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Medicine

마우스 힌드림에 있는 레이저 도플러 관류 화상 진찰

doi: 10.3791/62012 Published: April 18, 2021

Summary

여기에서, 우리는 마우스 뒷다리에 있는 혈류를 측정하기 위하여 레이저 도플러 관류 화상 진찰을 위한 기술 그리고 필요한 통제를 보여주는 프로토콜을 제시합니다.

Abstract

혈류 회복은 실험적인 뒷다리 허혈 또는 허혈-재퍼퓨전 후 중요한 결과 척도이다. 레이저 도플러 관류 이미징 (LDPI)은 혈류 회복을 평가하기위한 일반적인 비침습적, 반복 가능한 방법입니다. 이 기술은 레이저가 적혈구를 움직일 때 발생하는 주파수의 도플러 이동에서 샘플링 된 조직의 전반적인 혈류를 계산합니다. 측정은 임의 관류 단위로 표현되므로 다리에 개입하지 않는 모순은 일반적으로 측정을 제어하는 데 사용됩니다. 측정 깊이는 0.3-1 mm의 범위에 있습니다. 뒷다리 허혈의 경우, 이는 진피 관류가 평가된다는 것을 의미합니다. 진피 관류는 여러 가지 요인에 따라 달라집니다 - 가장 중요한 것은 피부 온도와 마취제, 이는 신중하게 신뢰할 수있는 판독을 초래하기 위해 제어해야합니다. 또한, 모발과 피부 색소 침착은 진피에 도달하거나 침투하는 레이저의 능력을 변화시킬 수 있습니다. 이 문서에서는 마우스 뒷다리에서 LDPI 의 기술을 보여줍니다.

Introduction

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부적절한 상처 치유를 가진 피부 궤양은 인간 환자 1에서 절단의 주요원인입니다. 적절한 상처 치유는 말초 동맥 질환 환자에서 손상되는 손상되지 않은 피부를 유지하는 데 필요한 것보다 더 높은 수준의 동맥 관혈이 필요하며,이는 말초동맥 질환2,3,4. 몇몇 그밖 류마토로피 상태 및 당뇨병은 또한 상처를 치유하기 위하여 방해되고 부적당한 피부 미세 순환으로 이끌어 낼 수 있습니다5,6. 많은 당뇨병 환자는 수반되는 말초 동맥 질병이 있어 절단을 위한 특히 높은 위험에 그(것)들을 두습니다. 레이저 도플러 관류 영상(LDPI)은 임상 적 상황에서 피부 미세 순환을 평가하는 데 사용되며, 실험적인 뒷다리 허혈, 허혈-재침투 및 미세수술 플랩7후혈 및 혈류 회복을 평가하는 연구 상황에서도 사용된다.

LDPI 시스템은 스캐닝 미러에 의해 편향된 저전력 레이저 빔을 투사하여 관심 영역을 넘어이동합니다. 이는 레이저 도플러 유동측정과 는 다르며, 이는 유량탐사프로브(8)와직접 접촉하여 조직의 작은 영역에 대한 관류 측정을 제공한다. 레이저 빔이 미세 혈관에서 움직이는 혈액과 상호 작용할 때, 스캐너에 의해 감지되고 임의 관류 단위로 변환되는 도플러 주파수 이동을 겪습니다. LDPI는 광기반 기술이기 때문에 침투 깊이가 0.3-1mm로 제한되어 있으며, 이는 대부분의 경우 진피 관류가7을평가한다는 것을 의미합니다. 진피 흐름은 피부 온도 및 교감 신경계에 의해 변경될 수 있으며, 이는 다양한마취제(9)에의해 영향을 받을 수 있다. 광학 레이저의 측정은 주변 조명 조건, 피부 색소 침착의 영향을 받으며 털이나 모발7을과도하게 차단할 수 있다.

