Summary
В настоящем протоколе описана техника проводного миографа для измерения сосудистой реактивности коронарной артерии крысы.
Abstract
Как ключевое событие заболеваний сердечно-сосудистой системы, ишемическая болезнь сердца (ИБС) широко рассматривается как главный виновник атеросклероза, инфаркта миокарда и стенокардии, которые серьезно угрожают жизни и здоровью людей во всем мире. Однако то, как записать динамические биомеханические характеристики изолированных кровеносных сосудов, давно озадачило людей. Между тем, точное позиционирование и изоляция коронарных артерий для измерения динамических изменений сосудистого напряжения in vitro стали тенденцией в разработке лекарств ИБС. Настоящий протокол описывает макроскопическую идентификацию и микроскопическое разделение коронарных артерий крыс. Функцию сокращения и расширения коронарного кольца вдоль диаметра сосуда контролировали с помощью установленной мультимиографической системы. Стандартизированные и запрограммированные протоколы измерения напряжения коронарных колец, от отбора проб до сбора данных, значительно улучшают повторяемость экспериментальных данных, что обеспечивает подлинность записей сосудистого напряжения после физиологического, патологического и медикаментозного вмешательства.
Introduction
Ишемическая болезнь сердца (ИБС) широко признана и обеспокоена как типичное и репрезентативное сердечно-сосудистое заболевание, являющееся основной причиной смерти как в развитых, так и в развивающихся странах 1,2. В качестве пути снабжения кровью и кислородом для нормальной физиологической функции сердца циркулирующая кровь поступает и питает сердце через две основные коронарные артерии и кровеносную сосудистую сеть на поверхности миокарда 3,4. Холестериновые и жировые отложения в коронарных артериях перекрывают кровоснабжение сердца и бурную воспалительную реакцию сосудистой системы, вызывая атеросклероз, стабильную стенокардию, нестабильную стенокардию, инфаркт миокарда или внезапную сердечную смерть 5,6. В ответ на патологический стеноз коронарных артерий компенсаторно ускоренное физиологическое сердцебиение удовлетворяет кровоснабжение самого сердца или жизненно важных органов организма за счет увеличения выхода левого желудочка7. Если длительный коронарный стеноз вовремя не устранить, в определенных областях сердца могут развиться обширные новые кровеносные сосуды8. В настоящее время клиническое лечение ИБС часто принимает медикаментозный тромболизис или хирургический механический тромболизис и экзогенное бионическое сосудистое шунтирование с частыми лекарствами и большой хирургической инвалидностью9. Поэтому функциональное исследование физиологической активности коронарных артерий по-прежнему является актуальным прорывом при сердечно-сосудистых заболеваниях10.
Отсутствуют доступные технические средства для определения коронарной физиологической активности, за исключением беспроводных телеметрических систем, которые могут динамически регистрировать in vivo коронарное давление, сосудистое напряжение, насыщение крови кислородом и значения рН11. Поэтому, учитывая текстурную тайну и сложность коронарных артерий, точная идентификация и изоляция коронарных артерий, несомненно, являются лучшим выбором для изучения нескольких механизмов ИБС in vitro4.
Серия мультимиографных систем, в частности проводной микрофотоскулярный детектор микрососудистого напряжения (см. Таблицу материалов), является очень зрелым рыночным устройством для регистрации изменений напряжения тканей in vitro малых сосудистых, лимфатических и бронхиальных трубок с характеристиками высокоточной и непрерывной динамической записи12. Указанная система широко используется для регистрации характеристик натяжения тканей in vitro полостных структур диаметром от 60 мкм до 10 мм. Непрерывный нагрев особенностей платформы проволочной микрофотографии в значительной степени компенсирует стимуляцию неблагоприятной внешней среды. Между тем, постоянные входы газовой смеси и значения рН позволяют получить более точные данные о сосудистом напряжении в аналогичном физиологическом состоянии13. Однако, учитывая сложность анатомической локализации коронарных артерий крыс (рисунок 1), ее изоляция вызывает недоумение и ограничивает исследование механизма диверсифицированных сердечно-сосудистых заболеваний и разработку лекарств. Поэтому настоящий протокол подробно вводит анатомическое расположение и процесс разделения коронарной артерии крысы с последующим измерением напряжения на платформе проволочной микрофотографии14.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Протокол для животных был рассмотрен и одобрен Управляющим комитетом из Университета традиционной китайской медицины Чэнду (запись No 2021-11). Для настоящего исследования использовались самцы крыс Sprague Dawley (SD) (260-300 г, 8-10 недель). Крыс держали в камере для животных и могли свободно пить и есть во время эксперимента.
