Dit protocol presenteert een radioactief gelabelde aminozuuropnametest, die nuttig is voor het evalueren van aminozuurconsumptie in primaire cellen of in geïsoleerde botten.
Botontwikkeling en homeostase is afhankelijk van de differentiatie en activiteit van botvormende osteoblasten. Osteoblastdifferentiatie wordt sequentieel gekenmerkt door proliferatie gevolgd door eiwitsynthese en uiteindelijk botmatrixsecretie. Proliferatie en eiwitsynthese vereisen een constante toevoer van aminozuren. Desondanks is er zeer weinig bekend over aminozuurconsumptie bij osteoblasten. Hier beschrijven we een zeer gevoelig protocol dat is ontworpen om aminozuurconsumptie te meten met behulp van radioactief gelabelde aminozuren. Deze methode is geoptimaliseerd om veranderingen in aminozuuropname te kwantificeren die geassocieerd zijn met osteoblastproliferatie of -differentiatie, medicijn- of groeifactorbehandelingen of verschillende genetische manipulaties. Belangrijk is dat deze methode door elkaar kan worden gebruikt om aminozuurconsumptie in gekweekte cellijnen of primaire cellen in vitro of in geïsoleerde botschachten ex vivo te kwantificeren. Ten slotte kan onze methode eenvoudig worden aangepast om het transport van een van de aminozuren te meten, evenals glucose en andere radioactief gelabelde voedingsstoffen.
Aminozuren zijn organische verbindingen die een amino (-NH2) en carboxyl (-COOH) functionele groepen bevatten met een variabele zijketen die specifiek is voor elk aminozuur. Over het algemeen staan aminozuren bekend als het basisbestanddeel van eiwitten. Meer recent zijn nieuwe toepassingen en functies van aminozuren opgehelderd. Individuele aminozuren kunnen bijvoorbeeld worden gemetaboliseerd om intermediaire metabolieten te genereren die bijdragen aan bio-energetica, functioneren als enzymatische cofactoren, reactieve zuurstofsoorten reguleren of worden gebruikt om andere aminozuren te synthetiseren 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10 . Veel studies tonen aan dat aminozuurmetabolisme van cruciaal belang is voor celpluripotentie, proliferatie en differentiatie in verschillende contexten 3,6,11,12,13,14,15,16,17.
Osteoblasten zijn secretoire cellen die de collageen type 1 rijke extracellulaire botmatrix produceren en afscheiden. Om hoge snelheden van eiwitsynthese tijdens botvorming te ondersteunen, vragen osteoblasten om een constante toevoer van aminozuren. Om aan deze vraag te voldoen, moeten osteoblasten actief aminozuren verwerven. In overeenstemming hiermee onthullen recente studies het belang van aminozuuropname en metabolisme in osteoblastactiviteit en botvorming 15,16,17,18,19,20.
Osteoblasten verwerven cellulaire aminozuren uit drie belangrijke bronnen: extracellulair milieu, intracellulaire eiwitafbraak en de novo aminozuurbiosynthese. Dit protocol zal zich richten op de evaluatie van aminozuuropname uit extracellulaire omgeving. De meest gebruikelijke methoden om de opname van aminozuren te meten, zijn afhankelijk van radioactief gelabelde (bijv. 3H of 14C) of zware isotoop gelabelde (bijv. 13C) aminozuren. Zware isotopomesten kunnen de opname en het metabolisme van aminozuren grondiger en veiliger analyseren, maar zijn tijdrovender en het duurt meerdere dagen om te voltooien, omdat het een dag duurt om monsters voor te bereiden en te derivatiseren en meerdere dagen om te analyseren op de massaspectrometer, afhankelijk van het aantal monsters21,22. Ter vergelijking: radioactief gelabelde aminozuuropnametests zijn niet informatief over het downstream-metabolisme, maar zijn goedkoop en relatief snel, omdat ze binnen 2-3 uur na het begin van het experiment kunnen worden voltooid 23,24. Hier beschrijven we een gemakkelijk te wijzigen basisprotocol dat is ontworpen om de opname van radioactief gelabelde aminozuren in gekweekte primaire cellen of cellijnen in vitro of individuele botschachten ex vivo te evalueren. De toepassing van deze twee protocollen kan worden uitgebreid naar andere radioactief gelabelde aminozuren en andere bot geassocieerde celtypen en weefsels.
Het hierin beschreven protocol biedt een snelle en gevoelige benadering om de opname van aminozuren te evalueren als reactie op verschillende experimentele permutaties, hetzij in vitro of ex vivo. In vergelijking met in de handel verkrijgbare kits (bijv. Glutamine en Glutamaat Determination Kit), is deze methode veel gevoeliger, sneller en minder arbeidsintensief 16,17,25. In ons protocol evalueren we de opname…
The authors have nothing to disclose.
Het Karner-lab wordt ondersteund door R01-subsidies van het National Institute of Health (AR076325 en AR071967) aan C.M.K.
0.25% trypsin | Gibco | 25200 | |
12-well plate | Corning | 3513 | |
1mL syringe | BD precision | 309628 | |
30G Needle | BD precision | 305106 | |
Arginine Monohydrochloride L-[2,3,4-3H]-, 1mCi | PerkinElmer | NET1123001MC | |
Beckman LS6500 scintillation counter | |||
Calcium chloride | Sigma | C1016 | |
choline chloride | Sigma | C7077 | |
D-(+)-Glucose solution | Sigma | G8769 | |
Dissection Tool | Forceps, scissors, scapels | ||
DPBS | Gibco | 14190 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Sigma | E9884 | |
HEPES(1M) | Gibco | 15630 | |
L-[3,4-3H(N)]-Glutamine | PerkinElmer | NET551250UC | |
Liquid scintilation vials | Sigma | Z190535 | |
lithium chloride solution, 8M | Sigma | L7026 | |
Magnesium chloride | Sigma | M8266 | |
MEMα | Gibco | 12561 | |
Microcentrifuge tube, 15mL | Biotix | 89511-256 | |
NP-40 | Sigma | 492016 | |
Potassium chloride | Sigma | P3911 | |
Sodium bicarbonate | Sigma | S6014 | |
sodium chloride | Sigma | S9888 | |
Sodium Deoxycholate | Sigma | D6750 | |
Sodium dodecyl sulfate | Sigma | 436143 | |
Sonicator | Sonic&Materials | VCX130 | |
Tris Base | Sigma | 648311 | |
Ultima Gold (Scintillation solution) | PerkinElmer | 6013329 | |
α-(Methylamino)isobutyric acid | Sigma | M2383 |