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Biology

흐름이 향상된 초음파로 눈의 깊은 혈관 이미징

Published: October 4, 2021 doi: 10.3791/62986

Summary

우리는 조영제를 사용하지 않고 눈에 입체 혈관 조영술을 생성하는 비 침습적 초음파 기술을 제시합니다.

Abstract

눈 안의 망막은 신체에서 가장 에너지를 많이 요구하는 조직 중 하나이므로 풍부한 혈액 공급으로 인한 높은 산소 전달이 필요합니다. 맥락막의 모세관 라미나는 망막의 외부 표면을 감싸고 대부분의 척추 동물 망막에서 산소의 지배적 인 원천입니다. 그러나이 혈관 침대는 고도로 광흡수성 망막 뒤에 위치하기 때문에 전통적인 광학 기술로 이미지화하기가 어렵습니다. 여기서 우리는 높은 시공간 해상도로 눈의 깊은 혈관 침대 (0.5-3cm)를 이미지화하기위한 후속 흐름 향상과 함께 고주파 초음파 기술을 설명합니다. 이 비 침습적 방법은 유핵화 된 적혈구 (비 포유류 및 태아 동물 모델)가있는 종에서 잘 작동합니다. 조영제를 사용하지 않고도 비침습적 입체 혈관조영술을 생성할 수 있으며, 도플러 기반 초음파 영상 기술보다 높은 감도를 갖는 혈류각과는 무관하다.

Introduction

척추 동물 망막의 높은 신진 대사는 두 가지 대조적 인 요구 사이의 본질적인 절충안을 부과합니다. 높은 혈류 속도와 혈관이없는 가벼운 경로. 관류 적혈구의 시각 장애를 피하기 위해, 모든 척추 동물의 망막은 광수용체 뒤의 모세 혈관 시트를 통해 산소와 영양분을 섭취합니다 (choriocapillaris1,2,3). 그러나, 이러한 영양소와 산소의 단일 공급원은 망막의 두께에 확산 제한을 부과한다4,5, 그래서 많은 시각 활성 종들은 이러한 대사적으로 활성인 장기에 추가적인 혈액 공급을 제공하기 위해 다양한 정교한 혈관 네트워크를 보유한다6. 이러한 혈관 층에는 포유류 및 일부 어류의 내부 망막층을 관류하는 혈관4,7,8,9,10, 많은 물고기, 파충류 및 조류에서 발견되는 망막의 내측(빛을 향한) 측면의 혈관 4,11,12,13, 및 어질의 역류 혈관 배열, 맥락막 레테가 포함된다. 미라빌레, 즉 초대기압 산소 분압14,15,16,17,18,19,20의 생성을 허용한다. 망막 영양소 공급을 위한 이러한 추가적인 비맥락막 경로가 우수한 시력의 대사 요건을 자극하는 데 필수적인 역할을 함에도 불구하고4, 이러한 혈관 구조의 입체 해부학은 잘 이해되지 않아 척추동물의 형태학적 진화에 대한 우리의 이해를 제한한다.

전통적으로 망막 혈액 공급은 안저 안과 검사와 같은 광학 기술을 사용하여 연구되어 왔습니다. 이 범주의 기술은 고해상도21에서 비맥락막 혈관 해부학에 대한 고처리량 비파괴 정보를 제공하므로 망막 혈관 구조의 이상에 대한 임상 진단에 쉽게 사용됩니다22. 그러나, 망막 색소 상피는 투과된 광을 흡수하고 이들 광학 기술에서 시야의 깊이를 제한하여, 조영제를 사용하지 않고 맥락막 구조 및 기능에 대한 감소된 정보를 제공한다21. 유사한 깊이 한계는 광학 간섭 단층 촬영 (OCT)에서 경험됩니다. 이 기술은 깊이 침투23의 기술적 비용으로 광파를 사용하여 고해상도 안저 혈관 조영술을 생성 할 수 있으며, 향상된 깊이 이미징 OCT는 망막 이미징 품질을 희생하여 맥락막을 시각화 할 수 있습니다24. 자기 공명 영상은 안과 및 OCT의 광학적 한계를 극복하고 낮은 해상도임에도 불구하고 망막의 혈관층을 매핑할 수 있습니다25. 조직학 및 미세 컴퓨터 단층 촬영 (μCT)은 광학 기술의 고해상도를 유지하고 전체 안구 혈관 형태학에 대한 정보를 제공하지만4 두 기술 모두 안구 샘플링이 필요하므로 클리닉이나 희귀하거나 멸종 위기에 처한 종에서는 불가능합니다. 이러한 확립 된 망막 영상 기술의 한계 중 일부를 극복하기 위해, 여기 연구는 마취 된 동물에 대한 초음파 프로토콜을 제시하며, 여기서 혈액 운동은 배아 및 심혈관 영상에 대해 이전에 설명 된 것과 유사한 기술을 적용하여 전체 눈에 걸쳐 일련의 동등한 간격의 이차원 초음파 스캔에 실리코로 매핑됩니다.26,27, 28 및 OCT 혈관 조영술29. 이 접근법은 조영제를 사용하지 않고 비 침습적 입체 심부 안구 혈관 조영술의 생성을 허용하고 종에 걸쳐 눈 내의 혈류 분포를 매핑하기위한 새로운 길을 열어줍니다.

