters (microliterhoeveelheden) alcoholische dranken. Zowel gamma-hydroxybutyraat (GHB) als gamma-butyrolactone (GBL) werden geïdentificeerd op niveaus die zouden worden gevonden in spiked dranken. Derivatisatie door een trimethylsilyl-middel maakte omzetting van de waterige matrix en GHB in hun TMS-derivaten mogelijk. Over het algemeen is TV-SPME snel, eenvoudig en vereist geen monstervoorbereiding, afgezien van het plaatsen van het monster in een headspace-flacon.
Introduction
Solid-Phase Microextraction (SPME) is een bemonsteringstechniek waarbij een vloeibaar of vast monster in een headspace-flacon wordt geplaatst en een SPME-vezel, bedekt met een polymeermateriaal, vervolgens in de monsterhoofdruimte wordt gebracht (of ondergedompeld in een vloeibaar monster). De analyt wordt op de vezel gesorbeerd en vervolgens wordt de vezel in de GC-inlaat geplaatst voor desorptie1,2. Total Vaporization Solid-Phase Microextraction (TV-SPME) is een vergelijkbare techniek als immersie SPME, maar verdampt een vloeibaar monster volledig voordat analyten op de vezel worden geadsorbeerd. Dit maakt het mogelijk om de analyt te verdelen tussen alleen de oplosmiddeldamp en de coating van de vezel, waardoor meer van de analyt op de vezel kan worden geadsorbeerd en resulteert in een goede gevoeligheid3. Er zijn verschillende SPME-vezels beschikbaar en de vezel moet worden gekozen op basis van de analyt van belang, oplosmiddel / matrix en derivatisatiemiddel. Zie tabel 1 voor gevestigde TV-SPME-analyten.
| monster | Analyt(s) | Aanbevolen SPME Fiber | Referentie(s) |
| Menselijk Haar | Nicotine, cotinine | Polydimethylsiloxaan/divinylbenzeen (PDMS/DVB), polyacrylaat (PA) | 3 |
| Rookloos poeder | Nitroglycerine, difenylamine | Polydimethylsiloxaan (PDMS), polyethyleenglycol (PEG) | 7, 8 |
| Racebrandstof | Methanol, nitromethaan | pin | 9 |
| Water | Polycyclische aromatische koolwaterstoffen | PDMS | 10 |
| Dranken | ɣ-hydroxyboterzuur, ɣ-butyrolactone | PDMS | Dit werk |
| Vast poeder | Methamfetamine, amfetamine | PDMS/DVB | ongepubliceerd |
Tabel 1. Aanbevolen SPME vezels met gevestigde TV-SPME analyten.
Om TV-SPME uit te voeren, worden analyten opgelost in een oplosmiddel en wordt een aliquot van dit mengsel in een headspace-flacon geplaatst. Monsters hoeven niet te worden gefilterd omdat alleen het oplosmiddel en vluchtige analyten zullen verdampen. Er moeten specifieke hoeveelheden vloeibare monsters worden gebruikt om de totale verdamping van het monster te waarborgen. Deze volumes worden bepaald met behulp van de Ideale Gaswet om het aantal moedervlekken van een oplosmiddel vermenigvuldigd met het molaire volume van de vloeistof te berekenen (vergelijking 1).
Vergelijking 1
waarbij Vo het volume van het monster (ml) is, P de dampdruk van het oplosmiddel (bar), Vv het volume van de flacon (L), R de ideale gasconstante (0,083145 
), M de molaire massa van het oplosmiddel (g/mol), T temperatuur (K) en 
de dichtheid van het oplosmiddel (g/ml). 3
Om de juiste dampdruk te gebruiken, wordt de Antoine-vergelijking (vergelijking 2) gebruikt om rekening te houden met de invloed van temperatuur:4
Vergelijking 2
waarbij T temperatuur is en A, B en C de Antoine-constanten voor het oplosmiddel. Vergelijking 2 kan worden vervangen door vergelijking 1, wat opbrengt:
Vergelijking 3
Vergelijking 3 geeft het volume van het monster (Vo) dat volledig kan worden verdampt als functie van de gebruikte temperatuur en oplosmiddel.
