Эта модель поросенка включает в себя хирургический инструментарий, удушье до остановки сердца, реанимацию и постреанимационное наблюдение. Модель позволяет проводить многократный отбор проб для каждого животного, а используя непрерывный инвазивный мониторинг артериального давления, ЭКГ и неинвазивного мониторинга сердечного выброса, она предоставляет знания о гемодинамике и патофизиологии сердца при перинатальной асфиксии и неонатальной сердечно-легочной реанимации.
Новорожденные поросята широко используются в качестве трансляционных моделей перинатальной асфиксии. В 2007 году мы адаптировали хорошо зарекомендовавшую себя модель асфиксии поросят, введя остановку сердца. Это позволило изучить влияние тяжелой асфиксии на ключевые исходы, включая время, необходимое для восстановления спонтанного кровообращения (ROSC), а также влияние компрессии грудной клетки в соответствии с альтернативными протоколами сердечно-легочной реанимации. Из-за анатомического и физиологического сходства между поросятами и новорожденными, поросята служат хорошими моделями в исследованиях сердечно-легочной реанимации и гемодинамического мониторинга. Фактически, эта модель остановки сердца предоставила доказательства для разработки рекомендаций посредством исследований протоколов реанимации, патофизиологии, биомаркеров и новых методов гемодинамического мониторинга. Примечательно, что случайное открытие того, что значительная часть поросят имеет безимпульсную электрическую активность (ПЭА) во время остановки сердца, может повысить применимость модели (т.е. она может быть использована для изучения патофизиологии, выходящей за пределы перинатального периода). Тем не менее, поколение моделей является технически сложным и требует различных наборов навыков, преданного своему делу персонала и тонкого баланса мер, включая хирургические протоколы и использование седативных / анальгетиков, для обеспечения разумного уровня выживаемости. В этой статье подробно описан протокол, а также опыт адаптации к протоколу на протяжении многих лет.
Перинатальная асфиксия вызвана нарушением газообмена (гипоксемия и гиперкапния) до, во время и/или после рождения. Это приводит к снижению притока крови (ишемии) к жизненно важным органам и последующему смешанному респираторному и метаболическому ацидозу. Перинатальная асфиксия является распространенным осложнением родов, которое ежегодно вызывает 580 000 случаев младенческой смертиво всем мире1. Снижение этого числа имеет важное значение для снижения смертности среди новорожденных и детей в возрасте до 5 лет, как указано в Цели устойчивого развития Организации Объединенных Наций No 3.2 (т.е. неонатальная смертность <12 на 1000 живорождений и смертность детей в возрасте до 5 лет <25 на 1000 живорождений)2.
Клинически асфиксия проявляется в виде гипоксически-ишемической энцефалопатии (ГИЭ), угнетения дыхания и недостаточности кровообращения у новорожденного3 (т.е. симптомы и признаки гипоксии-ишемии жизненно важных органов)4. Следовательно, ребенку с удушьем может потребоваться лечение энцефалопатии, включая судороги, а также расширенная респираторная и сердечно-сосудистая поддержка. Во всем мире каждый год до 10 миллионов младенцев нуждаются в той или иной форме вмешательства, такого как тактильная стимуляция, а 6-7 миллионов младенцев нуждаются в искусственной вентиляции легких прирождении5. Таким образом, перинатальная асфиксия создает огромную нагрузку на систему здравоохранения с соответствующими социально-экономическими последствиями. Чтобы уменьшить глобальное бремя болезней, связанных с перинатальной асфиксией, наши исследовательские группы считают, что в научных исследованиях должны быть изучены следующие приоритетные области: профилактика, включая улучшение дородовой и акушерской помощи и последующего наблюдения; прогностические биомаркеры; и оптимизированная реанимация и стабилизация родильного зала6.
Новорожденные поросята и человеческие младенцы на близком сроке беременности имеют сходную анатомию и патофизиологию7. Хотя ни одна животная модель перинатальной асфиксии и остановки сердца не может создать полный аспект неудачного перинатального перехода, приводящего к асфиксии и остановке сердца, поросята являются хорошими трансляционными моделями.