1. Приготовление раствора
- Готовят физиологический солевой раствор (PSS), растворяя 118 мМ NaCl, 4,7 мМ K+, 2,5 мМ CaCl2, 1,2 мМ KH2PO4, 1,2 мМ MgCl2∙6H2O, 25 мМ NaHCO3, 11 мМ D-глюкозы и 5 мМ HEPES (см. Таблицу материалов).
- Готовят раствор соли с высоким содержанием K+ , растворяя 58 мМ NaCl, 60 мМ K+, 2,5 мМ CaCl2, 1,2 мМ KH2PO4, 1,2 мМ MgCl2∙6H2O, 25 мМ NaHCO3, 11 мМ D-глюкозы и 5 мМ HEPES.
- Насытить два вышеуказанных раствора и пузырьком со смешанным газом 95%O2 и 5% CO2. Между тем, поддерживайте значения рН раствора между 7,38 и 7,42 с 2 мМ NaOH.
ПРИМЕЧАНИЕ: Для получения подробной информации о приготовлении раствора, пожалуйста, смотрите ссылку15.
2. Рассечение коронарной артерии крысы
- Обезболивают крысу путем вдыхания 2% изофлурана. Подтвердите глубокую анестезию щипкой пальцев ног и, при необходимости, введите дополнительные анестетики. Затем немедленно откройте грудную полость, чтобы обнажить сердце на переносном операционном столе после ранее опубликованного отчета12.
- После диссоциации и удаления сердца дренируют остаточную кровь из всех камер сердца, слегка сдавливая медицинскими пластическими щипцами. Быстро поместите предварительно обработанное сердце в чашку Петри, содержащую 95% O2 + 5% CO2 насыщенного PSS при 4 °C, имея значение рН 7,40.
- Чтобы точно определить анатомическое положение коронарных артерий, скорректируйте положение изолированного сердца под световым микроскопом по принципиальной схеме (рисунок 2А).
ПРИМЕЧАНИЕ: На фронтальном снимке правая ушная раковина и легочная артерия находились в верхнем левом и правом верхнем углу соответственно.- Срежьте левую и правую желудочковую полости вдоль межжелудочковой перегородки от корня легочной артерии хирургическими ножницами и пинцетом (рисунок 2В).
- Чтобы отделить левую и правую коронарные артерии от ткани миокарда, рассекните правый желудочек под оптическим анатомическим микроскопом, чтобы тщательно обнажить правую ветвь коронарной артерии. Затем определите положение левой коронарной артерии, повернув сердечную ткань на 45° по часовой стрелке (рисунок 2D).
- После удаления окружающей липкой ткани миокарда явно различают пульсирующие левую (около 5 мм) и правую (около 5 мм) коронарные артерии. Немедленно отделите коронарные артерии посередине и полностью погрузите в ПСС при 4 °C. Приобретите артериальное кольцо размером около 2 мм, вертикально разрезав отделившуюся артерию анатомическими ножницами для регистрации сосудистого напряжения при различных раздражителях (рисунок 2Е).
3. Суспензия и фиксация артериального кольца
ПРИМЕЧАНИЕ: Подробную информацию об этом шаге см. в ссылке14.
- Подготовьте две проволоки из нержавеющей стали по 2 см (см. Таблицу материалов) и предварительно замочите в растворе PSS при температуре 4 °C, насыщенном 95% O2 + 5% CO2. Пропустите оба провода параллельно через артериальное кольцо вместе с направлением сосуда под оптическим анатомическим микроскопом и с проводами одинаковой длины, выставленными на обоих концах сосудистой полости.