Om derivatisatie met TV-SPME uit te voeren, wordt de SPME-vezel eerst blootgesteld aan een flacon met het derivatisatiemiddel gedurende een vooraf bepaalde hoeveelheid tijd, afhankelijk van de analyt. De SPME-vezel wordt vervolgens blootgesteld aan een nieuwe flacon met de analyt van belang. Deze flacon wordt verwarmd in een verwarmd roerwerk. De analyt wordt vervolgens geadsorbeerd op de vezel met het derivatisatiemiddel. De derivatisatie van de analyt en/of de matrix vindt plaats op de vezel voordat deze in de GC-inlaat voor desorptie wordt ingebracht. Figuur 1 toont een weergave van het TV-SPME proces met derivatisatie.
Figuur 1: Weergave van het TV-SPME proces met derivatisatie. De SPME-vezel komt eerst in de derivatisatieflacon waar het derivatisatiemiddel (gele cirkels) op de vezelsorbeert. De vezel wordt vervolgens in het monster (blauwe cirkels) geïntroduceerd en verwarmd. Vorming van het derivaat (groene cirkels) vindt plaats op de vezel tijdens de extractietijd. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.
TV-SPME is gunstig omdat het mogelijk maakt om de analyt te derivatiseren tijdens het extractieproces, wat de analysetijd vermindert. Andere methoden, zoals vloeistofinjectie, vereisen dat de analyt reageert met het derivatiserende middel in oplossing voordat het in de GC wordt geïnjecteerd. TV-SPME vereist ook weinig tot geen monstervoorbereiding. Een matrix met een analyt kan rechtstreeks in de flacon van de hoofdruimte worden geplaatst en worden geanalyseerd. Veel verbindingen van belang zijn compatibel met TV-SPME. Verbindingen moeten oplosbaar zijn in een oplosmiddel en voldoende vluchtig zijn om verdamping mogelijk te maken. Bovendien moeten verbindingen thermisch stabiel zijn om door GC-MS te worden geanalyseerd. TV-SPME is gebruikt voor de analyse van drugs en drug metabolieten, racebrandstoffen, polycyclische aromatische koolwaterstoffen, en explosieve materialen3,5,6,7,8,9,10.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Algemene TV-SPME monstervoorbereiding en GC-MS analyse
OPMERKING: Als het monster al is opgelost in een matrix, gaat u verder met stap 1.2.
- Haal of los het vaste monster op in voldoende oplosmiddel (water, methanol, aceton, enz.) om de gewenste concentratie te bereiken. Vloeibare monsters kunnen worden gebruikt "zoals ze zijn".
OPMERKING: De hoeveelheid gebruikt vast monster is afhankelijk van de gewenste concentratie van het monster. Concentraties lager dan 1 ppm (w/v) worden aanbevolen om overbelasting van de GC-kolom te voorkomen. Analyt moet oplosbaar zijn in gekozen organisch oplosmiddel.- Zorg ervoor dat het monster volledig is opgelost.
- Bereken het volume dat nodig is om het monster volledig te verdampen met vergelijking 3 bij de gekozen temperatuur. Als het experiment bijvoorbeeld bij 60 °C moet worden uitgevoerd, berekent u het volume dat nodig is om het oplosmiddel bij 60 °C volledig te verdampen.
- Breng dit monstervolume over in een headspace-flacon en zet de dop vast. Aanvaardbare methoden voor het overbrengen van vloeibare monsters op microliterschaal zijn handmatig via een glazen spuit, een elektronische glazen spuit of een autosamplerrobot die vloeistofoverdrachten voor monstervoorbereiding kan uitvoeren.
- Als u het monster derivatiseert, bereidt u het juiste derivatisatiemiddel voor door ~1 ml van het middel in een headspace-flacon te plaatsen.