Еще в 1970-х годах мы разработали модель гипоксии у взрослых свиней8. Он был успешно доработан9 исследовательскими группами, что позволило получить модель перинатальной асфиксии у поросят 10,11,12,13,14,15,16,17,18. В 2007 году первые эксперименты с остановкой сердца у поросят были проведены в Институте хирургических исследований при Университетской больнице Осло11,13,15,16. Модель ареста предоставила доказательства для разработки рекомендаций 10,13,15,16,19,20, а также широкие возможности для физиологических исследований и тестирования оборудования/диагностических инструментов 14,21, протоколов реанимации (рандомизированные контролируемые исследования)13,15,16,22, а биомаркеры крови и тканей10,12,20. Таким образом, модель оказалась универсальной, и для ответа на несколько исследовательских вопросов традиционно использовалась одна-единственная экспериментальная серия. Это важно и согласуется с тремя R (сокращение, замена и уточнение) экспериментальных исследованийна животных 23 (т. е. принципом сокращения числа животных, приносимых в жертву в научных целях).
В следующем протоколе подробно описана модель перинатальной асфиксии поросят, в том числе способы индукции, определения и констатации остановки сердца. Модель была доработана для минимизации воздействия седативных препаратов и хирургических вмешательств и включает в себя искусственную вентиляцию легких, асфиксию, реанимацию, постреанимационное наблюдение и сбор образцов крови, мочи и спинномозговой жидкости. Наши группы также традиционно собирают ткани из жизненно важных органов посмертно, но процедура забора тканей подробно не описана в этом протоколе. Модель имитирует гипоксический инсульт со смешанным респираторным и метаболическим ацидозом, что отражает биохимию удушливых новорожденных людей. Благодаря тщательному наблюдению за поросятами с помощью инвазивных оценок артериального давления (АД) и частоты сердечных сокращений (ЧСС), пульсоксиметрии (ПО), электрокардиограммы (ЭКГ), импедансной кардиографии (ИКГ) и ближней инфракрасной спектроскопии (БИК) можно детально изучить физиологию перинатальной асфиксии с особым акцентом на сердце.
Модель технически сложна, так как для обеспечения разумной выживаемости требуется очень тонкий баланс между лекарствами, хирургическими вмешательствами и методом индукции остановки сердца. Проведение экспериментов требует тщательной подготовки и преданной и хорошо функционирующей команды. Отбор подопытных животных также, по-видимому, играет важную роль в обеспечении успешных экспериментов. В этой статье мы подробно опишем протокол и наш опыт работы с ним.
Эта модель поросят отнимает много времени и технически сложна, и включает в себя несколько важных этапов. Тонкий баланс в лекарствах, хирургических вмешательствах и методе индукции остановки сердца необходим для обеспечения разумной выживаемости. Поскольку протокол имеет относительно большую продолжительность и включает в себя несколько критических этапов, проведение экспериментов требует тщательной подготовки и специальной и хорошо функционирующей команды, и эксперименты должны проводиться на объектах, которые имеют опыт исследований на крупных животных. Наши исследовательские группы проводили эксперименты на одном-трех поросятах параллельно. Рекомендуется, чтобы во время экспериментов постоянно присутствовало не менее двух человек, и не менее трех человек, если эксперименты будут проводиться с тремя поросятами одновременно.