LDPI는 비침습적이고, 대비 투여가 필요하지 않으며, 여러 동물에 대한 데이터 수집을 허용하는 빠른 스캔 시간을 가지고 있기 때문에 허혈 후 관류 회복을 모니터링하는 데 가장 일반적으로 사용되는 연구 기술입니다. 이것은 치료 동맥 발생 또는 혈관 신생을 겨냥한 처리가 작은 동물 모형에서 효과적인지 결정하는 것을 돕도록 이상적입니다. LDPI에 의해 측정된 힌드래지 허혈 후의 혈류 회복은 마이크로필 주조 또는 마이크로 CT10,11과같은 다른 수단에 의해 평가될 때 부수적 동맥 발달과 잘 상관관계가 있다. 이 프로토콜의 목표는 LDPI를 사용하여 뒷다리 관류의 평가를 입증하는 것입니다.

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Protocol

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동물 실험은 워싱턴 대학 기관 동물 관리 및 사용위원회가 승인 한 프로토콜에 따라 수행되었습니다.

1. 스캐너 준비

  1. 스캔된 피사체까지의 거리가 약 30cm되도록 스캐너 높이를 조정합니다.
  2. 이미저를 켜고 관련 소프트웨어를 시작합니다.
  3. 측정 프로그램을 엽니다. 소프트웨어가 스캐너와 올바르게 통신하는 경우 경고의 적외선 레이저 턴이 나타납니다.
  4. 제조업체가 제공한 표준으로 컴퓨터를 보정합니다(비디오에 표시되지 않으며 사용되는 컴퓨터의 특정 모델에 따라 다릅니다).
  5. 스캐너 설정을 조정하여 방의 배경 재료 및 조명 설정에 적합합니다.
    1. 제조업체의 지침에 따라 게인 수준 DC FLUXCONC를설정합니다(비디오에 표시되지 않음).
    2. 검은 색 배경 재질의 레이저 빔을 가리키며 배경 임계값을 설정하고 자동 BK 세트를누릅니다.