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Protocol

아래 프로토콜은 덴마크 식품수산부, 덴마크 수의학 및 식품청 (허가 번호 2016-15-0201-00835) 내에서 덴마크 동물 실험 검사원의 허가를 받아 수행되었습니다.

1. 마취 및 초음파 매체

  1. 연구 동물을 마취하십시오.
    참고 : 적절한 마취의 유형과 용량은 종에 따라 크게 다릅니다. 일반적으로 MS-222(에틸 3-아미노벤조에이트 메탄설폰산), 벤조카인(에틸 4-아미노벤조에이트) 및 프로포폴(2,6-디이소프로필페놀)과 같은 침지 기반 마취제는 아가미나 피부에 마취제를 쉽게 흡수하는 생선 및 양서류에 유용합니다(예: 0.05 mg· L-1 레인보우 송어에 벤조카인). 정맥내, 근육내, 복강내로 투여될 수 있는 용해된 화합물의 범위는 가스계 마취제와 마찬가지로 암니오트에 사용할 수 있다. 근육 내로 투여되는 알팍살론은 파충류(예를 들어, 도마뱀에서 30mg·kg-1)에 유용하고, 가스로서 투여되는 이소플루란은 조류에서 유용하다(예를 들어, 비둘기의 경우 공기 중 2%). 종에 걸쳐 이용 가능한 마취제에 대한 전체 개요를 보려면 출판 된 문헌30,31,32를 참조하십시오.
  2. 최적의 마취 수준을 확인하기 위해 동물의 반사 신경을 테스트하십시오. 흐름이 강화된 초음파 절차가 동작 소음에 민감하므로 시술 중에 동물이 완전히 움직이지 않는지 확인하십시오.
    1. 너무 깊은 마취는 혈류 패턴을 바꿀 수 있으므로 실험의 시작 단계에서 용량 적정을 수행하십시오.
    2. 마취 복용량을 단계적으로 늘리고 간단한 밝기 모드 (B 모드) 초음파로 도움을받는 눈의 혈류를 관찰하십시오.
      참고 : 최적의 마취 수준은 동물이 안구 혈류가 보이는 움직임이 없을 때 (호흡 제외) 얻어집니다.
  3. 마취제의 유형 / 복용량이 호흡 운동에 허용되지 않는 경우, 예를 들어 공기 펌프를 사용하여 수생 종의 물을 산소화하거나 공기 호흡 종을위한 인공 호흡기를 사용하는 등 동물의 적절한 환기를 보장하십시오.
  4. 위에서 눈에 직접 접근 할 수있는 자세로 동물을 배치하십시오.
    참고 : 종에 따라 이것은 수핀 또는 측면 위치에있을 수 있습니다. 작은 비반응성 금속(예: 스테인리스강)과 느슨한 고무 밴드를 사용하여 간단한 유지 장치를 구성하는 것이 유용할 수 있습니다( 그림 1 참조).
  5. 동물의 눈에 적절한 초음파 매체를 놓습니다. 스케일이 조정 된 눈꺼풀 (초음파 불투과성)이 눈을 덮으면 면봉으로 부드럽게 대체하십시오.
    참고 : 수생 종의 경우, 가장 좋은 초음파 매체는 동물이 보통 사는 깨끗한 탱크 물입니다. 육상 종의 경우, 넉넉한 양의 초음파 젤은 눈의 전체 표면에 걸쳐 초음파 변환기 (즉, 선형 배열 프로브)의 자유로운 움직임과 이미징을 보장합니다. 대측 눈의 수의사 연고는 육상 종에 필요합니다.