- Kies het derivatisatiemiddel op basis van het type derivatisatie dat nodig is: alkylering, acylatatie of silyse. In dit geval is het aanbevolen derivatisatiemiddel voor de carboxylzuur- en alcoholfunctiegroepen die op GHB worden aangetroffen O-bis (trimethylsilyl) trifluoracetamide (BSTFA). Het derivatisatiemiddel mag worden gebruikt "zoals het is" en vereist geen verdunning. Eén ml derivatisatiemiddel is voldoende om volledige verzadiging van de SPME-vezel te garanderen.
LET OP: Derivatisatiemiddelen zijn giftig en moeten in een zuurkast worden behandeld.
- Kies het derivatisatiemiddel op basis van het type derivatisatie dat nodig is: alkylering, acylatatie of silyse. In dit geval is het aanbevolen derivatisatiemiddel voor de carboxylzuur- en alcoholfunctiegroepen die op GHB worden aangetroffen O-bis (trimethylsilyl) trifluoracetamide (BSTFA). Het derivatisatiemiddel mag worden gebruikt "zoals het is" en vereist geen verdunning. Eén ml derivatisatiemiddel is voldoende om volledige verzadiging van de SPME-vezel te garanderen.
- Stel de juiste incubatie-/extractietemperatuur in op basis van de berekening in stap 1.2. Deze temperatuur zorgt voor totale verdamping, voldoende monsterextractie en volledige derivatisatie (indien nodig).
- Selecteer GC-MS-parameters (oventemperatuurprogramma, debiet, inlaattemperatuur, enz.) op basis van de klasse van de betrokken verbinding(en). Zie stap 3 voor een voorbeeldparameterset.
- Zorg ervoor dat de juiste inlaatvoering (bijv. 2 mm binnendiameter of minder) zich in de GC-inlaat bevindt.
- Zorg ervoor dat de SPME-vezel goed is geconditioneerd en in goede staat verkeert voordat u met de analyse begint.
- Varieer de conditioneringsparameters op basis van het type SPME-vezel dat wordt gebruikt. Zie spme vezel instructies voor de juiste conditionering temperatuur en tijd. Over het algemeen is het analyseren van verschillende SPME-vezel blanks totdat ze reproduceerbaar zijn voldoende om een SPME-vezel als volledig geconditioneerd te karakteriseren.
2. Gamma-hydroxybutyraat (GHB) en Gamma-butyrolactone (GBL) monsterpreparaat
- Bereid een monster ghb en/of GBL voor in water met een concentratie van minder dan 1 ppm.
- Breng 1 μL van dit monster over naar een flacon met een hoofdruimte van 20 ml volgens een van de in punt 1.2.1 beschreven methoden.
- Merk op dat voor de analyse van waterige monsters de laagste monstervolumes nodig zijn. Een μL water zal bijvoorbeeld volledig verdampen tot een flacon met een hoofdruimte van 20 ml bij 60 °C.
- Sluit de flacon onmiddellijk af.
- Plaats ~1 ml BSTFA + 1% trimethylchlorosilane (TMCS) in een aparte flacon en dop met een hoofdruimte van 20 ml.
OPMERKING: GBL derivatiseert niet. Een derivatisatiestap is echter nog steeds vereist om ervoor te zorgen dat het wateroplosmiddel derivatiseert en het monster niet verstoort.
LET OP: BSTFA is giftig en moet in een zuurkast worden behandeld.
3. GC-MS parameters en setup voor GHB en GBL in water
- Maak een methode met behulp van de volgende GC-MS-parameters:
Initiële oventemperatuur: 60 °C gedurende 1 minuut.
Ovenprogramma: 15 °C/minuut.
Uiteindelijke oventemperatuur: 280 °C, 1 minuut vastgehouden.
Debiet: 2,5 ml/minuut (snelheid geoptimaliseerde stroom voor een kolom van 0,25 mm i.d.).
Inlaattemperatuur: 250 °C.