- Зафиксируйте артериальное кольцо стальной проволокой спереди и сзади в ванне из проволоки на микрофотографии, заполненной пузырящейся ПСС с 95% O2 + 5% CO2. Поверните горизонтальную винтовую ручку для соответствующего переднего и заднего расстояния так, чтобы два провода были горизонтальными, а артериальное кольцо находилось в естественном состоянии расслабления.
- После установки ванны DMT на термостатический аппарат откройте программное обеспечение для сбора данных (см. Таблицу материалов), чтобы убедиться, что был записан соответствующий сигнал пути. Установите следующие параметры: калибровка окуляра (мм/дел): 0,36; целевое давление (кПа): 13,3; IC1/IC100: 0,9; время онлайн-усреднения: 2 с; время задержки: 60 с. Этапы фиксации артериального кольца показаны на рисунке 3.
4. Стандартизация сосудистого напряжения в артериальном кольце крыс
ПРИМЕЧАНИЕ: Для различных образцов полостей для поддержания исключительной активности in vitro сосудам требовалось оптимальное начальное натяжение. Более подробную информацию см. в ссылке15.
- Достигните оптимального начального натяжения артериального кольца, применяя разумное напряжение по диаметру сосуда.
ПРИМЕЧАНИЕ: На основе предыдущего исследования16 максимальное напряжение, вызванное агонистами, было достигнуто при значении коэффициента k 0,90 при начальном растяжении 1,16 ± 0,04 мН/мм (контрольные значения для различных образцов сосудов: значение k, 0,90-0,95; начальное напряжение, 1,16-1,52 мН/мм). - В этот момент установите отображаемое значение сосудистого напряжения равным нулю. После этого нанесите стимул 3 мН на артериальное кольцо, вращая спиральную ось ванны.
- После инкубации в течение 1 ч в насыщенном кислородом PSS буфере при 37 °C, рН 7,40, снова установите значение натяжения 0 мН на панели управления натяжением проволочной микрофотографии. Процесс установки начального натяжения артериального кольца показан на рисунке 4.
5. Определение реактивности коронарного кольца
- Выполняют сократительную активность коронарного кольца с помощью проводного миографа по методике14 и проверяют в трех отдельных операциях, стимулируя 60 мМ раствора К+ в течение 10 мин каждая.
- После каждой стимуляции промывайте ванну насыщенным кислородом ПСС до тех пор, пока тонус сосудов не вернется в исходное состояние.
ПРИМЕЧАНИЕ: Только когда флуктуация напряжения трех параллельных измерений составляла менее 10%, а амплитуда каждого сокращения превышала 1 мН/мм, для дальнейших экспериментов можно было использовать квалифицированные и высокоактивные артериальные кольца. Проверка активности коронарного кольца крысы показана на рисунке 5.
6. Послеоперационное лечение
- После операции усыплите животных в соответствии с институционально утвержденными протоколами.
ПРИМЕЧАНИЕ: Для настоящего исследования животные были усыплены путем вдыхания избытка изофлурана.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Анатомически расположенные коронарные артерии крыс, распределенные и скрытые глубоко в ткани миокарда, были нелегко распознаны. Путем сравнения коронарных артерий человека (Рисунок 1А) и крыс (Рисунок 1В) было проведено быстрое и точное разделение коронарных артерий крыс в соответствии с процессом отбора проб на Рисунке 2. После точного определения местоположения правой ушной раковины, легочной артерии и вершины спереди под оптическим микроскопом миокард рассекли вдоль сплошной черной линии, показанной на рисунке 2А. Около 5 мм межжелудочковой ветви коронарной артерии было явно выставлено на наш взгляд. После тонкого разделения липкого миокарда, окружающего желудочковую перегородочную артерию, 2-сантиметровую проволоку использовали для пересечения 2-миллиметровой петли коронарной артерии в направлении выравнивания сосудов. Мгновенно отсоединившееся коронарное кольцо диаметром 2 мм было надежно закреплено в ванне ДМТ, как показано на рисунке 3. После того, как начальное напряжение 3 мН было применено к артериальному кольцу (рисунок 4), его напряжение превысило более 2 мН, применив 60 мМ К+ параллельно три раза (Рисунок 5). Таким образом, вышеуказанные процедуры привели к изолированному коронарному кольцу с отличной физиологической активностью.