2. 2D 및 3D 안구 초음파 이미지 수집

  1. 초음파 트랜스듀서의 내측을 원하는 이미지 방향에 따라 등쪽/복부 또는 로스트랄/코달 방향으로 눈 중앙에 배치합니다.
  2. B 모드에서는 최대 피사계 심도로 눈의 중간 및 가장 깊은 부분을 이미지화하고 관심 있는 모든 구조가 이미지 필드에 표시되는지 확인합니다.
    참고 : 일부 종에서는 크리스탈 렌즈가 유리체 유머의 비교적 큰 비율을 차지하며, 특히 높은 주파수에서 초음파를 흡수 할 수 있습니다.
  3. 실시간 이미지를 검사하는 동안 트랜스듀서를 각 면으로 천천히 변환합니다. 관심있는 모든 구조가 이미지 필드에 표시되는지 확인하십시오. 그렇지 않은 경우 주파수가 낮고 피사계 심도가 더 큰 변환기로 전환하십시오.
    참고: 다음 중심 주파수는 21MHz: 3cm, 40MHz: 1.5cm, 50MHz: 1cm( 1 참조)의 최대 피사계 심도를 허용합니다. 그러나 이러한 최대 피사계 심도 값은 눈이 석회화 또는 기타 초음파 불투과성 구조를 포함하는 경우 현저하게 낮아질 수 있습니다.
  4. 이미지 깊이, 깊이 오프셋(이미지의 상단에서 관심 구조까지의 거리), 이미지 폭, 초점 영역의 수 및 위치를 조정하여 세 가지 공간 차원 모두에서 원하는 관심 영역을 커버합니다(예: 이미지 깊이 1cm, 깊이 오프셋 2mm, 이미지 너비 1cm, 1초점 영역).
    참고: 이러한 매개 변수를 조정하는 단추의 특정 이름은 초음파 시스템마다 다를 수 있지만 대부분의 시스템에는 이러한 조정에 대한 논리적 이름을 가진 단추가 있습니다. 이러한 이미지 매개 변수 설정은 일반적으로 초음파 획득의 가능한 시간 해상도 범위에 영향을 미칩니다.
  5. 프레임 속도를 50-120 프레임 · s-1 범위로 설정합니다.
    참고: 시간 해상도(즉, 연속적인 B-스캔 사이의 시간 간격)는 이미지화된 혈관에서 큰 픽셀 강도 변동성을 표시하기에 적합해야 합니다. 즉, 시간 해상도가 너무 높지 않아야 합니다. 반면에, 적당한 시간 내에 눈의 완전한 3D 레코딩을 완료하기 위해, 시간 해상도는 너무 낮을 수 없다. 50-120 프레임 · s-1 범위의 시간 분해능은 일반적으로 대부분의 종에서 흐름이 강화 된 절차에 적합합니다. 일부 초음파 시스템에서, 이 원하는 시간 분해능은 "일반 영상"(높은 공간적/낮은 시간적 해상도)과 "심장학"(낮은 공간적/높은 시간적 해상도) 모드 사이를 전환함으로써 얻을 수 있다.
  6. 2D 게인을 레벨(~5dB)로 조정하여 해부학적 구조가 B 모드 획득에서만 볼 수 있도록 하여 후속 흐름 강화 재구성에서 신호 대 잡음비를 증가시킵니다.
  7. 단일 슬라이스 위치에서 2D 흐름 향상 이미지를 획득하려면 트랜스듀서를 이 위치로 변환하고 단계 3.1에서 계속하십시오.
  8. 전체 관심 영역, 예를 들어, 망막의 3D 기록을 획득하기 위해, 트랜스듀서를 관심 영역의 하나의 극단으로 변환한다.
    1. 관심 영역의 극단적 끝의 정확한 위치를 결정하려면 2D 게인을 간단히 늘립니다.
    2. 올바른 트랜스듀서 배치가 완료된 후, 레코딩 전에 2D 게인을 낮추어 후속 흐름 향상 재구성에서 최대 신호 대 잡음비를 보장합니다.
  9. 3D 녹화의 각 단계(슬라이스)에 대해 ≥100프레임(최적 ≥1000프레임)을 획득합니다.
  10. 마이크로 매니퓰레이터 또는 내장 트랜스듀서 모터를 사용하여, 예를 들어, 25 μm 또는 50 μm(스텝 크기에 유의해야 함)의 단계로 관심 영역 전체에 걸쳐 트랜스듀서를 변환하고 각 단계에 대해 ≥100 프레임 획득을 반복한다.
  11. 기관의 동물 관리 지침에 따라 연구 동물을 안락사시킵니다.

3. 흐름이 향상된 이미지 재구성

  1. 녹음을 의학(DICOM) 파일 형식(리틀 엔디안)의 디지털 이미징 및 통신으로 내보냅니다.
  2. ≥100프레임(T) 시네 레코딩을 기반으로 단일 흐름 향상 이미지를 생성하려면 다음 공식을 사용하여 픽셀 레벨의 표준 편차(STD(x,y))를 계산합니다.
    Equation 1
    여기서 It(x,y)는 시간 t에서의 (x,y) 픽셀 좌표에서의 픽셀의 강도이고, Īt(x,y)는 시간에 따른 I의 산술 평균값이다.
  3. 3D 녹화의 각 슬라이스에 대해 3.2단계를 반복합니다.
  4. 3D 레코딩에서 여러 슬라이스에 대한 STD 계산 및 이미지 재구성 프로세스를 자동화하려면 ImageJ 및 보조 매크로 스크립트(보충 파일 1)를 사용하여 배치 모드에서 이 작업을 수행합니다.
  5. 재구성된 모든 슬라이스를 하나의 이미지 스택으로 결합합니다(ImageJ에서 이미지 스택으로 명령 참조).
  6. 획득 중에 사용되는 단계 크기에서 슬라이스 두께를 지정합니다(ImageJ의 속성 명령).
  7. 이미지 스택을 3D TIF 파일로 저장합니다.
    참고: 안구 혈관의 유동 가중 입체 기록은 볼륨 렌더링을 생성하고 눈의 혈관 구조에 대한 디지털 및 물리적 해부학 모델을 구축하는 데 사용될 수 있습니다. 이러한 이미지 처리 옵션은 이 프로토콜의 범위를 벗어납니다. 자세한 내용은 이전에 게시된 문서를 참조하십시오.33,34,35.

