Summary

فحص مكتبة shRNA المجمعة لتحديد العوامل التي تعدل النمط الظاهري لمقاومة الأدوية

Published: June 17, 2022
doi:

Summary

يمكن أن يكون فحص تداخل الحمض النووي الريبي عالي الإنتاجية (RNAi) باستخدام مجموعة من الحمض النووي الريبوزي المرسال (shRNAs) الفيروسي الوراثي أداة للكشف عن الأهداف القاتلة الاصطناعية ذات الصلة علاجيا في الأورام الخبيثة. نحن نقدم نهج فحص shRNA مجمع للتحقيق في المؤثرات اللاجينية في سرطان الدم النخاعي الحاد (AML).

Abstract

يعد فهم آليات المحرك ذات الصلة سريريا للمقاومة الكيميائية المكتسبة أمرا بالغ الأهمية لتوضيح طرق التحايل على المقاومة وتحسين البقاء على قيد الحياة لدى المرضى الذين يعانون من سرطان الدم النخاعي الحاد (AML). جزء صغير من خلايا اللوكيميا التي تنجو من العلاج الكيميائي لديها حالة جينية متزنة لتحمل إهانة العلاج الكيميائي. يسمح التعرض الإضافي للعلاج الكيميائي لهذه الخلايا الثابتة للأدوية بالوصول إلى حالة جينية ثابتة ، مما يؤدي إلى تغيير التعبير الجيني ، مما يؤدي إلى انتشار هذه المجموعات السكانية المقاومة للأدوية وفي النهاية الانتكاس أو المرض الحراري. لذلك ، فإن تحديد التعديلات اللاجينية التي تتطلب بقاء خلايا اللوكيميا المقاومة للأدوية أمر بالغ الأهمية. نحن نفصل بروتوكولا لتحديد المعدلات اللاجينية التي تتوسط المقاومة للسيتارابين التناظري للنيوكليوزيد (AraC) باستخدام فحص مكتبة shRNA المجمعة في خط خلية AML مقاوم للسيتارابين مكتسب. تتكون المكتبة من 5,485 بنية shRNA تستهدف 407 عوامل جينية بشرية ، مما يسمح بفحص العوامل اللاجينية عالية الإنتاجية.

Introduction

ظلت الخيارات العلاجية في سرطان الدم النخاعي الحاد (AML) دون تغيير على مدى العقود الخمسة الماضية تقريبا ، مع السيتارابين (AraC) والجمرة الخبيثة كحجر الزاوية لعلاج المرض. أحد التحديات التي تواجه نجاح العلاج AML هو مقاومة الخلايا الجذعية الكروية البيض للعلاج الكيميائي ، مما يؤدي إلى انتكاس المرض 1,2. يلعب التنظيم اللاجيني دورا حيويا في التسبب في السرطان ومقاومة الأدوية ، وقد ظهرت العديد من العوامل اللاجينية كأهداف علاجية واعدة3،4،5. تؤثر الآليات التنظيمية اللاجينية على الانتشار والبقاء على قيد الحياة في ظل التعرض المستمر لعقاقير العلاج الكيميائي. وقد أفادت الدراسات التي أجريت على الأورام الخبيثة غير الدموية أن جزءا صغيرا من الخلايا التي تتغلب على تأثير الدواء تخضع لتعديلات جينية مختلفة ، مما يؤدي إلى بقاء تلك الخلايا على قيد الحياة 6,7. ومع ذلك ، لم يتم استكشاف دور العوامل اللاجينية في التوسط في المقاومة المكتسبة للسيتارابين في AML.