Кумулятивные K+ (20, 28, 39, 55, 77 и 108 мМ) или U46619 (0,01, 0,03, 0,1, 0,3 и 1 мкМ) добавляли в ванну DMT 620M, что приводило к концентрационно-зависимому повышению тонуса сосудов in vitro. Следующая концентрация K+ или U46619 (агонист рецептора тромбоксана A2 (TP)15 добавлялась, когда эффект сужения сосудов достигал плато. Экспериментальные результаты показаны на рисунке 6A,B. Для изолированных коронарных колец, суженных K+ (60 мМ) и U46619 (0,3 мкМ), тестируемый препарат апигенин (1, 3, 10, 30 и 100 мкМ) вызывал вазодилатацию удивительно концентрационно-зависимым образом (рисунок 6C).
Рисунок 1: От руки рисунки коронарных артерий человека и крысы. (А) представлены характеристики поверхностного распределения левой и правой коронарных артерий с переднего вида человеческого сердца и легко распознаются невооруженным глазом. (B) демонстрирует левую и правую коронарные артерии крыс глубоко в миокарде и их ветвящуюся межжелудочковую перегородку. Сокращения: RCA = правая коронарная артерия; LCA = левая коронарная артерия; ISB = межжелудочковая ветвь перегородки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Диаграмма разделения коронарных артерий у крыс. (A) Правая ушная раковина, легочная артерия, вершина и анатомическая линия сердца крысы наблюдались с переднего вида под световым микроскопом. (B) Просвет левого и правого желудочков были разрезаны вдоль перегородки от корня легочной артерии. (C) Анатомическое расположение левой и правой коронарных артерий и их межжелудочковой перегородочной ветви. (D) Кольцо артерии размером 2 мм. (E) Артериальное кольцо фиксируется проволокой вдоль направления сосуда. Сокращения: RA = правая ушная раковина; PA = легочная артерия; RCA = правая коронарная артерия; ISB = межжелудочковая ветвь перегородки; LCA = левая коронарная артерия. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 3: Схема процедуры артериального монтажа. Артериальное кольцо с проволокой переносили на (А) и зажимали на ванне ДМТ (В). Стальная проволока была закреплена и привинчена по часовой стрелке к верхнему левому краю (C) и левому нижнему углу (D).. (E) Раздвинутые челюсти были привинчены, чтобы освободить место для пропускания второго провода через артериальное кольцо. F) Второй провод был параллельным через артериальное кольцо. Стальная проволока была закреплена и привинчена по часовой стрелке к верхнему правому краю (G) и правому нижнему углу (H). (I) Раздвинутые челюсти были свободно привинчены, чтобы оставить артериальное кольцо в его естественном состоянии. Зеленые линии представляют провода, а оранжевые цилиндры представляют собой 2 мм изолированное артериальное кольцо. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 4: Процедура нормализации артериального кольца. После того, как напряжение неподвижного изолированного артериального кольца вернулось к 0 мН, к артериальному кольцу одновременно прикладывалась тяговая сила 3 мН. Через 5 мин сосудистое напряжение снизилось до 2,5 мН. Увеличивая напряжение до 3 мН и удерживая его устойчивым в течение 5 мин, напряжение коронарного кольца инициализировали до 0 мН и отдыхали в течение 1 ч для последующих исследований сосудистого напряжения различных раздражителей. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 5: Тестирование сосудистой реактивности. Три применения 60 мМ K+ стимулировали напряжение изолированного коронарного кольца до более чем 2 мН, и три измерения были менее 10%, что свидетельствует о превосходной сосудистой активности. После каждой стимуляции ванну осторожно промывали насыщенным кислородом раствором PSS с температурой 37 °C до тех пор, пока напряжение не достигло 0 мН. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 6: Репрезентативный индикатор кумулятивного сокращения дозы коронарной артерии крысы через K+ или U46619. По мере увеличения дозы K+ (A) и U46619 (B) сила увеличивалась в зависимости от дозы. (C) относится к релаксативному эффекту апигенина на 60 мМ K+- и 0,3 мкМ U46619-сжатого артериального кольца в зависимости от концентрации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Нарушение коронарной микроциркуляции, в котором участвует широкий круг пациентов с ИБС, было постепенно признано и касалось основы адекватной перфузии миокарда. Учитывая серьезные осложнения внезапной ишемической болезни сердца и сердечно-сосудистых заболеваний, своевременная медикаментозная профилактика и лечение крайне важны для клинического человека с ИБС17. Неизбежно секретность анатомии коронарной артерии и сложность ее физиологического строения серьезно ограничили рациональную и научную оценку эффективности лекарств и методов лечения CAD 18,19,20,21,22,23,24,25 . Несомненно, точная локализация и выделение активных коронарных артерий является необходимым условием для содействия исследованию патологических механизмов и оценке мер профилактики и лечения заболеваний, связанных с ИБС. Платформа проволочной микрофотографии подходит для непрерывной регистрации натяжения тканей in vitro кольцевыми и полостными структурами диаметром от 60 мкм до 10 мм. Коронарное кольцо может быть прикреплено к камере двумя проводами с постоянной температурой и кислородным контролем. Данные о сужении сосудов и расслаблении после добавления различных лекарств вводятся в компьютер через датчик напряжения, при этом данные непрерывно получаются и документируются14.
В этой статье в основном описывается конкретное положение коронарной артерии крысы и процесс разделения. А динамический процесс изменения напряжения коронарных артерий у крыс измерялся системой проводной микрофотографии. Учитывая неоднородность видов человека и крыс, мы должны знать об этих различиях при поиске и изоляции коронарных артерий крыс. Коронарные артерии крыс разделены на левую и правую артерии с независимой межжелудочковой перегородчатой ветвью. Коронарные артерии человека находятся на поверхности сердца, в то время как коронарные артерии крыс немного глубже. При измерении натяжения артериального кольца весь буферный раствор насыщали и пузырили 95%O2 + 5% CO2 при 37 °C, pH = 7,40. Подробно представлен фиксированный процесс артериального кольца двумя проводами. Артерия в организме находится в состоянии микросужения, а не состояния полного расслабления. А сократительная функция артерий тесно связана с приложенной к ним в какой-то степени силой притяжения. Поэтому необходимо стандартизировать артериальное кольцо так, чтобы оно находилось в оптимальном преднагруженном состоянии для поддержания превосходной сосудистой физиологической активности в последующем эксперименте. Поскольку высокое состояние K+ (60 мМ) может деполяризовать клеточную мембрану и активировать каналы Ca2+ с напряжением, это вызывает приток внеклеточного Ca2+ и артериального сокращения26.
В тесте на вазоконстрикцию и дилатацию исследовали сократительный эффект K+ или U46619 на коронарные артерии крыс. В результатах K+ или U46619 могут неуклонно сужать коронарные артерии крыс в зависимости от концентрации, воздействуя на ионные каналы или специфические рецепторы. K+ сужает сосуды главным образом путем деполяризации клеточных мембран и открытия каналов27 L-типа Ca 2+. Между тем, U46619, аналог TXA2, сужает сосуды в основном путем активации круговых нуклеотидных каналов и рецепторов TXA2. Апигенин, разновидность флавоноида, широко существует во фруктах, овощах и традиционных китайских лекарствах (semen plantaginis и китайский starjasmine)28. Результаты показали, что апигенин может концентрационно-зависимы расширять сокращение коронарных артерий для стимулов 60 мМ K+ и 0,3 мкМ U46619. В конце эксперимента коронарное кольцо с благоприятной активностью было снова подтверждено добавлением 60 мМ K+, вызывая сужение сосудов, аналогичное сужению исходной стимуляции. Хотя исследование в основном было сосредоточено на коронарных артериях, система проволочной микрофотографии также была применима к другим чрезвычайно мелким тканевым сосудам, лимфатическим средствам и бронхам. В заключение в данной статье в основном описано расположение и изоляция коронарных артерий крыс. Между тем, его изменения напряжения были измерены с использованием платформы системы проводной микрофотографии, обеспечивая точную и воспроизводимую методологию для исследования САПР.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторам нечего раскрывать.