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Representative Results

눈의 혈관 침대를 영상화하기 위한 유동 강화 초음파 기술은 다양한 종에 적용될 수 있으며 현재 46종의 척추동물에서 사용되고 있다( 1, 표 1). 비 성인 포유류 척추 동물에서 유핵화 된 적혈구의 존재는 시네 기록에서 정적 조직과 비교하여 흐르는 혈액의 긍정적 인 대조를 제공합니다 (보충 파일 2). 그러나 프레임별로 분석하면 혈액과 주변 조직 간의 명확한 구별이 덜 명확합니다 (그림 2A). 이 프로토콜에 설명된 혈류 향상 절차는 기본적으로 2D 공간(T 프레임으로 만들어진 슬라이스)의 다중 시간 지점 기록을 단일 이미지로 컴파일하여 흐르는 혈액 점수에 위치하는 픽셀의 고유 신호 값 변동이 주변 정적 조직보다 높은 표준 편차를 나타내므로 양의 대비를 생성합니다(그림 2B). 혈관 대비를 눈에 띄게 향상시키기 위해 Look Up Tables를 사용하여 의사 컬러 이미지를 생성할 수 있습니다(그림 2C). 3D 획득에서는 간격이 알려진 여러 병렬 슬라이스를 3차원 볼륨 렌더링(그림 2D) 및 해부학 모델링(그림 2E 및 보충 파일 5)에 사용할 수 있는 3D 이미지 데이터(보충 파일 3 보충 파일 4)로 결합할 수 있습니다. 도플러 기반 초음파 이미징은 또한 설명 된 방법보다 감도가 낮지 만 (그림 2G와 그림 2H그림 2I를 비교) 혈류를 구체적으로 이미징 할 수있는 옵션을 제공하며 혈류 방향이 음파의 방향에 직접 또는 수직에 가깝지 않은 경우 중요합니다. 이 프로토콜에 설명된 흐름-향상 절차는 평면 내 및 평면 밖 모두에서 혈류의 방향과 무관합니다.

흐름이 강화된 초음파 시술은 유핵화된 적혈구를 가진 다양한 종에서 혈류 이미징을 가능하게 합니다(그림 3A-D). 일부 물고기에서 맥락막 레테미라빌과 같은 깊은 안구 혈관 침대는 종에 존재하는 경우 이미지화될 수 있다(도 2의 노란색 화살촉, 도 3B, 도 4). 이 방법은 성인 포유류에서 유핵화된 적혈구가 없기 때문에 제한되는데, 여기서 흐름 증진 절차는 어느 정도의 혈류 대비를 생성하지만 유핵화된 적혈구를 가진 종에서처럼 뚜렷하지는 않다(그림 3E,F).

유동-강화된 초음파는 모션 노이즈에 민감하며, 예를 들어, 호흡 움직임은 이미지 블러링 및 조직 경계 향상과 같은 아티팩트를 야기할 수 있다(도 4A-C, 보충 파일 6). 장래의 또는 회고 게이팅을 사용하여 모션 노이즈를 조정할 수 있습니다(그림 4D,E).