2. 마우스 사전 스캔 준비

  1. 폐가스를 적절히 청소하여 이소플루란 유도챔버를 설치한다.
    참고: 실내막챔버를 온난화 패드에 배치하면 마취 유도 중 마우스 온도 손실을 방지하는 데 도움이 됩니다.
  2. 비반사 표면 아래의 스캐닝 영역에 배치되는 홈더믹 담요를 켭니다(이 경우 검은 네오프렌 패브릭). 37°C의 체온을 유지하기 위해 홈더믹 담요를 설정합니다.
  3. 가정용 담요와 윤활유에 대한 온도 프로브를 배치하여 삽입할 준비가 되어 있습니다.
  4. 마취 마스크와 청소 시스템을 스캔 영역에 배치합니다.
  5. 이소플루란 기화기로 마우스를 마취시화합니다. 산소 속도를 1 L/min의 흐름으로 설정하고 마취 유도를 위해 이소플루란을 4%로 조정합니다. 마취 유도 챔버로의 흐름을 켜면 마우스 호흡 속도가 느려집니다. 마우스가 오른쪽 반사반사를 잃을 때 적절한 마취가 달성됩니다.
  6. 마우스를 마취 마스크/코 콘에 부착된 폐가스 청소부로 옮기고 이소플루란을 1.5%로 조정합니다.
    참고 : 이 마취 수준은 일반적으로 스캔 하는 동안 상대적으로 가만히 누워 마우스를 유지 하기 에 적합, 하지만 마취의 수술 수준을 제공 하기 위한 되지 않습니다., 그래서 마취의 깊이 확인 되지 않습니다. 이소플루란 수준을 변경하면 심장 박동, 호흡 및 진피 관류의 변화가 발생하므로 모든 시간 과정 실험과 모든 실험 과목에 일관된 백분율을 사용해야 합니다. 케타민 자일라진의 IP 주입과 같은 대체 마취 기술도 사용할 수 있지만, 다른 마취제가 다른 마취제가 다르게 진피 관류에 영향을 미치기 때문에 모든 시간 과정 연구 전반에 걸쳐 동일한 마취 기술을 사용해야 합니다.
  7. (스캔 영역에 따라 선택 사항) 스캔할 관심 영역이 모피로 덮여 있는 경우 작은 전기 트리머 또는 탈필 크림을 사용하여 관심 지역에서 머리카락을 제거하십시오.
    참고: 탈모 크림은 완전히 제거되어야 하며 스캔 하기 전에 마우스 피부건조.
  8. 홈더믹 담요를 덮고 있는 검은 색 비반사 표면에 마우스를 적절한 스캐닝 위치에 놓고, 두 뒷다리가 평형 및 스캐닝(그림1)을통해 열원에 남아 있음을 확인한다.
    참고: 온도의 지역적 변화를 방지하기 위해 홈더믹 담요에 두 발을 유지하는 것이 중요합니다.
  9. 홈더믹 담요와 관련된 윤활유 직장 온도 프로브를 삽입합니다.
  10. 마우스 온도를 원하는 스캐닝 온도(37°C)에 상응하여줍니다. 약 5-10 분.
  11. 상단 메뉴 또는 스캐너 설정 아이콘에서 액세스할 수 있는 스캐너설정을 선택합니다. 관심 영역을 수용하기 위해 X-Y 좌표를 변경하여 스캔 영역을 조정합니다. 스캔 속도는 스캔 해상도에 따라 달라집니다. 해상도가 높을수록 스캔 시간이 길어집니다. 해부학 적 관류에 초점을 맞춘 높은 해상도와는 달리 글로벌 관류에 초점을 맞춘 반복 스캐닝의 경우 4 ms /픽셀의 스캔 속도가 적절합니다.
    참고: 연구원이 개발 중인 부수적 순환을 직접 연구하려고 시도하는 경우 더 높은 해상도와 단일 검사를 고려해야 합니다(피부에 가까운 복부 허벅지와 종아리에서 가장 잘 이미지된 것). 마우스 풋패드의 최종 기관에 대한 글로벌 관류를 평가할 때 낮은 해상도/속도(예: 4 ms/pixel)에서 반복스캔이 적절합니다. 비디오에 표시된 소프트웨어는 다시 시작할 때 스캔 영역, 속도 및 해상도에 대해 이전에 사용한 템플릿을 자동으로 로드하거나 다양한 실험에 다른 관심 영역을 사용하는 경우 저장된 파일에서 검색할 수 있습니다.
  12. 반복 검사를 수행하는 경우 반복 및 줄 스캔 탭을 선택합니다. 검사 횟수(이 경우 3스캔)와 반복 간격을 변경할 수 있습니다. 반복 간격의 최소 시간은 스캔 영역 및 스캔 해상도에 의해 결정된 상자 오른쪽의 회색 아웃 영역에 표시되는 예상 스캔 시간입니다. 몇 초를 추가하면 사용자가 일시 중지하고 스캔 사이에 필요한 경우 마우스를 재배치할 수 있습니다.