Особенно важные и технически сложные части экспериментов включают следующее: 1) убедиться, что все оборудование работает, а все инструменты отбора проб данных доступны, работают и откалиброваны; 2) хорошая и удовлетворительная искусственная вентиляция легких, особенно перед асфиксией и во время сердечно-легочной реанимации; 3) хирургическое вмешательство; 4) индукция асфиксии; 5) констатация остановки сердца; 6) сердечно-легочная реанимация; и 7) отбор проб образцов, особенно в критические моменты, такие как остановка сердца и ROSC. Наиболее важными шагами в протоколе являются индукция асфиксии и констатация остановки сердца. В первых экспериментах CO2 добавляли к газу асфиксии, чтобы точно имитировать смешанный респираторный и метаболический ацидоз перинатальной асфиксии 10,11,13,14,15,16,20. Однако в более поздних экспериментах 7,21,22, где газ CO2 был недоступен, также наблюдалось снижение скорости механической вентиляции с последующим зажимом ETT через 20-30 мин, что приводило к смешанному респираторному и метаболическому ацидозу. Высокие уровни CO2 при остановке сердца не только важны для имитации клинической ситуации, но также могут влиять на ROSC. Причина этого может заключаться в том, что остановка сердца, по-видимому, происходит при определенном рН, а рН зависит как от лактата, так и от CO2. Поскольку гиперкапнию легче обратить вспять, чем лактоацидоз, преимущественно респираторный и метаболический ацидоз может определить, как быстро поросята оправятся от асфиксии. Другие модели перинатальной асфиксии или ГИЭ у поросят часто начинают реоксигенацию/реанимацию до остановки сердца, как правило, в соответствии со значениями MAP или продолжительностью асфиксии (например, 45 мин асфиксии 29, 2 часа асфиксии 30, MAP 20 мм рт.ст. 31, MAP 30-35 мм рт.ст. 30, MAP на 70% ниже исходного уровня29,32). Преимущество этой модели заключается в том, что, вызывая остановку сердца, можно изучать данные СЛР и образцов новорожденных до, во время и сразу после остановки сердца. Примечательно, что случайный вывод о том, что значительная часть поросят имеет ПЭА7,33 во время остановки сердца, может повысить применимость модели за пределами области перинатологии 34.
На протяжении многих лет модель совершенствовалась, чтобы свести к минимуму воздействие на поросят седативных препаратов и хирургического вмешательства, а также улучшить выборку и регистрацию данных. Предыдущие протоколы 10,11,13,14,15,16,20 включали индукцию анестезии севофлураном. В настоящее время от этого отказались, поскольку текущий протокол включает в себя непосредственное установление внутривенного доступа через ушную вену и внутривенные лекарства. Это возможно, так как страдания поросят можно избежать, просто завернув поросенка в полотенце перед введением периферического внутривенного катетера обученным врачом. Мидазолам также использовался в первых экспериментальных протоколах; однако субъективная оценка исследователя (Р.С.), который проводил подавляющее большинство вскрытий, заключалась в том, что мозг был в худшем состоянии во время вскрытия, если мидазолам использовался в качестве непрерывной инфузии. Поэтому сейчас мы используем фентанил внутривенно только для поддержания анестезии. Мидазолам можно использовать в болюсных дозах, если поросенок проявляет признаки дистресса, а фентанил и / или пентобарбитал не проявляют эффекта; Тем не менее, нам почти никогда не приходилось его администрировать.
Что касается других усовершенствований, то в предыдущих экспериментах поросята подвергались трахеостомии с помощью плотно закрепленной эндотрахеальной трубки, помещенной через подсвязочный разрез. Эта процедура обеспечивает отсутствие утечек в дыхательных путях, но вызывает хирургическое напряжение у поросенка. С другой стороны, из-за больших верхних дыхательных путей поросенка эндотрахеальная интубация связана со значительной утечкой при использовании ЭТТ без манжеты. Поэтому мы начали использовать ЭТТ с манжетами, что привело к нулевой утечке и значительно более высоким показателям ROSC, сравнимым с экспериментами с трахеостомированными поросятами. Кроме того, были внесены некоторые коррективы в выборку данных. Некоторые из предыдущих экспериментов 7,19,22,33,35,36 включали использование датчика потока, размещенного вокруг левой общей сонной артерии. В последние годы этот датчик потока не был доступен в нашем институте в Осло. Наша лаборатория в Эдмонтоне по-прежнему использует датчик каротидного потока, и его использование может предоставить ценные дополнительные гемодинамические данные для модели. Несколько предыдущих экспериментов также включали использование катетера по объему давления, помещенного в левый желудочек, путем продвижения его через одну из сонных артерий. Введение компрессии грудной клетки искажало регистрацию катетера по давлению и объему, а в некоторых случаях даже вызывало отказ и поломку катетера. Таким образом, от его использования отказались в модели ареста. Недавно в протокол были добавлены неинвазивные мониторы CO, и мы фокусируемся на оптимизации сигналов ЭКГ во время остановки сердца и сердечно-легочной реанимации, поскольку они могут дать ценную информацию о морфологии ЭКГ и ПЭА. Наконец, время наблюдения после ROSC было увеличено с 4 ч до 9,5 ч, потому что 4 ч слишком мало, чтобы можно было обнаружить гистопатологические изменения, гибель клеток и изменения некоторых биомаркеров.