Figure 1
도 1: 안구 혈관 구조의 유동 강화 초음파 영상화에 적합한 다양한 종의 예. (A) 금붕어(Carassius auratus). (B) 시베리아 철갑상어(아시펜서 베에리이). (C) 유럽 해저 (Dicentrarchus labrax). (D) 광대 깃털 등 (치탈라 오르나타). (E) 십자군 잉어 (카라시우스 카라시우스). (F) 배아 국내 닭 (Gallus gallus domesticus). 비반응성 금속 중량과 느슨한 고무 밴드(A, C, D)를 사용하여 간단한 유지 장치를 구성하는 것이 유용할 수 있습니다. 대형 움직이지 않는 실험실 기반 초음파 이미징 시스템은 모두 절차 (A-D, F)뿐만 아니라 소규모 현장 수술 시스템 (E)에 사용할 수 있습니다. 배아 조류와 같이 온도 조절 수조에 보유 할 수없는 작고 온도에 민감한 종을 이미징 할 때 샘플이 인큐베이터 (F) 내부에있는 동안 이미징을 수행 할 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 2
그림 2: 안구 초음파 스캔에 대한 흐름 향상의 효과. (A) 1000 프레임 시네 기록에서 금붕어의 눈의 원시 B 모드 초음파 이미지의 예. 혈류는 시네 기록 (보충 파일 2)에서 관찰 될 수 있지만 정적 프레임에서는 볼 수 없습니다. (B) 흐름이 향상된 회색 음영 이미지(A에서와 동일한 슬라이스). 망막 및 망막 후 혈관 침대가 모두 강화됩니다. (C) ImageJ Fire Look Up Table을 사용하여 B에 있는 이미지의 의사 컬러 버전. (D) 3D 획득을 기반으로 A-C에서와 동일한 금붕어의 눈에서 혈류의 볼륨 렌더링 표시. (E) A-D에서 눈의 두 세그먼트 (망막 및 망막 후 혈관) 해부학 적 모델 (대화 형 모델의 경우 보충 자료 5 참조). (F-I) 다른 금붕어(F)의 눈의 원시 B 모드 초음파 이미지는 컬러 도플러 기반 유동 이미징(G)을 이 프로토콜에 설명된 흐름 향상 방법과 비교한다(H-I, 참고 IFH의 오버레이임). 녹색 화살표는 망막 혈관을 나타내고, 노란색 화살촉은 맥락막 레테 미라빌을 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 3
그림 3: 다양한 척추동물 종에서 흐름이 강화된 안구 초음파 이미지의 대표적인 예. (A) 세네갈 비키르 (Polypterus senegalus). (B) 붉은 배꼽 피라냐 (피고센트루스 나테리). (C) 녹색 이구아나 (이구아나 이구아나). (D) 배아 (18 일째) 국내 닭 (Gallus gallus domesticus). (E) 하우스 마우스 (근육 근육). (F) 갈색 쥐 (Rattus norvegicus). 유핵화된 적혈구를 가진 종에서, 흐름-증진 절차는 안구 혈류(A-D)의 유용한 이미지를 산출하는 반면, 성인 포유류(enucleated red blood)에서는 흐르는 혈액과 주변 조직(E-F) 사이의 제한된 대조만을 생성한다. 녹색 화살표는 망막 혈관을 나타냅니다. 파란색 화살촉은 맥락모세관 같은 망막 후 혈관을 나타냅니다. 노란색 화살촉은 맥락막 레테 미라빌을 나타냅니다. 후기 배아 국내 닭에서는 펙텐 오큘리의 혈류를 관찰 할 수 있습니다 (F의 아래쪽 녹색 화살표). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 4
그림 4: 호흡 운동은 회향 게이팅을 통해 완화될 수 있는 동작 소음을 유도합니다. (A-B) 유럽 plaice (Pleuronectes platessa)의 눈에서 호흡 운동의 예. 빨간색 점은 A(슬라이스 54/410)와 B(슬라이스 92/410)에서 동일한 이미지 좌표에 있지만, 눈이 위치를 이동했음을 관찰할 수 있습니다(보충 자료 6의 시네 기록 참조). (c) 전체 410 프레임 기록에 대한 플로우 향상 동작을 수행하려는 시도는 모션 노이즈로 인해 실패한다. 조직 경계는 움직임으로 인해 인위적으로 강화됩니다. (d) A-B의 적색 점에서의 정규화된 신호 강도(SI)에 기초한 회향적 게이팅 동작. 정규화된 SI > 50(총 38개 프레임에서)을 갖는 프레임들, 즉 눈이 B에서와 동일한 위치에 있음을 나타내는 프레임들만이 흐름-향상 절차를 위해 포함된다. (E) 회고적으로 게이트된 흐름-향상 절차의 결과 이미지. C와 비교하십시오. 게이트 이미지에서 인공 경계 강화를 피하고 맥락막 레테 미라 빌 (노란색 화살촉)의 혈류를 관찰 할 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

표 1: 안구 혈류를 이미지화하기 위한 흐름 강화 초음파 기술이 사용된 종의 목록. 이 방법의 적용 가능성은 정적 배경과 비교하여 혈관 침대의 콘트라스트가 풍부한 표현을 생성하는 능력에 기초합니다. 이 테이블을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

보충 파일 1: 흐름 향상 계산을 자동화하는 매크로 스크립트입니다. 스크립트는 IJ1 매크로 언어로 작성되며 ImageJ 매크로 기능(단일 슬라이스 기록용) 또는 ImageJ 배치 프로세스(다중 슬라이스 3D 레코딩용)를 사용하여 둘 다 실행할 수 있습니다. 이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

보충 파일 2 : 금붕어 (카라시우스 오라투스)의 눈에 원시 B 모드 시네 기록. 혈류는 비디오가 재생될 때 관찰될 수 있지만, 도 2A에서와 같이 단일 프레임에서는 관찰되지 않는다. 이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

보충 파일 3 : 혈류가 강화 된 섹션의 금붕어 (Carassius auratus)의 눈을 통해 비디오를 슬라이스하십시오. 이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

보충 파일 4 : 금붕어 (카라시우스 오라투스) 흐름이 강화 된 눈의 입체 TIF 파일. 파일 크기를 최소화하기 위해 이미지를 3 x 3 x 3으로 비닝했습니다(공간 해상도 및 파일 크기의 27배 감소). 이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

보충 파일 5 : 금붕어 (Carassius auratus) 눈에있는 망막 전후 혈관의 대화 형 3D 모델. 이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

보충 파일 6 : 유럽 plaice (Pleuronectes platessa) 의 눈에 원시 B 모드 시네 기록. 호흡 운동에 유의하십시오. 이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.

