Summary

ホルマリン固定およびパラフィン包埋組織サンプルの質量分析イメージングを用いた腫瘍微小環境の理解を広げる

Published: June 29, 2022
doi:

Summary

がん免疫療法の時代、腫瘍微小環境ダイナミクスの解明への関心が飛躍的に高まっています。このプロトコルは、その染色およびイメージングステップに関して質量分析イメージング技術を詳述し、高度に多重化された空間分析を可能にする。

Abstract

免疫ベースの治療法の進歩は、がんの治療と研究に革命をもたらしました。これは、腫瘍免疫ランドスケープの特性評価に対する需要の高まりを引き起こしました。標準的な免疫組織化学は組織構造の研究には適しているが、少数のマーカーの分析に限定される。逆に、フローサイトメトリーなどの技術は、組織形態に関する情報は失われるが、複数のマーカーを同時に評価することができる。近年、表現型解析と空間解析を統合した多重化戦略が、腫瘍免疫ランドスケープの特性評価への包括的なアプローチとして浮上しているここでは、金属標識抗体と二次イオン質量分析を組み合わせた革新的な技術について、アッセイの開発と最適化、組織の準備、画像の取得と処理における技術的ステップに焦点を当てて説明します。染色する前に、金属標識抗体パネルを開発し、最適化する必要があります。このハイプレックス画像システムは、単一の組織切片で最大 40 個の金属タグ付き抗体をサポートします。注目すべきは、信号干渉のリスクは、パネルに含まれるマーカーの数とともに増加することです。パネル設計後、この干渉を最小限に抑えるために、抗体への金属同位体割り当てに特に注意を払う必要があります。予備パネル試験は、抗体の小さなサブセットおよび対照組織におけるパネル全体のその後の試験を用いて実施される。ホルマリン固定パラフィン包埋組織切片が得られ、金コーティングされたスライドに取り付けられ、さらに染色される。染色には2日かかり、標準的な免疫組織化学染色とよく似ています。サンプルが染色されると、画像取得装置に入れられます。視野が選択され、画像が取得、アップロード、および保存されます。最終段階は、システムの画像処理ソフトウェアを使用した干渉のフィルタリングと除去のための画像準備です。このプラットフォームの欠点は、分析ソフトウェアの欠如です。しかし、生成された画像は、異なる計算病理学ソフトウェアによってサポートされています。

Introduction

クローン性腫瘍集団を取り巻く多数の細胞型の重要性は、発癌の分類において重要な要素である。この腫瘍微小環境(TME)組成と相互作用の解明への関心は、がん治療兵器の一部としての免疫ベースの治療法の確立に続いて継続的に高まっています。したがって、治療戦略は、腫瘍中心のアプローチからTME中心のアプローチに移行している1.

近年、腫瘍サーベイランスやがん発生における免疫細胞の役割を解明する取り組みが目覚ましく増加しています2,3.医学研究では、サイトメトリーベースの方法やシングルプレックスおよびマルチプレックスイメージング技術など、TMEの複数の要素のユニークな相互作用を解読するこの試みの一環として、多数の方法が生まれました。

フローサイトメトリー(1960年代に発明)、蛍光活性化細胞ソーティング、マスサイトメトリーなどの先駆的な方法は、主にTME成分4の同定と定量に焦点を当てています。サイトメトリーベースの定量的手法は免疫ランドスケープ表現型化を可能にするが、細胞空間分布を決定することは不可能である。逆に、標準的なシングルプレックス免疫組織化学などの方法は、組織アーキテクチャを保持し、研究者が細胞分布を分析することを可能にするが、単一の組織切片における標的の数の減少は、これらの方法の限界である5,6。過去数年間で、マルチプレックス免疫蛍光、バーコード蛍光イメージング、イメージング質量分析などの単一細胞分解能のための多重イメージング技術が、同じ組織セクション7を使用して同時マーカー染色に関する情報を取得するための包括的な戦略として浮上してきました。