الفحص عالي الإنتاجية هو نهج لاكتشاف الأدوية اكتسب أهمية عالمية بمرور الوقت وأصبح طريقة قياسية في جوانب مختلفة لتحديد الأهداف المحتملة في الآليات الخلوية ، لتوصيف المسار ، وعلى المستوى الجزيئي 8,9. ينطوي مفهوم الفتك الاصطناعي على التفاعل بين جينين حيث يكون اضطراب أي من الجين وحده قابلا للتطبيق ولكن كلا الجينين في وقت واحد يؤدي إلى فقدان الجدوى10. يمكن أن يساعد استغلال الفتك الاصطناعي في علاج السرطان في تحديد التفاعلات الجينية القاتلة الاصطناعية القوية وتوصيفها ميكانيكيا11. لقد اعتمدنا نهجا توافقيا لفحص الحمض النووي الريبوزي المرسال عالي الإنتاجية مع الفتك الاصطناعي لتحديد العوامل اللاجينية المسؤولة عن مقاومة السيتارابين المكتسبة في AML.

من المعروف أن سرطان الدم الحاد الناجم عن نقل الكروموسومات لجين سرطان الدم المختلط السلالة (MLL أو KMT2A) يرتبط بضعف البقاء على قيد الحياة لدى المرضى. يمكن للمنتجات الخيمرية الناتجة عن إعادة ترتيب جين MLL ، أي بروتينات اندماج MLL (MLL-FPs) ، تحويل الخلايا الجذعية / السلفية المكونة للدم (HSPCs) إلى انفجارات اللوكيميا بمشاركة عوامل جينية متعددة. تشكل هذه المنظمين اللاجينيين شبكة معقدة تملي الحفاظ على برنامج سرطان الدم ، وبالتالي ، يمكن أن تشكل أهدافا علاجية محتملة. في هذا السياق ، استخدمنا خط الخلايا MV4-11 (الذي يؤوي جين الاندماج MLL MLL-AF4 مع طفرة FLT3-ITD ؛ يطلق عليه MV4-11 P) لتطوير خط الخلايا المقاوم للسيتارابين المكتسب ، والذي يطلق عليه MV4-11 AraC R. تعرض خط الخلية لجرعات متزايدة من السيتارابين مع الشفاء المتقطع من العلاج الدوائي ، والمعروف باسم عطلة المخدرات. تم تقييم التركيز المثبط نصف الأقصى (IC50) عن طريق فحص السمية الخلوية في المختبر .

استخدمنا مكتبة shRNA اللاجينية المجمعة (انظر جدول المواد) التي يقودها مروج hEF1a مع العمود الفقري pZIP lentivirus. تضم هذه المكتبة الحمض النووي الريبوزي المرسال الذي يستهدف 407 عوامل جينية. يحتوي كل عامل على 5-24 shRNAs ، مع ما مجموعه 5,485 shRNAs ، بما في ذلك خمسة shRNAs غير مستهدفة. تم تحسين سقالة “UltrmiR” المعدلة miR-30 من أجل التكوين الحيوي الأولي الفعال ل shRNA والتعبير12,13.

ويوضح الشكل 1 ألف الخطوط العريضة لهذه التجربة. يركز البروتوكول الحالي على فحص الحمض النووي الريبي باستخدام مكتبة العامل اللاجيني shRNA في خط خلية MV4-11 AraC R (الشكل 1B) ، وهو خط خلية معلقة. يمكن استخدام هذا البروتوكول لفحص أي مكتبة مستهدفة في أي خط خلية مقاوم للأدوية من اختياره. تجدر الإشارة إلى أن بروتوكول النقل سيكون مختلفا بالنسبة للخلايا الملتصقة.

Protocol

اتبع المبادئ التوجيهية للجنة السلامة الأحيائية المؤسسية (IBSC) واستخدم المرفق المناسب للتعامل مع الفيروس اللئيم (BSL-2). وينبغي تدريب الموظفين تدريبا مناسبا على مناولة الفيروس الخبيث والتخلص منه. يتبع هذا البروتوكول المبادئ التوجيهية للسلامة الأحيائية للكلية الطبية المسيحية في فيلور. <p clas…