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Discussion

흐름이 강화된 초음파를 이용한 혈관 영상화는 눈의 혈관구조의 비침습적 영상화를 위한 새로운 방법을 제공하며, 이는 현재의 기술에 비해 몇 가지 장점을 제공하지만 본질적인 한계를 가지고 있다. 흐름이 강화된 초음파의 주요 장점은 망막 색소 상피를 초과하는 피사계 심도를 갖는 안구 혈관조영술을 생성할 수 있다는 것인데, 이는 광학 기술에서 피사계 심도를 제한한다. 초음파 이미징에서 공간 해상도와 피사계 심도는 궁극적으로 초음파 변환기 주파수에 의해 결정되며, 주파수가 높을수록 공간 해상도가 증가하지만 더 얕은 피사계 심도를 희생하므로 트랜스듀서 주파수를 선택하면 이미지 깊이와 공간 해상도 간의 절충안이 생깁니다. 우리의 경험에 비추어 볼 때, 이미지 깊이가 ≥1cm인 작은 눈에는 고주파 초음파 트랜스듀서(<50MHz)를, 이미지 깊이가 1.5-3.0cm인 큰 눈에는 저주파 트랜스듀서(20-40MHz)를 사용하여 최적의 망막 초음파 이미징을 구현합니다. 3D 초음파 스캔의 경우 추가 슬라이스 차원의 해상도는 2D 초음파 스캔 스택의 스캔 사이의 단계 크기에 따라 설정됩니다. 우리의 경험에 비추어 볼 때, 20 μm보다 작은 스텝 크기로 3D 스캔을 수행하는 것은 어렵습니다.

흐름이 향상된 2D 초음파는 높은 시간 해상도를 가지고 있습니다. 이상적으로는 흐름이 강화된 혈관 이미징에 이미지당 ≥1000프레임이 필요하므로 이미지 스캔당 최소 8초가 필요합니다. 시간 해상도는 3D 흐름이 향상된 초음파를 수행할 때 크게 감소하며, 여기서 스캔 시간은 3D 스캔 스택의 이미지 수에 따라 증가합니다. 높은 시간 분해능을 감안할 때, 흐름이 강화된 2D 초음파 워크플로우는 실험 조작 중 상대적 혈류 속도와 혈류 분포의 시간적 변화를 식별하는 방법으로 강력한 잠재력을 보여줍니다. 따라서 향후 연구는 워크 플로를 사용하여 변경된 환경 조건 (예 : 온도, pO2, pCO2) 또는 약리학 적 투여가 눈 및 기타 기관의 혈류에 어떻게 영향을 미치는지 식별 할 수 있습니다.

초음파 워크 플로우는 대부분의 비 포유류 척추 동물의 유핵화 된 적혈구의 긍정적 인 대조에 의존합니다. 따라서, 성인 포유동물 및 일부 도롱뇽 종37 의 봉합된 적혈구는 현재의 워크플로우를 사용하여 혈류를 효과적으로 향상시키기에는 너무 적은 대조를 제공한다(도 3E, F). 전통적인 초음파 워크플로우에서, 마이크로버블의 혈관 주사는 포유동물에서 혈관구조를 식별하기에 충분히 높은 콘트라스트를 제공하며38, 이는 쥐 눈 내의 역행 혈관의 혈관 혈관조영술을 생성하는데 사용되어 왔다39. 그러나 마이크로 버블은 몇 분 안에 파열되므로 3D 혈관 조영술을 생성하려면 연속적인 마이크로 버블 주사가 필요합니다.

흐름이 강화된 초음파는 눈의 동일한 위치에 있는 순차적 기록에 의존하므로, 경미한 무작위 움직임이 이미지를 상쇄하고 흐름 향상 계산을 훼손할 수 있는 깨어 있는 동물에서는 이 기술이 불가능합니다. 따라서, 본 방법은 무작위 이동을 감소시킴으로써 이미지 품질을 향상시키기 위해 고정화를 위한 적절한 마취 하에 수행되어야 한다. 그러나 정기적 인 호흡 운동 중에 발생하는 눈의 규칙적인 움직임은 동물의 환기 패턴에 대한 전향적 또는 소급 게이팅에 의해 상쇄 될 수 있으므로 환기주기 내에서 동일한 시간 간격에서 스캔 기록 만 데이터 분석에 사용됩니다. 이미지의 환기 움직임을 오프셋하는 회고적 게이팅 접근법은 이미지 안정성을 크게 향상시키지만, 신호 강도의 표준 편차를 계산하는 데 포함된 프레임 수를 뚜렷하게 줄여 신호 대 잡음비의 감소를 초래합니다(그림 4E그림 2C그림 2I 비교 ). 이 효과는 초음파 스캐너에서 유망한 게이팅을 사용하여 완화되며, 여기서 이미지 데이터는 동물이 원하는 호흡 단계에있을 때만 수집됩니다. 그러나, 이것은 원하는 수의 프레임들≥1000)이 획득되어야 하는 경우에 획득 시간의 현저한 증가를 야기한다.