ここでは、金属タグ付き抗体と二次イオン質量分析を結合し、ホルマリン固定、パラフィン包埋(FFPE)、および新鮮凍結(FF)組織サンプル8,9を用いた単一細胞分解能定量、マーカー共発現(表現型解析)、空間分析を可能にする技術を紹介します。FFPEサンプルは、組織アーカイブサンプルに最も広く使用されている材料であり、新鮮な凍結サンプル10よりも多重化イメージング技術のためにより容易に利用可能なリソースを表す。さらに、この技術は数ヶ月後に画像を再取得する可能性を提供します。ここでは、FFPE組織サンプルを用いた染色および画像処理プロトコルについて説明します。

Protocol

組織サンプルは、テキサス大学MDアンダーソンがんセンターの治験審査委員会に従って研究目的で取得され、サンプルはさらに脱同定された。 1. 抗体の選択 研究課題を定義して、利用可能な最良の抗体クローンを選択します。ヒトタンパク質アトラス、公開された研究、および抗体メーカーのウェブサイトを研究リソースとして使用します。メモ:…

Representative Results

扁桃腺癌および肺腺癌TMA組織切片(厚さ5mm)を入手し、組織サイズおよびスライドの安全なマージンに関する仕様に従って、金コーティングされたスライドの中央に配置した。組織の縁とスライドガラスの側方および下側の境界との間の5mmおよび10mmの自由なガラスマージンは、それぞれ最適な染色に必要である。組織切片を染色前にオーブンで一晩焼成し、スライドへの切片の適切な付着を確?…

Discussion

TMEの複数の構成要素間の複雑で複雑な相互作用の包括的な解明は、依然としてがん研究の重要な目的である。メーカーは、この取り組みの一環として、特に過去5年間に多数の多重化アッセイを導入してきました。多重化空間解析は、腫瘍サンプルの構造形態を維持しながら、複数のターゲットの同時分類を容易にする汎用性と強力なツールです。空間分析技術は、本明細書11、<sup cla…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、この記事の編集のためにMDアンダーソンの研究医学図書館であるEditing ServicesのDon Norwoodと、MDアンダーソンの翻訳分子病理学部門のMultiplex Immunofluorescence and Image Analysis Laboratoryを認めている。この出版物は、テキサス大学MDアンダーソンがんセンターがん免疫モニタリングおよび分析センター(CIMAC)への国立がん研究所(NCI)協力協定(U24CA224285)を通じて提供されたがん免疫モニタリングおよび分析センター-がん免疫学的データコモンズネットワーク(CIMAC-CIDC)に対する科学的および財政的支援によって促進された研究から部分的にもたらされました。

Materials

100% Reagent Alcohol Sigma-Aldrich R8382
95% Reagent Alcohol Sigma-Aldrich R3404
80% Reagent Alcohol Sigma-Aldrich R3279
70% Reagent Alcohol Sigma-Aldrich R315
20X TBS-T Ionpath 567005
10X Low-Barium PBS pH 7.4 Ionpath 567004
10X Tris pH 8.5  Ionpath 567003
4°C Refrigerator ThermoScientific REVCO
Aerosol Barrier Pipette Tips P10 Olympus 24-401
Aerosol Barrier Pipette Tips P20 Olympus 24-404
Aerosol Barrier Pipette Tips P200 Olympus 24-412
Aerosol Barrier Pipette Tips P1000 Olympus 24-430
Centrifugal Filter Ultrafree-MC Fisher Scientific UFC30VV00
Deionized H2O Ionpath 567002
Donkey serum Sigma-Aldrich D9663
EasyDip Slide Staining Jar, Green Electron Microscopy Sciences 71385-G
EasyDip Slide Staining Jar, Yellow Electron Microscopy Sciences 71385-Y
EasyDip Slide Staining Kit (Jar+Rack), White Electron Microscopy Sciences 71388-01
EasyDip Stainless Steel Holder Electron Microscopy Sciences 71388-50
Glutaraldehyde 70% EM Grade Electron Microscopy Sciences 16360
Heat Induced Epitope Retrieval (HIER) buffer: 10X Tris with EDTA, pH 9 Dako S2367
Heat resistant slide chamber Electron Microscopy Sciences 62705-01
Hydrophobic barrier pen Fisher 50-550-221
MIBI/O software Ionpath NA
MIBIcontrol software Ionpath NA
MIBIslide Ionpath 567001
MIBIscope Ionpath NA
Microcentrifuge Eppendorf 5415D
Microtome Leica RM2135
Moisture Chamber (Humid Chamber) Simport M922-1
Phosphate Buffered Saline (PBS) Tablets Fisher Scientific BP2944100
PT Module Thermo Scientific A80400012
Rapid-Flow Sterile Disposable Filter Units Fisher Scientific 097403A
Shaker BioRocker S2025
Spin column (Ultrafree-MC Spin Filter, 0.5mL 0.1μm ) MillQ UFC30VV00
Slide oven Fisher Scientific 6901
Vaccum Cabinet Desiccator VWR 30621-076
Task-whipe Kimberly Clark 34155
Xylene Sigma-Aldrich 534056-4L