Transferlijntemperatuur: 280 °C. - Zorg ervoor dat er een smalle (2 mm i.d. of minder) SPME inlaatvoering in de GC-inlaat is geplaatst.
- Zorg ervoor dat de PDMS/DVB SPME vezel goed geconditioneerd is en in goede staat is voorafgaand aan de analyse.
OPMERKING: PDMS/DVB SPME-vezels moeten gedurende 30 minuten in de GC-inlaat bij 250 °C worden geconditioneerd. PDMS/DVB SPME-vezels moeten een afwijkende kleur hebben. - Voer de GC-MS uit op het monster.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Een GBL-volumestudie werd uitgevoerd om de gevoeligheid van TV-SPME aan te tonen in vergelijking met headspace en immersie SPME. Een monster van 100 ppmv GBL in water werd bereid en in flesjes met een hoofdruimte van 20 ml geplaatst met volumes van 1, 3, 10, 30, 100, 300, 1000, 3000 en 10.000 μL. De faseverhouding van de monsters toegestaan voor TV-SPME (1-3 μL), Headspace SPME (10 – 3.000 μL) en Immersion SPME (10.000 μL). Alle monsters werden in drievoud geanalyseerd en het gemiddelde piekgebied werd uitgezet op basis van het monstervolume. Over het geheel genomen vertoonden monstervolumes die tv-SPME mogelijk maakten meer gevoeligheid dan hoofdruimte of onderdompeling SPME voor GBL in water, zoals weergegeven in figuur 2. Een vergelijking van de chromatogrammen voor elke methode is weergegeven in figuur 3.
Figuur 2: Grafiek van het gemiddelde piekgebied versus het monstervolume voor GBL in water. Een GBL-volumestudie werd uitgevoerd om de werkzaamheid van TV-SPME aan te tonen in vergelijking met headspace en immersie SPME. Een monster van 100 ppmv GBL in water werd bereid en in flesjes met een hoofdruimte van 20 ml geplaatst met volumes van 1, 3, 10, 30, 100, 300, 1000, 3000 en 10000 μL. Alle monsters werden geanalyseerd in drievoud en foutbalken komen overeen met de standaardafwijking van het gemiddelde. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.
Figuur 3: Totaal ionenchromatogrammen voor GBL in water. (100 ppm) voor 3 μL (blauw), 300 μL (rood) en 10.000 μL (groen). Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.
Realistische monsters van wijn met een effectieve dosis GHB en GBL zijn weergegeven in respectievelijk figuur 4 en figuur 5. Deze monsters tonen ook de interconversie van GBL en GHB. Wanneer TV-SPME correct wordt uitgevoerd, zal een scherpe, overvloedige piek resulteren zoals weergegeven in figuur 6. TV-SPME heeft een goede gevoeligheid en daarom moeten de juiste concentraties worden gebruikt om de kolom niet te overbelasten. Wanneer hoge concentraties aanwezig zijn, zal piekasymmetrie resulteren zoals weergegeven in figuur 5 en figuur 7. In deze gevallen kan het verdunnen van het monster of het gebruik van een gesplitste injectie de piekvorm verbeteren.
Figuur 4: Realistisch monster van GHB in wijn met een concentratie van 8 mg/ml. Pieken: 1) GBL, 2) hexaanzuur-TMS, 3) GHB-TMS2, 4) benzoëzuur-TMS, 5) octaanzuur-TMS, 6) glycerol-TMS3, * duidt op een cyclisch siloxaan (vezel/kolombloeding). Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.
Figuur 5: Realistisch monster van GBL in wijn met een concentratie van 10 mg/ml. Pieken: 1) GBL, 2) hexaanzuur-TMS, 3) Siloxaan, 4) trimethyl(2-fenylethoxy) silaan, 5) GHB-TMS2. TIC toont GBL omzetten naar GHB. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.
Figuur 6: Totaal ionenchromatogram voor GBL in water met een concentratie van 0,1 ppm. Resultaten volgens de eerder beschreven TV-SPME-methode voor GBL in water. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.