3. 스캔

  1. 이미지 스캔 탭을 선택하고 마크 버튼을 선택합니다. 레이저는 스캔 영역을 설명하기 위해 이동합니다. 스캔할 대상이 표시된 영역 내에 있도록 마우스 위치를 조정합니다.
    참고: 풋패드 나 풋패드 및 종아리 스캔의 경우, 뒷다리로 포지셔닝하는 경향이 있는 위치는 supine 포지셔닝보다 더 일관된 관심 영역을 제공합니다. 대퇴동맥과 사페누스 동맥 및 담보는 허벅지와 종아리의 복부 표면에 매우 가깝기 때문에 이러한 관심 영역을 사용하는 경우 supine 포지셔닝이 바람직합니다.
  2. 반복 검색 아이콘을 선택하여 반복 측정을 시작하고 재생 버튼을 눌러 스캔을 시작합니다.
  3. 팝업 창에서 스캔 거리를 확인하고 확인을 클릭하여 스캔을 시작합니다.
  4. 마우스 움직임을 스캔하는 동안 마우스를 모니터링; 마우스가 검색 중간에 있는 스캐닝 영역에 힌드포스가 더 이상 없을 것으로 충분히 이동하면 검사를 다시 시작합니다. 마우스 힌드포 위치의 작은 변형은 분석 소프트웨어에서 수용할 수 있습니다.
  5. 홈더믹 담요를 사용해도 변동될 수 있으므로 스캐닝 과정에서 마우스 온도를 모니터링합니다. 마우스 온도에 너무 많은 변화가 있는 경우 스캔 간에 상당한 변화가 발생할 수 있습니다. 일반적으로 온도 범위는 36.8-37.2°C로 허용 가능한 데이터를 생성합니다.
  6. 캡처된 스캔을 저장창 아래에 마우스 식별자와 시간점을 포함하는 파일 이름을 사용하여 저장하여 데이터 분석을 쉽게 수행합니다. 제목 세부 정보 창에서 원하는 경우 마우스 및 타임포인트 세부 정보를 입력합니다.
  7. 이소플루란을 끄고 직장 온도 프로브를 제거합니다.
  8. 직장 온도 프로브를 70% 에탄올로 소독하여 다음 마우스에서 사용할 수 있습니다.
  9. 마우스가 마취에서 회복하여 수핀 위치에서 케이지로 되돌리기 전에 경향이 있는 위치로 뒤집어 오른쪽 반사반사를 표시하는 지점까지 마우스를 회수할 수 있도록 합니다.
    참고: 회복은 매우 빠르거나 케타민/자일라진을 위한 따뜻한 회복 케이지에서 이소플루란을 위한 온난화 담요에서 수행될 수 있습니다.

4. LDPI 데이터 캡처(그림 3)

  1. 이미징 검토 소프트웨어 프로그램을 엽니다.
  2. 파일 메뉴로 이동하여 저장된 파일을 열고 찾습니다.
  3. 도구 모음에서 ROI 아이콘을 선택합니다.
  4. 다각형 추가 버튼을 선택합니다.
  5. 마우스를 사용하여 제어 뒷다리에 대한 관심 영역(ROI)을 추적합니다. 회색 배경이 계산된 평균에 포함되지 않으므로 다각형 추적이 정확할 필요는 없습니다.
  6. 수술 뒷다리에 대한 4.3-4.5 단계를 반복합니다.
  7. 통계 아이콘을 선택하여 이미지 ROIs 통계 결과(PU) 창을 엽니다.
  8. 다각형 1(제어 뒷다리) 및 다각형 2(수술 뒷다리)의 결과를 복사/붙여넣기를 통해 데이터 수집 워크시트로 내보냅니다.

5. 분석

  1. 각 검사에 대해 데이터를 외과/제어 비율로 캡처합니다.
  2. 해당 시점에서 해당 특정 마우스의 데이터 포인트에 대해 세 검사 모두에 평균 수술/제어를 사용합니다. 힌드래지 허혈에 대한 반응에서 생물학적 가변성 으로 인해 일반적으로 8-10 마우스는 시간당 ~10 % 표준 오류로 재현 가능한 결과를 달성해야합니다.
    참고: 마우스가 마취에서 복구하도록 허용하기 전에 반복 된 스캔을 신속하게 분석하여 데이터가 너무 가변인지 확인하는 것이 좋습니다 (예 : 스캔 1-3 사이에 다른 100-150 개 이상의 관류 단위). 반복 스캔 사이의 높은 변형은 마우스가스캔(그림 2)동안 완전히 평형화되지 않았음을 시사하며, 나중에 이미지가 나중에 분석되지 않으면 발생하는 데이터 점을 잃지 않고 반복 스캔을 수행할 수 있음을 시사한다. 표시된 플럭스 값의 동적 범위를 최적화하기 위해 색상 팔레트를 변경하면 스캔 변형을 더 잘 표시할 수있습니다(그림 2).