우리는 눈 혈관 구조의 생리학 및 해부학을 매핑하기 위해 흐름이 강화 된 초음파 워크 플로우에 대한 동물 및 수의사 연구에서 여러 가지 응용 프로그램을 봅니다. 광선 지느러미 물고기, 포유류 및 조류의 혈관 구조는 비교적 잘 설명되어 있습니다.1,3,4,8,9,12,15,40, 그러나 이것은 뼈가 아닌 물고기 (턱이없는 척추 동물 및 콘드리치 시안), 양서류 및 파충류의 경우는 그렇지 않습니다. 이러한 잘 이해되지 않은 동물 그룹에 흐름이 강화 된 초음파를 구현하고보다 잘 연구 된 그룹에 대한 지식과 이러한 데이터를 통합하면 척추 동물의 혈관 구조의 진화에 대한 근본적인 통찰력을 얻을 수 있습니다. 눈의 혈관구조는 밀접한 관련이 있는 종4에서 유사하기 때문에, 광범위한 종의 안구 혈관구조에 대한 이러한 상세한 정보는 수의사가 발달 결함, 질병 또는 신체적 상해로 인한 눈의 혈관구조에서 기형을 식별할 수 있는 기준점을 제공할 것이다. 또한, 높은 시공간 분해능으로 2D 혈류 정보를 획득하는 능력은 약물 개발 및 테스트에 방대한 응용과 함께 심층 혈관 층에서의 혈류 분포에 대한 약동학적 효과를 정량화하는 수단을 제공한다. 이 기술에 대한 미래의 연구는 침강 된 적혈구가있는 종에서 혈액의 대비를 향상시키는 주사 가능한 화합물을 식별하는 데 초점을 맞추어야하며,이 기술의 적용 가능성을 생물 의학 연구 및 눈 및 기타 심층 혈관 병상의 혈관 기능 장애의 임상 진단에 광범위하게 적용 할 수있는 포유류에게이 기술의 적용 가능성을 확대 할 것입니다.

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Disclosures

저자들은 완전한 이익이 존재하지 않는다고 선언합니다.

Acknowledgments

이 작품은 칼스버그 재단 (CF17-0778; CF18-0658), 룬드벡 재단 (R324-2019-1470; R346-2020-1210), Velux Foundations (00022458), 의학 발전을위한 A.P. Møller 재단, Marie Skłodowska-Curie 보조금 계약 (No. 754513)에 따른 유럽 연합의 Horizon 2020 연구 및 혁신 프로그램 및 오르후스 대학 연구 재단.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
MS-222 Sigma E10521-50G
Benzocaine Sigma E-1501
Propofol B Braun
12260470_0320
Alfaxalon Jurox NA
Isoflurane Zoetis 50019100
Ultrasound scanner VisualSonics Vevo 2100