Одним из наиболее важных ограничений этой модели и использования поросят в целом в качестве трансляционной модели является то, что, в отличие от сердечно-легочной реанимации в родильном зале, у поросят уже произошел послеродовой сердечно-легочный переход. Маловероятно, что поросята имеют открытые эмбриональные сердечно-сосудистые шунты и высокое легочное давление, как это было бы в случае с удушливым новорожденным. Хотя исследование Fugelseth et al.37, в котором использовалась предыдущая версия этой модели асфиксии поросят (не остановки сердца), показало, что сосудистые шунты могут вновь открыться у поросят во время асфиксии, их реакции на вентиляцию легких и гемодинамическую поддержку могут отличаться. Таким образом, физиологические измерения не всегда могут быть репрезентативными для переходного новорожденного. Также присутствуют некоторые анатомические различия между поросятами и новорожденными, такие как большие верхние дыхательные пути у поросят, которые вызывают утечку ETT (это означает, что важно использовать ETT с манжетами) и более высокую базальную температуру.
Несмотря на эти ограничения, в мировом исследовательском сообществе существует давняя традиция использования поросят в качестве трансляционной модели перинатальной асфиксии. Свинья похожа на человека с точки зрения анатомии, физиологии, гистологии, биохимии и воспаления38, и, за исключением более низкого веса при рождении (1,5-2,5 кг), новорожденный поросенок имеет размер, аналогичный человеческому новорожденному. Размер и анатомия позволяют использовать приборы, мониторинг, визуализацию и сбор биологических образцов, сравнимых с человеческим новорожденным. Эта модель также позволяет проводить реанимационные исследования, поскольку компрессию грудной клетки относительно легко выполнять так же, как и у новорожденных людей, а анатомия и физиология сердца свиней напоминают анатомию и физиологию человека39, включая распределение коронарной крови, кровоснабжение проводящей системы, гистологический вид миокарда, а также биохимические и метаболические реакции на ишемическое повреждение40. Другим важным фактором является то, что новорожденный поросенок имеет сопоставимое перинатальное развитие мозга с новорожденнымчеловеком 41, и асфиксия приводит к биохимическому ответу с гиперкапнией и смешанным респираторным и метаболическим ацидозом, который напоминает таковой у удушливого новорожденного.
В заключение, эта модель перинатальной асфиксии является технически сложной и трудоемкой. Тем не менее, он предоставляет ценную информацию о физиологических и гемодинамических изменениях во время перинатальной асфиксии, позволяет проводить неонатальные реанимационные исследования и предоставляет ценную информацию о физиологических изменениях до, во время и после остановки сердца, что также может представлять интерес для других областей исследований в медицине, помимо перинатологии.
The authors have nothing to disclose.
Мы хотели бы поблагодарить всех научных сотрудников и исследователей, которые помогли создать, развить и усовершенствовать эту модель перинатальной асфиксии и остановки сердца у поросят в наших учреждениях. Мы хотели бы поблагодарить сотрудников исследовательских центров на животных в Институте хирургических исследований и Институте сравнительной медицины Университета Осло, Норвегия, и техников-исследователей в Университете Альберты, Эдмонтон, Канада, за их сотрудничество в течение многих лет. Мы благодарим Исследовательскую программу студентов-медиков Университета Осло, Исследовательский совет Норвегии и Норвежское общество СВДС и мертворождения за экономическую поддержку этой публикации.