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Representative Results

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성공적인 LDPI는 3개의스캔(그림 2)사이에100-150개 이하의 관혈 단위 변이(마우스 풋패드에 대한 일반적인 평균 관류의 약 10%에 해당)를 초과하지 않는 일관된 반복측정 검사의 결과를 초래해야 한다. 도 2에서설명한 바와 같이, 반복 검사는 마우스가 적절하게 평형되어 허혈성/대조비가 온도 변화로 인한 진피 관류의 변화와 는 달리 근본적인 혈류를 가장 잘 반영하도록 결정하는 데 도움이 된다. 데이터 포인트에 단일 스캔을 사용하면 더 많은 실험 마우스가 필요합니다. 뒤다리 허혈에 사용될 때, 외과 뒷다리는 통제 뒷다리에 비해 글로벌 관류를 감소시켜야 합니다. 결과는 외과 뒷다리 관류/제어 뒷다리 관류의 비율로 표현됩니다. 마우스는 처음에 시간이 지남에 따라 본질적인 부수적 네트워크를 병지및 개발함에 따라, LDPI에 의한 혈류 회복은 수술 후 시간과정(그림 4)을통해 볼 수 있어야 한다. 회복 정도는 마우스 변형률과 뒷다리 허혈 모델의 심각도에 의존한다.

Figure 1
그림 1. 복부 풋패드의 레이저 도플러 관류 이미징용 마우스 포지셔닝. 이소플루란 코 콘(A)을 이용한 마취 마우스는 복부 풋패드의 스캔을 허용하기 위해 뒷다리가 확장된 경향이 있는 위치에 배치된다. 홈더믹 담요에 대한 직장 온도 프로브 (P)는 스캔 중에 일관된 체온을 유지하기 위해 제자리에 있습니다. 홈더믹 담요 패드는 스캔을위한 배경을 제공하는 데 사용되는 반사되지 않는 네오프렌 재료 아래에 있습니다. 스캐닝 영역의 중간을 나타내는 레이저는 마우스의 꼬리 옆에 표시됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 2
그림 2. 마우스 온도 변화에서 스캔 변화의 데모 는 색상 팔레트 조정으로 더 잘 볼 수 있습니다. (A)레이저 도플러는 반복된 플럭스 스캔에서 색으로 변환된 관류 단위를 기반으로 볼 수 있는 반복 스캔 중 마우스 코어 온도 변화에 의한 상당한 변동으로 스캔을 반복하였다. (B)A에서 0-1000(빨간색 화살표)에서 0-1000(빨간색 화살표)으로 색상 팔레트(스캔 창 의 왼쪽에 도시됨)의 동적 범위를 변경하면 변화가 더욱 분명해집니다. (C)대조군 뒷다리(A와 B의rfx 이미지에 검은색으로 폴리곤 1)에 대한 관심 영역(빨간색으로 동그라미)에 대한 평균 관류 값을 나타내는 통계는3rd 스캔에서 791로1st 스캔에 대해 655 사이이며 평균 관류에 대한 의미 관류 값을 제공합니다. 허혈성 힌드림에 대한 관심 영역(A 및 B의rfx 이미지에 빨간색으로 다각형 2)은 적은 변형(361 에서 400)을 보였으며, 반복 스캔(0.60, 0.53) 사이의 허혈/제어 비율에 상당한 차이를 이끌어 내고, 및 0.46). (D)윈도우측정 소프트웨어(왼쪽 패널) 및 이미지 검토 소프트웨어(오른쪽 패널)에서 색상 팔레트의 동적 범위를 변경합니다. 빨간색 화살표는 상범위를 늘리거나 줄이는 위치를 보여줍니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 3
그림 3. 반복 스캔레이저 도플러 관류 이미징을 위한 데이터 캡처. (A)1이 있는 최고 도구 모음. ROI 아이콘을 추가합니다. 2. 다각형 아이콘을 추가합니다. 3. 제목 세부 정보 아이콘 (B에서창 팝업에 액세스). 4. 통계 아이콘 (C에서창 팝업에 액세스). (B)주제 세부 사항 창. (C)각 ROI에 대한 평균 관류 값(빨간색으로 동그라미)을 나타내는 통계 창입니다. (D)다각형 ROI가 있는 반복 스캔은 제어 힌드포(black) 및 허혈성 힌드포(빨간색)를 중심으로 추적된다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 4
그림 4. LDPI 데이터를 사용하여 시간 과정 실험. P27 녹아웃 마우스 (3-5 개월 된 여성 CDKN1b-/- C57Bl/6 배경에 마우스) 대퇴 동맥 결찰 후 (n=6) 및 없이 (n=10) 경구 독실성 치료 나이 일치 여성 야생형 C57Bl/6 마우스 (n=11) 및 없이 (n=11) 및 없이 (n=9) 구두 를 발간하는 비사용 오류 막대는 평균(SEM)의 표준 오류를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Discussion