Acknowledgments
Эта работа была поддержана Ключевым научно-исследовательским проектом Плана науки и техники провинции Сычуань (2022YFS0438), Национальным фондом естественных наук Китая (82104533), Китайским постдокторским научным фондом (2020M683273) и Департаментом науки и техники провинции Сычуань (2021YJ0175).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Apigenin | Sangon Biotech Co., Ltd., Shanghai, China | 150731 | |
| CaCl2 | Sangon Biotech Co., Ltd., Shanghai, China | A501330 | |
| D-glucose | Sangon Biotech Co., Ltd., Shanghai, China | A610219 | |
| HEPES | Xiya Reagent Co., Ltd., Shandong, China | S3872 | |
| KCl | Sangon Biotech Co., Ltd., Shanghai, China | A100395 | |
| KH2PO4 | Sangon Biotech Co., Ltd., Shanghai, China | A100781 | |
| LabChart Professional version 8.3 | ADInstruments, Australia | — | |
| MgCl2·6H2O | Sangon Biotech Co., Ltd., Shanghai, China | A100288 | |
| Multi myograph system | Danish Myo Technology, Aarhus, Denmark | 620M | |
| NaCl | Sangon Biotech Co., Ltd., Shanghai, China | A100241 | |
| NaHCO3 | Sangon Biotech Co., Ltd., Shanghai, China | A100865 | |
| Steel wires | Danish Myo Technology, Aarhus, Denmark | 400447 | |
| U46619 | Sigma, USA | D8174 |
References
- Malakar, A. K., et al. A review on coronary artery disease, its risk factors, and therapeutics. Journal of Cellular Physiology. 234 (10), 16812-16823 (2019).
- Murray, C., et al. national age-sex specific all-cause and cause-specific mortality for 240 causes of death, 1990-2013: A systematic analysis for the global burden of disease Study 2013. The Lancet. 385 (9963), 117-171 (2015).
- Zhang, Y., et al. Adenosine and adenosine receptor-mediated action in coronary microcirculation. Basic Research in Cardiology. 116 (1), 22 (2021).
- Allaqaband, H., Gutterman, D. D., Kadlec, A. O. Physiological consequences of coronary arteriolar dysfunction and its influence on cardiovascular disease. Physiology. 33 (5), 338-347 (2018).
- Minelli, S., Minelli, P., Montinari, M. R. Reflections on atherosclerosis: Lesson from the past and future research directions. Journal of Multidisciplinary Healthcare. 13, 621-633 (2020).
- Alvarez-Alvarez, M. M., Zanetti, D., Carreras-Torres, R., Moral, P., Athanasiadis, G. A survey of sub-saharan gene flow into the mediterranean at risk loci for coronary artery disease. European Journal of Human Genetics. 25 (4), 472-476 (2017).
- LaCombe, P., Tariq, M. A., Lappin, S. L. Physiology, Afterload Reduction. StatPearls [Internet]. , StatPearls Publishing. Treasure Island (FL). (2022).
- Gutterman, D. D., et al. The human microcirculation: regulation of flow and beyond. Circulation Research. 118 (1), 157-172 (2016).
- Wang, G., Li, F., Hou, X. Complementary and alternative therapies for stable angina pectoris of coronary heart disease: A protocol for systematic review and network meta-analysis. Medicine. 101 (7), 28850 (2022).