Representative Results

ويبين الشكل 1 ألف سير عمل الفحص العام. كشفت السمية الخلوية في المختبر ل MV4-11 AraC R (48 ساعة) أن IC50 إلى cytarabine في MV4-11 AraC R أعلى من MV4-11 P (الشكل 1B). تم استخدام هذا الخط الخلوي في الدراسة كنموذج لفحص العوامل اللاجينية المسؤولة عن مقاومة السيتارابين. <p class=…

Discussion

يستخدم تداخل الحمض النووي الريبي (RNAi) على نطاق واسع في دراسات الجينوم الوظيفية، والتي تشمل فحص الحمض النووي الريبوزي المرسال والحمض النووي الريبوزي المرسال. تتمثل فائدة shRNA في أنه يمكن دمجها في ناقلات البلازميد ودمجها في الحمض النووي الجيني ، مما يؤدي إلى تعبير مستقر ، وبالتالي ، ضربة قاض?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

يتم تمويل هذه الدراسة جزئيا من خلال منحة من إدارة التكنولوجيا الحيوية BT/PR8742/AGR/36/773/2013 إلى SRV ؛ وإدارة التكنولوجيا الحيوية في الهند BT/COE/34/SP13432/2015 ووزارة العلوم والتكنولوجيا في الهند: EMR/2017/003880 إلى P.B. يتم دعم RVS و P.B. من قبل Wellcome DBT India Alliance IA/S/17/1/503118 و IA/S/15/1/501842 ، على التوالي. يتم دعم S.D. من قبل زمالة CSIR-UGC ، ويتم دعم S.I. من قبل زمالة أبحاث ICMR العليا. نشكر Abhirup Bagchi و Sandya Rani وموظفي المرفق الأساسي لقياس التدفق الخلوي CSCR على مساعدتهم. كما نشكر MedGenome Inc. على المساعدة في تسلسل الإنتاجية العالية وتحليل البيانات.

Materials

Reagents
100 bp Ladder Hyper Ladder BIOLINE BIO-33025
1kb Ladder Hyper Ladder BIOLINE BIO-33056
Agarose Lonza Seachekm 50004
Betaine (5mM) Sigma B03001VL
Boric Acid Qualigens 12005
Cell culture plasticware Corning as appicable
Cytosine β-D-arabinofuranoside hydrochloride Sigma C1768-500MG
DMEM MP BIO 91233354
DMSO Wak Chemie GMBH Cryosure DMSO 10ml
EDTA Sigma E5134
Ethidium Bromide Sigma E1510-10 mL
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 16000044
Gel/PCR Purification Kit MACHEREY-NAGEL REF 740609.50
Gibco- RPMI 1640 Thermo Fisher Scientific 23400021
Glacial Acetic Acid Thermo Q11007
hCMV GFP Plasmid Transomics TransOmics Promoter selection KIT
hEF1a GFPlasmid Transomics TransOmics Promoter selection KIT
HEK 293T ATCC CRL-11268
HL60 cell line ATCC CCL-240
KOD Hot Start Polymerase Merck 71086
Molm13 cell line Ellen Weisberg Lab, Dana Farber Cancer Institute, Boston, MA, USA Dana Farber Cancer Institute, Boston, MA, USA
MV4-11 cell line ATCC CRL-9591
Penicillin streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122
psPAX2 and pMD2.G Addgene Addgene plasmid no.12260 & Addgene plasmid no. 12259
Qubit dsDNA HS Assay Kit Invitrogen REF Q32854
SFFV  GFP Plasmid Transomics TransOmics Promoter selection KIT
shERWOOD-UltrmiR shRNA Library from Transomics Transomics Cat No. TLH UD7409; Lot No: A116.V 132.14
Trans-IT-LTI Mirus Mirus Mirus Catalog Number: MIR2300
Tris MP Biomedicals 0219485591
Trypan Blue Sigma-Aldrich T8154-100ML
Ultra centrifuge Tubes Beckman Coulter  103319
Equipments
5% CO2 incubator Thermo Fisher
BD Aria III cell sorter Becton Dickinson
Beckman Coulter Optima L-100K- Ultracentrifugation Beckman coulter
Centrifuge Thermo Multiguge 3SR+
ChemiDoc Imaging system (Fluro Chem M system) Fluro Chem
Leica AF600 Leica
Light Microscope Zeiss Axiovert 40c
Nanodrop Thermo Scientific
Qubit 3.0 Fluorometer Invitrogen
Thermal Cycler BioRad