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일관된 기술은 LDPI로 신뢰할 수 있는 결과를 얻는 데 중요합니다. 동일한 마취, 온도 설정, 마우스 위치 및 관심 영역은 전체 시간 과정 전반에 걸쳐 사용되어야 합니다. 다른 마취제는 더 높거나 낮은 관류 값9을초래할 것이다. 이소플루란 마취는 급속한 발병과 출현뿐만 아니라 전반적인 안전성 때문에 편리합니다. 이소플루란의 일관된 백분율은 이 혈관 확장제에이전트를 가진 마취의 깊이로 피부 관류를 바꿀 수 있습니다 이용되어야 합니다. 관심 영역이 모피를 포함하는 경우, 화학적으로 지환된 마우스가 전기클리퍼7로털을 제거한 마우스보다 관류 값이 높기 때문에 매번 동일한 제모 방법을 사용해야 한다. 마우스 온도는 38°C7,12에서마우스보다 상당히 낮은 관류 값을 갖는 36°C에서 마우스와 함께 관류이미징에큰 영향을 미친다. 허혈성 뒷다리는 또한 대조군 뒷다리(도2)와다른 지역 온도 변화에 다르게 반응할 수 있다. 본 프로토콜에서, 홈더믹 담요는 37°C 온난화 플레이트에서 마우스를 5분 동안 미리 평형화한 다음니야마 등(13)에 의해 도시된 바와 같이 비온화 표면에서 스캔하는 것보다 스캐닝 과정에서 마우스 온도를 유지하는 데 사용된다.

풋패드만 관심 영역으로 선택되면 스캔한 관심 지역의 재현성 으로 인해 위치 지정이 선호됩니다. 이 접근법의 장점은 심장에서 가장 먼 지역을 연구하고 허혈성 발 궤양이 일반적인 곳에 해당하는 가장 임상적으로 관련된 영역을 연구한다는 것입니다. 풋패드는 털이 없으므로 클리핑이나 탈약이 필요하지 않으므로 측정 준비와 시간을 단순화합니다. 또한, 비백색 마우스는 LDPI 측정을 방해할 수 있는 종아리 또는 허벅지의 피부에 색소 침착의 패치가 있을 수 있습니다. 선택한 지역에서 종아리와 허벅지를 포함하는 경우, 대퇴동맥과 수페누스 동맥이 뒤다리의 복부 표면을 따라 달리고 LDPI7을사용하여 이미지화될 수 있기 때문에 supine 포지셔닝이 바람직하다. 척추 위치에서, 다리의 일관된 이미징은 측면과 상단 표면이 가변적으로 이미지될 수 있기 때문에 캡처하기 어렵다.

뒤림부기 허혈 후 담보화 및 혈류 회복은 뒷다리 허혈 모델, 마우스 변형, 성별 및 나이를 포함한 여러 가지 요인에 의존한다. C57Bl/6과 같은 마우스의 특정 변종은 급성 뒷다리 허혈을 유도한 후 관류가 덜 극적으로 떨어지는 반면 BALB/c와 같은 다른 균주는담보14,15가좋지 않은 반면, 견고한 기준선 담보를 가지고 있다. 여성 마우스는 남성 마우스 보다 더 나쁜 복구. 더 오래된 마우스는 또한 젊은 마우스 보다는 더 나쁜 혈류회복이 16. 따라서, 마우스는 LDPI 데이터를 사용하여 혈류 회복에 관한 신뢰할 수 있는 결론을 위해 변형, 연령 및 성별이 일치할 필요가 있다. 마우스의 엄격한 일치 및 근친 근간을 사용하더라도, 뒤침반 허혈에 마우스 반응에 일정량의 생물학적 가변성이 있으므로 유효한 데이터에 적합한 마우스 수(보통 시간당 8-10 마우스)가 필요합니다. 더욱이, LDPI의 정상화는 반드시 어떤 골격 근육 수요가없는 마취 마우스에서 측정이 수행으로 동맥 흐름의 정상적인 수준의 복원을 의미하지 않는다. 마지막으로, 침투깊이의 한계 때문에, LDPI로허벅지와 종아리의 깊은 근육을 통해 달릴 수 있는 부수적통로의 상세한 해부학적 연구가 불가능하다.