- Markousis-Mavrogenis, G., et al. Coronary microvascular disease: the "meeting point" of cardiology. European Journal of Clinical Investigation. 52 (5), 13737 (2021).
- Allison, B. J., et al. Fetal in vivo continuous cardiovascular function during chronic hypoxia. The Journal of Physiology. 594 (5), 1247-1264 (2016).
- Wenceslau, C. F., et al. Guidelines for the measurement of vascular function and structure in isolated arteries and veins. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 321 (1), 77-111 (2021).
- Liu, L., et al. Comparison of Ca2+ handling for the regulation of vasoconstriction between rat coronary and renal arteries. Journal of Vascular Research. 56 (4), 191-203 (2019).
- Sun, J., et al. Isometric contractility measurement of the mouse mesenteric artery using wire myography. Journal of Visualized Experiments. (138), e58064 (2018).
- Guo, P., et al. Coronary hypercontractility to acidosis owes to the greater activity of TMEM16A/ANO1 in the arterial smooth muscle cells. Biomedicine & Pharmacotherapy. 139, 111615 (2021).
- Ping, N. N., Cao, L., Xiao, X., Li, S., Cao, Y. X. The determination of optimal initial tension in rat coronary artery using wire myography. Physiological Research. 63 (1), 143-146 (2014).
- Niccoli, G., Scalone, G., Lerman, A., Crea, F. Coronary microvascular obstruction in acute myocardial infarction. European Heart Journal. 37 (13), 1024-1033 (2016).
- Mumma, B., Flacke, N. Current diagnostic and therapeutic strategies in microvascular angina. Current Emergency and Hospital Medicine Reports. 3 (1), 30-37 (2015).
- Lanza, G. A., Parrinello, R., Figliozzi, S. Management of microvascular angina pectoris. American Journal of Cardiovascular Drugs. 14 (1), 31-40 (2014).
- Zhu, T. Q., et al. Beneficial effects of intracoronary tirofiban bolus administration following upstream intravenous treatment in patients with ST-elevation myocardial infarction undergoing primary percutaneous coronary intervention: The ICT-AMI study. International Journal of Cardiology. 165 (3), 437-443 (2013).
- Huang, D., et al. Restoration of coronary flow in patients with no-reflow after primary coronary intervention of acute myocardial infarction (RECOVER). American Heart Journal. 164 (3), 394-401 (2012).
- Fu, W. J., et al. Anti-atherosclerosis and cardio-protective effects of the Angong Niuhuang Pill on a high fat and vitamin D3 induced rodent model of atherosclerosis. Journal of Ethnopharmacology. 195, 118-126 (2017).
- Li, J., et al. Chinese medicine She-Xiang-Xin-Tong-Ning, containing moschus, corydalis and ginseng, protects from myocardial ischemia injury via angiogenesis. The American Journal of Chinese Medicine. 48 (1), 107-126 (2020).
- Wu, W., et al. Three dimensional reconstruction of coronary artery stents from optical coherence tomography: Experimental validation and clinical feasibility. Scientific Reports. 11 (1), 1-15 (2021).
- Liu, M., et al. Janus-like role of fibroblast growth factor 2 in arteriosclerotic coronary artery disease: Atherogenesis and angiogenesis. Atherosclerosis. 229 (1), 10-17 (2013).
- Hu, G., Li, X., Zhang, S., Wang, X. Association of rat thoracic aorta dilatation by astragaloside IV with the generation of endothelium-derived hyperpolarizing factors and nitric oxide, and the blockade of Ca2+ channels. Biomedical reports. 5 (1), 27-34 (2016).
- Guo, Y., et al. Anticonstriction effect of MCA in rats by danggui buxue decoction. Frontiers in Pharmacology. 12, 749915 (2021).
- Jing, Y., et al. Apigenin relaxes rat intrarenal arteries, depresses Ca2+-activated Cl− currents and augments voltage-dependent K+ currents of the arterial smooth muscle cells. Biomedicine & Pharmacotherapy. 115, 108926 (2019).