References

  1. Döhner, H., Weisdorf, D. J., Bloomfield, C. D. Acute myeloid leukemia. The New England Journal of Medicine. 373 (12), 1136-1152 (2015).
  2. De Kouchkovsky, I., Abdul-Hay, M. Acute myeloid leukemia: A comprehensive review and 2016 update. Blood Cancer Journal. 6 (7), 441 (2016).
  3. Zuber, J., et al. RNAi screen identifies Brd4 as a therapeutic target in acute myeloid leukaemia. Nature. 478 (7370), 524-528 (2011).
  4. Shi, J., et al. The Polycomb complex PRC2 supports aberrant self-renewal in a mouse model of MLL-AF9;NrasG12D acute myeloid leukemia. Oncogene. 32 (7), 930-938 (2013).
  5. Chen, C. -. W., et al. DOT1L inhibits SIRT1-mediated epigenetic silencing to maintain leukemic gene expression in MLL-rearranged leukemia. Nature Medicine. 21 (4), 335-343 (2015).
  6. Li, F., et al. In vivo epigenetic CRISPR screen identifies Asf1a as an immunotherapeutic target in Kras-mutant lung adenocarcinoma. Cancer Discovery. 10 (2), 270-287 (2020).
  7. Balch, C., Huang, T. H. -. M., Brown, R., Nephew, K. P. The epigenetics of ovarian cancer drug resistance and resensitization. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 191 (5), 1552-1572 (2004).
  8. Carnero, A. High throughput screening in drug discovery. Clinical and Translational Oncology. 8 (7), 482-490 (2006).
  9. Lal-Nag, M., et al. A high-throughput screening model of the tumor microenvironment for ovarian cancer cell growth. SLAS Discovery: Advancing Life Sciences R & D. 22 (5), 494-506 (2017).
  10. O’Neil, N. J., Bailey, M. L., Hieter, P. Synthetic lethality and cancer. Nature Reviews Genetics. 18 (10), 613-623 (2017).
  11. Hoffman, G. R., et al. Functional epigenetics approach identifies BRM/SMARCA2 as a critical synthetic lethal target in BRG1-deficient cancers. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (8), 3128-3133 (2014).
  12. Fellmann, C., et al. An optimized microRNA backbone for effective single-copy RNAi. Cell Reports. 5 (6), 1704-1713 (2013).
  13. Knott, S. R. V., et al. A computational algorithm to predict shRNA potency. Molecular Cell. 56 (6), 796-807 (2014).
  14. Papaemmanuil, E., et al. Genomic classification and prognosis in acute myeloid leukemia. New England Journal of Medicine. 374 (23), 2209-2221 (2016).
  15. Vidal, S. J., Rodriguez-Bravo, V., Galsky, M., Cordon-Cardo, C., Domingo-Domenech, J. Targeting cancer stem cells to suppress acquired chemotherapy resistance. Oncogene. 33 (36), 4451-4463 (2014).
  16. Evers, B., et al. CRISPR knockout screening outperforms shRNA and CRISPRi in identifying essential genes. Nature Biotechnology. 34 (6), 631-633 (2016).

Play Video

Cite This Article
Das, S., Stallon Illangeswaran, R. S., Ijee, S., Kumar, S., Velayudhan, S. R., Balasubramanian, P. Pooled shRNA Library Screening to Identify Factors that Modulate a Drug Resistance Phenotype. J. Vis. Exp. (184), e63383, doi:10.3791/63383 (2022).

View Video