레이저 반점영상(17),18, 19또는 골격 근의 대비 강화 초음파 등 피부의 관류 기반 이미징을 포함하는 혈류 회복을평가하는 데 사용되는 다른 여러 가지 방법이 사용되어 왔다(13)N-암모니아 PET22. 또한 마이크로 CT10, 10월23일, 및 비중요한 현미경검사법(24)을이용한 대비강화 초음파와 같은 부수적 혈관의 해부학 기반 이미징도 사용된다. 빠른 스캔 시간, 데이터 캡처 및 분석의 상대적 용이성, 정맥 대비의 필요성을 피하기 때문에 LDPI는 문헌의 대부분의 그룹에서 사용하는 주요 방법입니다. 약점은 기술이 혈류 속도를 측정하고 절대 조직 관류를 측정하는 대신 임의 관류 단위로 데이터를 제공한다는 것을 포함하며, 스캐닝 깊이는 상대적으로 얕으며 상대적으로 가난한 해부학적 세부 사항을 제공한다.

LDPI는 가장 일반적으로 다양한 힌드래지 허혈 모델7후 복구를 평가하는 데 사용됩니다. 또한힌드림(25)뿐만 아니라 더 깊은 스플란치닉 장기 또는 척수26,27,28모두에서허혈-재관류 연구에도 사용되고있다. 그러나 깊은 구조물의 평가는 흉터 때문에 반복되는 측정을 더 어렵게 만드는, 스캔할 구조물의 외과 노출을 요구합니다. 추가 적용은 미세 수술 후 플랩 재관류의평가(29)이다.

결론적으로, LDPI는 전반적인 동맥 관류의 반영으로 뒷다리 진피 관류를 측정하기 위한 효과적이고, 쉽게 수행되고, 반복가능한 방법입니다. 신뢰할 수 있는 데이터를 얻기 위해 LDPI를 사용할 때 일관된 기술이 필요합니다.

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Disclosures

탕 박사는 공개할 이해상충이 없습니다.

Acknowledgments

이 작업은 VA Puget 사운드 헬스케어 센터에서 시설과 자원을 사용하여 수행되었습니다. 이 작품은 저자의 것이며 반드시 재향 군인 국무부 또는 미국 정부의 위치 또는 정책을 반영하지는 않습니다. 탕 박사는 현재 VA(Merit 5 I01 BX004975-02)를 통해 자금을 지원하고 있습니다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Black nonreflective material Fabric store, black neoprene recommended by company
F/air cannister A.M. Bickford Inc 80120
Homeothermic blanket with rigid metal probe Harvard Apparatus Also comes with flexible probe, but this is less durable
Isoflurane Anesthesia machine Drager Multiple manufacturers
Isoflurane induction chamber VetEquip 941444 2 L chamber
Moor laser Doppler perfusion imager Moor Instruments MoorLDI2-IR Higher resolution imager (MoorLDI2-HIR)
Mouse Anesthesia nose cone Multiple manufacturers
Nair Nair
Oxygen tank Multiple manufacturers
Surgilube Multiple distributors

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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Tang, G. L., Kim, K. J. Laser Doppler Perfusion Imaging in the Mouse Hindlimb. J. Vis. Exp. (170), e62012, doi:10.3791/62012 (2021).More

Tang, G. L., Kim, K. J. Laser Doppler Perfusion Imaging in the Mouse Hindlimb. J. Vis. Exp. (170), e62012, doi:10.3791/62012 (2021).

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