Summary

Un metodo semplificato per la generazione di organoidi renali da cellule staminali pluripotenti umane

Published: April 13, 2021
doi:

Summary

Qui descriviamo un protocollo per generare organoidi renali da cellule staminali pluripotenti umane (hPSC). Questo protocollo genera organoidi renali entro due settimane. Gli organoidi renali risultanti possono essere coltivati in fiaschi spinner su larga scala o piastre magnetiche multi-pozzo per approcci paralleli di test antidroga.

Abstract

Gli organoidi renali generati dalle hPSC hanno fornito una fonte illimitata di tessuto renale. Gli organoidi renali umani sono uno strumento inestimabile per studiare malattie e lesioni renali, sviluppare terapie cellulari e testare nuove terapie. Per tali applicazioni è necessario un gran numero di organoidi uniformi e saggi altamente riproducibili. Abbiamo costruito sul nostro protocollo organoide renale precedentemente pubblicato per migliorare la salute generale degli organoidi. Questo semplice e robusto protocollo 3D prevede la formazione di corpi embrioidi uniformi in un mezzo componente minimo contenente lipidi, integratore di insulina-transferrina-selenio-etanolammina e alcool polivinilico con inibitore GSK3 (CHIR99021) per 3 giorni, seguito da coltura in mezzo contenente siero sostitutivo knock-out (KOSR). Inoltre, i saggi di agitazione consentono di ridurre l’aggregazione dei corpi embrioidi e di mantenere una dimensione uniforme, che è importante per ridurre la variabilità tra gli organoidi. Nel complesso, il protocollo fornisce un metodo veloce, efficiente ed economico per generare grandi quantità di organoidi renali.

Introduction

Negli ultimi anni, sono stati sviluppati una serie di protocolli per differenziare le cellule staminali pluripotenti umane in organoidi renali 1,2,3,4,5. Gli organoidi renali hanno fornito uno strumento importante per aiutare la ricerca su nuovi approcci di medicina rigenerativa, modellare malattie renali, eseguire studi di tossicità e sviluppo di farmaci terapeutici. Nonostante la loro ampia applicabilità, gli organoidi renali hanno limitazioni come la mancanza di maturazione, la limitata capacità di coltura a lungo termine in vitro e una scarsità di diversi tipi di cellule presenti nel rene umano 6,7,8. Recenti lavori si sono concentrati sul miglioramento del livello di maturazione organoide, estendendo i periodi di coltura ed espandendo la complessità delle popolazioni di cellule renali modificando i protocolli esistenti 9,10,11,12. In questa attuale iterazione del nostro protocollo stabilito 5,13, abbiamo modificato i componenti medi nella prima fase del protocollo in un mezzo base privo di siero integrato con insulina-transferrina-selenio-etanolammina (ITSE), lipidi, alcool polivinilico (E5-ILP) e CHIR99021 (Figura 1). Questi cambiamenti forniscono un mezzo completamente definito, privo di siero, a basso contenuto proteico, con meno componenti rispetto alla nostra precedente composizione media 5,13 e senza ulteriori fattori di crescita. Di conseguenza, il mezzo di prima fase è meno laborioso da preparare rispetto alla nostra versione pubblicata in precedenza e può ridurre la variabilità da lotto a lotto5. Studi precedenti hanno dimostrato che sia l’insulina che la transferrina sono importanti nella coltura priva di siero14,15, tuttavia, alti livelli di insulina possono essere inibitori della differenziazione del mesoderma16. Abbiamo mantenuto i bassi livelli di insulina come previsto nel protocollo originale e ulteriormente ridotto i livelli di KOSR (contenente insulina) nella seconda fase del test. In linea con altri protocolli per la formazione di organoidi renali, livelli più bassi di KOSR sono utili per mantenere un equilibrio tra proliferazione e differenziazione del tessuto renale17. Inoltre, abbiamo abbassato la concentrazione di glucosio nel nostro mezzo di stadio II13.

Il nostro metodo descrive una configurazione per il dosaggio in sospensione di organoidi renali, producendo fino a ~ 1.000 organoidi da una piastra di coltura iniziale di hPSC 100 mm confluente al ~ 60% come descritto nella pubblicazione originale 5,13. Questo protocollo può essere facilmente scalato fino a partire da più piastre da 100 mm o 150 mm per aumentare ulteriormente i numeri organoidi.

Protocol

Tutti gli esperimenti che utilizzano hPSC sono stati eseguiti in conformità con le linee guida istituzionali e sono stati condotti in una cappa di biosicurezza di Classe II con adeguati dispositivi di protezione individuale. Tutti i reagenti sono di grado di coltura cellulare, salvo diversa indicazione. Tutte le colture vengono incubate a 37 °C, 5% CO2 atmosfera atmosferica. In tutte le fasi del test, i corpi embrioidi o gli organoidi renali possono essere raccolti e fissati o preparati per l’analisi. Le lin…

Representative Results

In questa versione più recente del nostro protocollo, la differenziazione degli organoidi renali viene avviata in un mezzo definito a basso contenuto proteico. I saggi vengono eseguiti interamente in sospensione e si basano sulla capacità innata di differenziazione e organizzazione delle hPSC per l’inizio della tubulogenesi. Un singolo test proveniente da una piastra di coltura hPSC confluente da 100 mm ~ 60% produce abitualmente 500-1.000 organoidi renali, come mostrato nella nostra precedente pubblicazione<sup class=…

Discussion

Studi precedenti hanno dimostrato che le fasi iniziali del protocollo sono fondamentali per la differenziazione del mesoderma intermedio 5,19,20 e, pertanto, è essenziale implementare una composizione media rigorosa in questa fase. La rimozione di componenti indefiniti come siero, albumina, ibridoma medio II privo di proteine dal primo stadio del protocollo può aiutare a migliorare l’efficienza di differenziazione coerente tra…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questa ricerca è stata finanziata dal National Institutes of Health R01 DK069403, UC2 DK126122 e P30-DK079307 e ASN Foundation for Kidney Research Ben J. Lipps Research Fellowship Program to AP.