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References

  1. Yu, C. Q., Schwab, I. R., Dubielzig, R. R. Feeding the vertebrate retina from the Cambrian to the Tertiary. Journal of Zoology. 278 (4), 259-269 (2009).
  2. Yu, D. Y., Cringle, S. J. Oxygen distribution and consumption within the retina in vascularised and avascular retinas and in animal models of retinal disease. Progress in Retinal and Eye Research. 20 (2), 175-208 (2001).
  3. Country, M. W. Retinal metabolism: A comparative look at energetics in the retina. Brain Research. 1672, 50-57 (2017).
  4. Damsgaard, C., et al. Retinal oxygen supply shaped the functional evolution of the vertebrate eye. Elife. , 8 (2019).
  5. Buttery, R. G., Hinrichsen, C. F. L., Weller, W. L., Haight, J. R. How thick should a retina be? A comparative study of mammalian species with and without intraretinal vasculature. Vision Research. 31 (2), 169-187 (1991).
  6. Ames, A., Li, Y., Heher, E., Kimble, C. Energy metabolism of rabbit retina as related to function: high cost of Na+ transport. The Journal of Neuroscience. 12 (3), 840-853 (1992).
  7. Chase, J. The Evolution of retinal vascularization in mammals: A comparison of vascular and avascular retinae. Ophthalmology. 89 (12), 1518-1525 (1982).
  8. Johnson, G. L. Ophthalmoscopic studies on the eyes of mammals. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 254 (794), 207-220 (1968).
  9. Johnson, G. L. I. Contributions to the comparative anatomy of the mammalian eye, chiefly based on ophthalmoscopic examination. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 194 (194-206), 1-82 (1901).
  10. Rodriguez-Ramos Fernandez, J., Dubielzig, R. R. Ocular comparative anatomy of the family Rodentia. Veterinary Ophthalmology. 16, 94-99 (2013).
  11. Copeland, D. E. Functional vascularization of the teleost eye. Current Topics in Eye Research. 3, 219-280 (1980).
  12. Meyer, D. B. The Visual System in Vertebrates. Handbook of Sensory Physiology. Crescitelli, F. 7, Springer. Berlin, Heidelberg. (1977).
  13. Potier, S., Mitkus, M., Kelber, A. Visual adaptations of diurnal and nocturnal raptors. Seminars in Cell & Developmental Biology. 106, 116-126 (2020).
  14. Wittenberg, J. B., Wittenberg, B. A. Active secretion of oxygen into the eye of fish. Nature. 194, 106-107 (1962).
  15. Damsgaard, C. Physiology and evolution of oxygen secreting mechanism in the fisheye. Comparative Biochemistry and Physiology. 252, 110840 (2021).
  16. Damsgaard, C., et al. A novel acidification mechanism for greatly enhanced oxygen supply to the fish retina. Elife. 9, (2020).
  17. Wittenberg, J. B., Haedrich, R. L. The choroid rete mirabile of the fish eye. II. Distribution and relation to the pseudobranch and to the swimbladder rete mirabile. Biological Bulletin. 146 (1), 137-156 (1974).
  18. Wittenberg, J. B., Wittenberg, B. A. The choroid rete mirabile of the fish eye. I. Oxygen secretion and structure: comparison with the swimbladder rete mirabile. Biological Bulletin. 146 (1), 116-136 (1974).
  19. Berenbrink, M. Historical reconstructions of evolving physiological complexity: O2 secretion in the eye and swimbladder of fishes. Journal of Experimental Biology. 210, Pt 9 1641-1652 (2007).
  20. Berenbrink, M., Koldkjaer, P., Kepp, O., Cossins, A. R. Evolution of oxygen secretion in fishes and the emergence of a complex physiological system. Science. 307 (5716), 1752-1757 (2005).
  21. Keane, P. A., Sadda, S. R. Retinal imaging in the twenty-first century: State of the art and future directions. Ophthalmology. 121 (12), 2489-2500 (2014).
  22. Yung, M., Klufas, M. A., Sarraf, D. Clinical applications of fundus autofluorescence in retinal disease. International Journal of Retina and Vitreous. 2 (1), 12 (2016).
  23. Ang, M., et al. Optical coherence tomography angiography: a review of current and future clinical applications. Graefe's Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 256 (2), 237-245 (2018).
  24. Spaide, R. F., Koizumi, H., Pozonni, M. C. Enhanced depth imaging spectral-domain optical coherence tomography. American Journal of Ophthalmology. 146 (4), 496-500 (2008).
  25. Shen, Q., et al. Magnetic resonance imaging of tissue and vascular layers in the cat retina. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 23 (4), 465-472 (2006).
  26. Tan, G. X., Jamil, M., Tee, N. G., Zhong, L., Yap, C. H. 3D reconstruction of chick embryo vascular geometries using non-invasive high-frequency ultrasound for computational fluid dynamics studies. Annals of Biomedical Engineering. 43 (11), 2780-2793 (2015).
  27. Ho, S., Tan, G. X. Y., Foo, T. J., Phan-Thien, N., Yap, C. H. Organ dynamics and fluid dynamics of the HH25 chick embryonic cardiac ventricle as revealed by a novel 4D high-frequency ultrasound imaging technique and computational flow simulations. Annals of Biomedical Engineering. 45 (10), 2309-2323 (2017).
  28. Dittrich, A., Thygesen, M. M., Lauridsen, H. 2D and 3D echocardiography in the Axolotl (Ambystoma Mexicanum). Journal of Visualized Experiments: JoVE. (141), e57089 (2018).
  29. Jia, Y., et al. Split-spectrum amplitude-decorrelation angiography with optical coherence tomography. Optics Express. 20 (4), 4710-4725 (2012).
  30. Clarke, K. W., Trim, C. M., Trim, C. M. Veterinary Anaesthesia E-Book. , Elsevier Health Sciences. (2013).
  31. Flecknell, P. Laboratory Animal Anaesthesia. , Elsevier Science & Technology. (2015).
  32. West, G., Heard, D., Caulkett, N. Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia. , John Wiley & Sons, Inc. (2014).
  33. Lauridsen, H., Hansen, K., Nørgård, M. Ø, Wang, T., Pedersen, M. From tissue to silicon to plastic: three-dimensional printing in comparative anatomy and physiology. Royal Society Open Science. 3 (3), 150643 (2016).
  34. Lauridsen, H., et al. Inside out: Modern imaging techniques to reveal animal anatomy. PLoS One. 6 (3), 17879 (2011).
  35. Ruthensteiner, B., Heß, M. Embedding 3D models of biological specimens in PDF publications. Microscopy Research and Technique. 71 (11), 778-786 (2008).
  36. Damsgaard, C., Lauridsen, H. Deep vascular imaging in the eye with flow-enhanced ultrasound. bioRxiv. , 447055 (2021).
  37. Mueller, R. L., Ryan Gregory, T., Gregory, S. M., Hsieh, A., Boore, J. L. Genome size, cell size, and the evolution of enucleated erythrocytes in attenuate salamanders. Zoology. 111 (3), 218-230 (2008).
  38. Greis, C. Quantitative evaluation of microvascular blood flow by contrast-enhanced ultrasound (CEUS). Clinical Hemorheology and Microcirculation. 49, 137-149 (2011).
  39. Urs, R., Ketterling, J. A., Tezel, G., Silverman, R. H. Contrast-enhanced plane-wave ultrasound imaging of the rat eye. Experimental Eye Research. 193, 107986 (2020).
  40. Walls, G. L. The vertebrate eye and its adaptive radiation. , Cranbrook Institute of Science. Michigan. (1942).

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생물학 문제 176
흐름이 향상된 초음파로 눈의 깊은 혈관 이미징
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Damsgaard, C., Lauridsen, H. DeepMore

Damsgaard, C., Lauridsen, H. Deep Vascular Imaging in the Eye with Flow-Enhanced Ultrasound. J. Vis. Exp. (176), e62986, doi:10.3791/62986 (2021).

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