Acid-base machine (ABL 800 Flex) | Radiometer Medical ApS, Brønshøj, Denmark | 989-963 | |
AcqKnowledge 4.0 software for PC | Biopac Systems Inc., Goleta, CA, USA | ACK100W | |
Adhesive aperture drape | OneMed Group Oy, Helsinki, Finland | 1505-01 | |
Adrenaline (1 mg/mL) | Takeda AS, Asker, Norway | Vnr 00 58 50 | Dilute 1:10 in normal saline to 0.1 mg/mL |
Arterial cannula 20 G 1,10 mm x 45 mm | Becton Dickinson Infusion Therapy, Helsingborg, Sweden | 682245 | |
Arterial forceps | Any | ||
Asphyxia gas, 8% oxygen in nitrogen | Linde Gas AS (AGA AS), Oslo, Norway | 110093 | |
Benelyte, 500 mL | Fresenius Kabi, Norge AS, Halden, Norway | 79011 | |
Biopac ECG and invasive blood pressure modules, Model MP 150 | Biopac Systems Inc., Goleta, CA 93117, USA | ECG100C, MP150WSW | |
Box of cardboard for sample storage | Syhehuspartner HF, Oslo, Norway | 2000076 | |
Cannula , 23G x 1 1/4"- Nr.14 | Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain | 300700 | |
Cannula, 18G x 2" | Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain | 301900 | |
Cannula, 21G x 1 1/2"- Nr.2 | Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain | 304432 | |
Centrifuge (Megafuge 1.0R) | Heraeus instruments, Kendro Laboratory Products GmbH, Hanau, Germany | 75003060 | |
Chlorhexidin colored 5 mg/mL | Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway | 00 73 24 | |
Combi-Stopper | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4495101 | |
CRF form | Self-made | ||
Desmarres eyelid retractor 13 cm x 18 mm | Any | ||
Digital Thermometer ama-digit ad 15 th | Amarell, Kreuzwertheim, Germany | 9243101 | |
ECG electrodes, Skintact | Leonhard Lang, Innsbruck, Austria | FS-TC1 /10 | |
Electric heating mattress | Any | ||
Extension set | Codan Medizinische Geräte GmbH & Co KG, Lensahn, Germany | 71.4021 | |
Fentanyl (50 µg/mL) | Hameln, Saksa, Germany | 00 70 16 | |
Fine wood chips | Any | ||
Finnpipette F1, 100-1000 µL | VWR, PA, USA | 613-5550 | |
Fully equipped surgical room | |||
Gas hose | Any | ||
Gauze swabs 5 cm x 5 cm | Bastos Viegas,.a., Penafiel, Portugal | ||
Heparin, heparinnatium 5000 IE/a.e./mL | LEO Pharma AS, Ballerup, Denmark | 46 43 27 | |
HighClean Nonwoven Swabs, 10 cm x 10 cm | Selefa, OneMed Group Ay, Helsinki, Finland | 223003 | |
ICON | Osypka Medical GmbH, Berlin, Germany | Portable non-invasive cardiometer | |
ICON electrodes/ECG electrodes, Ambu WhiteSensor WSP25 | Ambu A/S, Ballerup, Denmark | WsP25-00-S/50 | |
Infusomat Space medical pump | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 8713050 | |
Invasive blood pressure monitoring system | Codan pvb Critical Care GmbH, Forstinning, Germany | 74.6604 | |
Laryngoscope SunMed Greenlinen blade No 2 | KaWe Medical, Asperg, Germany | ||
Leoni plus mechanical ventilator | Löwenstein Medical SE & Co. KG, Bad Ems, Germany | ||
Liquid nitrogen 230 L | Linde Gas AS (AGA AS), Oslo, Norway | 102730 | |
Microcentrifuge tubes, 1.5 ml | Forsyningssenteret, Trondheim, Norway | 72.690.001 | |
Microcuff endotracheal tube, size 3.5 | Avanos, GA, USA | 35162 | |
Needle holder | Any | ||
Neoflon, peripheral venous catheter, 24 G 0.7 mm x 19 mm | Becton Dickinson Infusion Therapy AB, Helsingborg, Sweden | 391350 | |
Neonatal piglets 12-36 h of age | As young as possible | ||
NIRS electrodes, FORE-SIGHT Single Non-Adhesive Sensor Kit Small | Cas Medical systems Inc., Branford Connecticut, USA | 01-07-2000 | |
NIRS machine, FORE-SIGHT Universal, Cerebral Oximeter MC-202, Benchtop regional oximeter FORE-SIGHT | Cas Medical systems Inc., Branford Connecticut, USA | 01-06-2020 | May also use INVOS, Covidien |
Normal saline, NaCl 9 mg/mL, 500 mL. | Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway | Vare nr. 141387 | Unmixed |