Materials

2-Mercaptoethanol Thermo Fisher 21-985-023
Anti-adherence rinsing solution STEMCELL Technologies 7010
CHIR99021 STEMCELL Technologies 72054 10 mM stock in DMSO
Corning disposable spinner flasks Fisher Scientific 07-201-152
Corning Ultra-Low Attachment 6-well plates Fisher Scientific 07-200-601
Corning Slow-Speed Stirrers Fisher Scientific 11-495-03 Multi plate magnetic stirrer for spinner flask culture
Dispase STEMCELL Technologies 7923 Aliquot and freeze
DMEM, low glucose, pyruvate, no glutamine, no phenol red Thermo Fisher 11054020
DPBS 1x, no calcium, no magnesium Thermo Fisher 14-190-250
Egg / Oval Stirring Bars 2mag PI20106
Excelta General-Purpose Tweezers Fisher Scientific 17-456-103 Keep sterile in the cell culture hood
EZBio Single Use Media Bottle, 250mL Foxx Life Sciences 138-3211-FLS Used to make PVA 10%
Falcon Standard Tissue Culture Dishes (100 mm) Thermo Fisher 08-772E
Fisherbrand Sterile Aspirating Pipet 2mL Fisher Scientific 14-955-135
Fisherbrand  Cell Lifters – Cell lifter Fisher Scientific 08-100-240
Fisherbrand Multi Function 3D Rotators Fisher Scientific 88-861-047 Orbital shaker
Geltrex LDEV-Free Reduced Growth Factor Basement Membrane Matrix Thermo Fisher A1413302 BME. Aliquot on ice and freeze. Another suitable matrix alternative is Matrigel or Cultrex.
Gentle Cell Dissociation Reagent STEMCELL Technologies 7174 GCDR
GlutaMAX Supplement Thermo Fisher 35-050-061 L-glutamine supplement.
HEPES (1M) Thermo Fisher 15-630-080
Insulin-Transferrin-Selenium-Ethanolamine Thermo Fisher 51-500-056 ITSE
KnockOut  Serum Replacement – Multi-Species Thermo Fisher A3181502 KOSR. Aliquot and freeze
Lipid Mixture 1, Chemically Defined Millipore-Sigma L0288-100ML
MEM Non-Essential Amino Acids Solution Thermo Fisher 11140-050
MilliporeSigma Stericup Quick Release-GP Sterile Vacuum Filtration System 500mL Fisher Scientific S2GPU05RE
MilliporeSigma  Stericup Quick Release-GP Sterile Vacuum Filtration System 250mL Fisher Scientific S2GPU02RE
MIXcontrol MTP / Variomag TELEcontrol MTP Control Unit 2mag VMF 90250 U
MIXdrive 6 MTP / Variomag TELEdrive 6 MTP Microplate Stirring Drive 2mag VMF 40600 6MSP
MP Biomedicals  7X Cleaning Solution Fisher Scientific MP0976670A4 Tissue culture suitable detergent. Make a 5% solution in water
mTeSR1 STEMCELL Technologies 85850 hPSC medium.TeSR-E8, NutriStem XF, and mTeSR Plus medium have also been tested and are suitable alternatives. 
Nunc 50 mL Conical, Sterile Centrifuge Tubes Fisher Scientific 12-565-270
Nunc 15mL Conical Sterile Centrifuge Tubes Fisher Scientific 12-565-268
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher 15-140-122 Aliquot and freeze
Plasmocin Invivogen ant-mpt Anti-mycoplasma reagent. Aliquot and freeze
pluriStrainer® 200 µm Fisher Scientific NC0776417 Cell strainer
pluriStrainer® 500 µm Fisher Scientific NC0822591 Cell strainer
Poly(vinyl alcohol) 87-90% hydrolyzed  (PVA) Millipore-Sigma P8136-250G 10% in DPBS stirring at 98 degrees C until disolves, make in 138-3211-FLS
ROCK inhibitor Y-27632 (ROCKi) STEMCELL Technologies 72304 10 mM stock in DPBS
Sterile Disposable Serological Pipets  – 10mL Fisher Scientific 13-678-11E
Sterile Disposable Serological Pipets – 25mL Fisher Scientific 13-678-11
Sterile Disposable Serological pipette – 5 mL Fisher Scientific 13-678-12D
TeSR-E5 STEMCELL Technologies 5916 Serum-free, low protein base medium for E5-ILP
Variomag distriBOX 2 Distributor 2mag VMF 90512 If you use more than one MIXdrive

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Cite This Article
Przepiorski, A., Crunk, A. E., Holm, T. M., Sander, V., Davidson, A. J., Hukriede, N. A. A Simplified Method for Generating Kidney Organoids from Human Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (170), e62452, doi:10.3791/62452 (2021).

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