Figuur 7: Totaal ionenchromatogram voor GBL in water met een concentratie van 10 ppm. Resultaten volgens de eerder beschreven TV-SPME-methode voor GBL in water. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.
Bij derivatisering moet de analist ervoor zorgen dat de methode het mogelijk maakt om de analyt(en) volledig te derivatiseren voordat ze in de GC worden gedesorbeerd. Gedeeltelijke derivatisatie kan resulteren in een piek die de gederivatiseerde analyt vertegenwoordigt en een piek die de onderivatized analyt vertegenwoordigt. Gedeeltelijke derivatisatie zal ook resulteren in een lagere gevoeligheid voor de analyt, omdat minder ervan op de vezel kan adsorberen.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
TV-SPME heeft enkele voordelen ten opzichte van vloeistofinjectie GC in die tijd dat grote monstergrootten (bijv. 100 μL) zonder instrumentaanpassingen kunnen worden gebruikt. TV-SPME heeft ook enkele van dezelfde voordelen als headspace SPME. Headspace SPME vereist geen extractie of filtratie omdat niet-volatiele verbindingen in de headspace-flacon blijven en niet op de vezel worden geadsorbeerd, wat een schoon monster oplevert. Deze methode helpt ook om matrixeffecten te elimineren omdat dit een tweefasig systeem (headspace en fiber) is in tegenstelling tot een driefasig systeem (monster, hoofdruimte en vezel) zoals standaard headspace SPME. TV-SPME is als onderdompeling SPME in die onderdompeling SPME is ook een tweefasig systeem. Bij onderdompeling SPME wordt een vezel ondergedompeld in een vloeibaar (meestal waterig) monster dat de analyt bevat in tegenstelling tot het extraheren van de analyt uit de damp. TV-SPME verschilt van immersie SPME omdat immersie SPME een polaire/waterige matrix nodig heeft om voldoende drijvende kracht te genereren voor analyten om de oplossingsfase te verlaten en te sorberen aan de vezelcoating. Bovendien vereist onderdompeling SPME veel grotere monstervolumes (bijv. ml).
Veel oplosmiddelen kunnen worden gebruikt met TV-SPME, waaronder methanol, aceton, water en acetonitril. SPME-vezels mogen niet worden blootgesteld aan of ondergedompeld in chloroform, omdat deze oplosmiddelen de vezelcoating kunnen beschadigen. Twintig ml schroefdop glazen headspace flacons zijn gebleken dat de beste prestaties met TV-SPME methoden. Het wordt aanbevolen om een autosampler met TV-SPME te gebruiken. Hoewel veel parameters van de TV-SPME-methode naar wens kunnen worden aangepast, moeten voor elk oplosmiddel het juiste volume en de juiste extractietemperatuur worden gebruikt. Het monstervolume en de extractietemperatuur zijn evenredig met elkaar en moeten dienovereenkomstig worden aangepast. De extractietemperatuur van een methode kan bijvoorbeeld worden verlaagd, maar het monstervolume moet ook worden verminderd. Dit volume kan worden gevonden door vergelijking 3 aan te passen.
Wijzigingen in de derivatisatieprocedure kunnen worden aangebracht. Derivatisatie kan worden uitgevoerd vóór of na extractie, bij kamertemperatuur of verwarmd in het roerwerk, door de vezel bloot te stellen aan de damp van het derivatisatiemiddel of door directe onderdompeling van de vezel in het derivatisatiemiddel.