Normal saline, NaCl 9 mg/mL, 500 mL. | Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway | 141388 | For IV blood pressure monitoring, add heparin (0.2 ml heparin 5000 IE/a.e./mL in 500 mL of 0.9% NaCl) |
Nunc Cryogenic Tubes 1.8 mL | VWR, PA, USA | 479-6847 | |
Original Perfusor Line, I Standard PE | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 8723060 | |
Oxygen saturation monitor, MasimoSET, Rad 5 | Masimo, Neuchâtel, Switzerland | 9196 | |
Oxygen saturation monitor, OxiMax N-65 | Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA | N65-PDN1 | |
Pentobarbital (100 mg/mL) | Norges Apotekerforening, Oslo, Norway | Pnr 811602 | |
Pipette tips | VWR, PA, USA | 732-2383 | |
Plastic container with holes | Any | Has to allow for circulation of air | |
Printer labels B-492, hvit, 25 mm x 9 mm, 3000 labels | VWR, PA, USA | BRDY805911 | For nunc tubes |
Razor, single use disposable | Any | ||
Rubber gloves | Any | ||
Rubber hot water bottles | Any | ||
Self-inflating silicone pediatric bag 500 ml | Laerdal Medical, Stavanger, Norway | 86005000 | |
Smallbore T-Port Extension Set | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 471954 | |
Sterile surgical gloves latex, Sempermed supreme | Semperit Technische Produkte Ges.m.b.H., Vienna, Austria | size 7: 822751701 | Different sizes |
Stethoscope | Any | ||
Stopcocks, 3-way, Discofix | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 16494C | |
Stylet size 3.5 | Any | ||
SunMed Greenlinen laryngoscope blade No 2 | KaWe Medical, Asperg, Germany | ||
Surgical blade, size 15 | Swann Morton LTD, Sheffield England | 205 | |
Surgical forceps | Any | ||
Surgical scissors | Any | ||
Surgical sponges, sterile | Mölnlycke Health Care, Göteborg, Sweden | C0130-3025 | |
Surgical swabs | Mölnlycke Health Care, Göteborg, Sweden | 159860-00 | |
Surgical tape Micropore 2.5 cm x 9.1 m | 3M Norge AS, Lillestrøm, Norway | 153.5 | |
Suture, Monsoft Monofilament Nylon 3-0 | Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA | SN653 | |
Suture, Polysorb Braided Absorbable | Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA | GL884 | |
Syringe 0.01-1 mL Omnifix F Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 9161406V | Used for acid base blood sampling. Flush with heparin |
Syringe 10 mL Omnifix Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4616103V | |
Syringe 2.5 mL BD Plastipak | Beckton Dickinson S.A., Madrid, Spain | 300185 | Used for blood sampling. Flush with heparinized NaCl |
Syringe 20 mL Omnifix Luer Loc Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4617207V | |
Syringe 20 mL Omnifix Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4616200V | |
Syringe 5 mL Omnifix Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4616057V | |
Syringe 50 mL Omnifix Luer Lock Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4617509F | |
Syringe 50 mL Omnifix Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4616502F | |
Table drape sheet, asap drytop | Asap Norway AS, Skien, Norway | 83010705 | |
Tape Tensoplast 2.5 cm x 4.5 m | BSN Medical, Essity Medical Solutions, Charlotte, NC, USA | 66005305, 72067-00 | |
Timer | Any | ||
Towels | Any | ||
Transparent IV-fixation | Mediplast AB, Malmö, Sweden | 60902106 | |
Ultrasound gel | Optimu Medical Solutions Ltd. Leeds, UK | 1157 | |
Ultrasound machine, LOGIQ e | GE Healthcare, GE Medical Systems, WI, USA | 5417728-100 | |
Utility drape, sterile | OneMed Group Oy, Helsinki, Finland | 1415-01 | |
Vacuette K3E K3EEDTA 2mL | Greiner Bio-One GmbH, Kremsmünster, Austria | 454222 | |
Venflon Pro Safety 22 G 0.9 mm x 25 mm | Becton Dickinson Infusion Therapy, Helsingborg, Sweden | 393222 | |
Ventilation mask made to fit tightly around a piglet snout | Any | Typically cone shaped | |
Weight | Any |