References

  1. Laplane, L., Duluc, D., Bikfalvi, A., Larmonier, N., Pradeu, T. Beyond the tumour microenvironment. International Journal of Cancer. 145 (10), 2611-2618 (2019).
  2. Galli, F., et al. Relevance of immune cell and tumor microenvironment imaging in the new era of immunotherapy. Journal of Experimental & Clinical Cancer Research. 39 (1), 89 (2020).
  3. Liu, C. C., Steen, C. B., Newman, A. M. Computational approaches for characterizing the tumor immune microenvironment. Immunology. 158 (2), 70-84 (2019).
  4. Eisenstein, M. Cell sorting: Divide and conquer. Nature. 441 (7097), 1179-1185 (2006).
  5. Scognamiglio, G., et al. Multiplex immunohistochemistry assay to evaluate the melanoma tumor microenvironment. Methods in Enzymology. 635, 21-31 (2020).
  6. Guo, N., et al. A 34-marker panel for imaging mass cytometric analysis of human snap-frozen tissue. Frontiers in Immunology. 11, 1466 (2020).
  7. Fu, T., et al. Spatial architecture of the immune microenvironment orchestrates tumor immunity and therapeutic response. Journal of Hematology & Oncology. 14 (1), 98 (2021).
  8. Rost, S., et al. Multiplexed ion beam imaging analysis for quantitation of protein expresssion in cancer tissue sections. Laboratory Investigation. 97 (8), 992-1003 (2017).
  9. Keren, L., et al. A structured tumor-immune microenvironment in triple negative breast cancer revealed by multiplexed ion beam imaging. Cell. 174 (6), 1373-1387 (2018).
  10. Mathieson, W., Thomas, G. A. Why formalin-fixed, paraffin-embedded biospecimens must be used in genomic medicine: An evidence-based review and conclusion. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 68 (8), 543-552 (2020).
  11. Baghban, R., et al. Tumor microenvironment complexity and therapeutic implications at a glance. Cell Communication and Signaling. 18 (1), 59 (2020).
  12. Cai, S., Allam, M., Coskun, A. F. Multiplex spatial bioimaging for combination therapy design. Trends in Cancer. 6 (10), 813-818 (2020).
  13. Allam, M., Cai, S., Coskun, A. F. Multiplex bioimaging of single-cell spatial profiles for precision cancer diagnostics and therapeutics. NPJ Precision Oncology. 4, 11 (2020).
  14. Rad, H. S., et al. The Pandora’s box of novel technologies that may revolutionize lung cancer. Lung Cancer. 159, 34-41 (2021).
  15. Tan, W. C. C., et al. Overview of multiplex immunohistochemistry/immunofluorescence techniques in the era of cancer immunotherapy. Cancer Commununications. 40 (4), 135-153 (2020).
  16. Ptacek, J., et al. Multiplexed ion beam imaging (MIBI) for characterization of the tumor microenvironment across tumor types. Laboratory Investigation. 100 (8), 1111-1123 (2020).

Play Video

Cite This Article
Campos Clemente, L., Shi, O., Rojas, F., Parra, E. R. Expanding the Comprehension of the Tumor Microenvironment using Mass Spectrometry Imaging of Formalin-Fixed and Paraffin-Embedded Tissue Samples. J. Vis. Exp. (184), e64015, doi:10.3791/64015 (2022).

View Video