Er zijn beperkingen aan de TV-SPME-methode, waaronder de noodzaak dat verbindingen oplosbaar, thermisch stabiel en vluchtig moeten zijn. TV-SPME vereist dure SPME-vezels die hun coating kunnen laten strippen of breken tijdens de analyse. Deze beperkingen worden gecompenseerd door voordelen zoals grote monstervolumes ten opzichte van typische GC-injectievolumes, hoge gevoeligheid en geen behoefte aan filtratie. TV-SPME heeft de voorkeur boven headspace SPME omdat meer van het monster wordt geëxtraheerd op de vezel en matrixeffecten worden verminderd. TV-SPME heeft ook de voorkeur boven onderdompeling SPME omdat onderdompeling SPME veel meer monster verbruikt dan TV-SPME. TV-SPME maakt derivatisatie mogelijk tijdens het extractieproces, wat de analysetijd vermindert in vergelijking met methoden zoals vloeistofinjectie waarvoor de analyt vóór de injectie moet worden gederivatiseerd. TV-SPME vereist ook weinig tot geen monstervoorbereiding. TV-SPME is eenvoudig, efficiënt en gevoelig voor de analyse van een breed scala aan monsters, waaronder drugs, explosieve materialen en racebrandstoffen.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
De auteurs hebben niets bekend te maken.
Acknowledgments
Dit onderzoek werd ondersteund door het National Institute of Justice (Award No. 2015-DN-BX-K058 & 2018-75-CX-0035). De meningen, bevindingen en conclusies die hier naar voren worden gebracht, zijn die van de auteur en weerspiegelen niet noodzakelijk die van de financieringsorganisaties.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10 µL Syringe | Gerstel | 100111-014-00 | |
| BSTFA + 1% TMCS (10 x 1 GM) | Regis Technologies Inc. | 50442882 | |
| eVol XR Sample Dispensing System Kit | ThermoFisher Scientific | 66002-024 | |
 -Butyrolactone (GBL) |
Sigma-Aldrich | B103608-26G | |
| -Hydroxy Butyric Acid (GHB) |
Cayman Chemicals | 9002506 | |
| Headspace Screw-Thread Vials, 18 mm | Restek | 23083 | |
| Magnetic Screw-Thread Caps, 18 mm | Restek | 23091 | |
| Optima water for HPLC | Fisher Chemical | W71 | |
| SPME Fiber Assembly Polydimethylsiloxane (PDMS) | Supelco | 57341-U | |
| SPME Fiber Assembly Polydimethylsiloxane/Divinylbenzene (PDMS/DVB) | Supelco | 57293-U | |
| Topaz 2.0 mm ID Straight Inlet Liner | Restek | 23313 |
References
- Pawliszyn, J. B. Method and Device for Solid Phase Microextraction and Desorption. United States patent. , (2005).
- Pawliszyn, J. Solid phase microextraction: theory and practice. , John Wiley & Sons. (1997).
- Rainey, C. L., Bors, D. E., Goodpaster, J. V. Design and optimization of a total vaporization technique coupled to solid-phase microextraction. Analytical Chemistry. 86 (22), 11319-11325 (2014).
- Sinnott, R. Chemical Engineering Design: Chemical Engineering. 6, Elsevier. (2005).
- Davis, K. Detection of Illicit Drugs in Various Matrices Via Total Vaporization Solid-Phase Microextraction (TV-SPME). , Indiana University - Purdue University Indianapolis. Master of Science thesis (2019).
- Ash, J., Hickey, L., Goodpaster, J. Formation and identification of novel derivatives of primary amine and zwitterionic drugs. Forensic Chemistry. 10, 37-47 (2018).
- Sauzier, G., Bors, D., Ash, J., Goodpaster, J. V., Lewis, S. W. Optimisation of recovery protocols for double-base smokeless powder residues analysed by total vaporisation (TV) SPME/GC-MS. Talanta. 158, 368-374 (2016).
- Bors, D., Goodpaster, J. Mapping smokeless powder residue on PVC pipe bomb fragments using total vaporization solid phase microextraction. Forensic science international. 276, 71-76 (2017).
- Bors, D., Goodpaster, J. Chemical analysis of racing fuels using total vaporization and gas chromatography mass spectrometry (GC/MS). Analytical Methods. 8 (19), 3899-3902 (2016).
- Beiranvand, M., Ghiasvand, A. Design and optimization of the VA-TV-SPME method for ultrasensitive determination of the PAHs in polluted water. Talanta. 212, 120809 (2020).
