Het huidige protocol beschrijft methoden voor het evalueren van DNA-schadehersteleiwitten in van patiënten afgeleide eierstokkankerorganoïden. Hier zijn uitgebreide plating- en kleuringsmethoden opgenomen, evenals gedetailleerde, objectieve kwantificeringsprocedures.
Immunofluorescentie is een van de meest gebruikte technieken om doelantigenen met een hoge gevoeligheid en specificiteit te visualiseren, waardoor de nauwkeurige identificatie en lokalisatie van eiwitten, glycanen en kleine moleculen mogelijk is. Hoewel deze techniek goed ingeburgerd is in tweedimensionale (2D) celcultuur, is er minder bekend over het gebruik ervan in driedimensionale (3D) celmodellen. Eierstokkankerorganoïden zijn 3D-tumormodellen die de klonale heterogeniteit van tumorcellen, de micro-omgeving van de tumor en cel-cel- en cel-matrixinteracties samenvatten. Ze zijn dus superieur aan cellijnen voor de evaluatie van medicijngevoeligheid en functionele biomarkers. Daarom is het vermogen om immunofluorescentie te gebruiken op primaire eierstokkankerorganoïden uiterst gunstig voor het begrijpen van de biologie van deze kanker. De huidige studie beschrijft de techniek van immunofluorescentie om DNA-schadehersteleiwitten te detecteren in hoogwaardige sereuze patiënt-afgeleide ovariumkankerorganoïden (PDO’s). Na blootstelling van de BOB’s aan ioniserende straling, wordt immunofluorescentie uitgevoerd op intacte organoïden om nucleaire eiwitten als foci te evalueren. Beelden worden verzameld met behulp van z-stack imaging op confocale microscopie en geanalyseerd met behulp van geautomatiseerde foci-telsoftware. De beschreven methoden maken de analyse van temporele en speciale rekrutering van DNA-schadehersteleiwitten en colocalisatie van deze eiwitten met celcyclusmarkers mogelijk.
Eierstokkanker is de belangrijkste doodsoorzaak als gevolg van gynaecologische maligniteit. De meerderheid van de patiënten wordt behandeld met DNA-beschadigende geneesmiddelen zoals carboplatine, en degenen met homologe recombinatieherstel (HRR)-deficiënte tumoren kunnen poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) -remmers 1,2 krijgen. De meeste patiënten ontwikkelen echter resistentie tegen deze therapieën en sterven binnen 5 jaar na de diagnose. Ontregeling van de DNA-schaderespons (DDR) is in verband gebracht met de ontwikkeling van eierstokkanker en zowel chemotherapie als PARP-remmerresistentie3. Studie van de DDR is dus noodzakelijk om de pathofysiologie van eierstokkanker, potentiële biomarkers en nieuwe gerichte therapieën te begrijpen.
De huidige methoden om de DDR te evalueren maken gebruik van immunofluorescentie (IF), omdat dit de nauwkeurige identificatie en lokalisatie van DNA-schade-eiwitten en nucleotide-analogen mogelijk maakt. Zodra er een dubbelstrengsbreuk (DSB) in het DNA is, wordt het histoneiwit H2AX snel gefosforyleerd en vormt het een focus waar DNA-schadehersteleiwitten samenkomen4. Deze fosforylering kan eenvoudig worden geïdentificeerd met behulp van IF; in feite is de ɣ-H2AX-test vaak gebruikt om de inductie van een DSB 5,6,7,8,9 te bevestigen. Verhoogde DNA-schade is in verband gebracht met platinagevoeligheid en werkzaamheid van DNA-schadelijke stoffen 10,11,12, en ɣ-H2AX is voorgesteld als een biomarker geassocieerd met chemotherapierespons in andere kankerbehandelingen 13. Bij een DSB voert een cel die bedreven is in HRR een reeks gebeurtenissen uit die ertoe leiden dat BRCA1 en BRCA2 RAD51 rekruteren om replicatie-eiwit A (RPA) te vervangen en aan het DNA te binden. HRR-reparatie maakt gebruik van een DNA-sjabloon om de DSB getrouw te repareren. Wanneer tumoren echter een tekort aan HRR hebben, vertrouwen ze op alternatieve reparatieroutes zoals niet-homologe eindverbinding (NHEJ). Van NHEJ is bekend dat het foutgevoelig is en een hoge mutatiebelasting op de cel creëert, die 53BP1 als positieve regulatorgebruikt 14. Deze DNA-schade-eiwitten kunnen allemaal nauwkeurig worden geïdentificeerd als foci met behulp van IF. Naast kleuring voor eiwitten, kan IF worden gebruikt om vorkbescherming en enkelstrengs DNA-kloofvorming te bestuderen. Het vermogen om stabiele vorken te hebben is gecorreleerd met platinarespons en onlangs hebben gap-assays het potentieel aangetoond om de respons op PARP-remmers 6,15,16,17 te voorspellen. Daarom is kleuring voor de nucleotide-analogen na introductie in het genoom een andere manier om de DDR te bestuderen.
Tot op heden is de evaluatie van de DDR bij eierstokkanker grotendeels beperkt gebleven tot homogene 2D-cellijnen die de klonale heterogeniteit, micro-omgeving of architectuur van in vivo tumoren niet samenvatten18,19. Recent onderzoek suggereert dat organoïden superieur zijn aan 2D-cellijnen bij het bestuderen van complexe biologische processen zoals DDR-mechanismen6. De huidige methodologie evalueert RAD51, ɣ-H2AX, 53BP1, RPA en geminin in BOB’s. Deze methoden beoordelen de intacte organoïde en maken de studie van DDR-mechanismen mogelijk in een omgeving die meer lijkt op de in vivo tumormicro-omgeving. Samen met confocale microscopie en geautomatiseerde foci-telling kan deze methodologie helpen bij het begrijpen van de DDR-route bij eierstokkanker en het personaliseren van behandelplannen voor patiënten.
De DNA-schaderespons speelt een integrale rol bij zowel de ontwikkeling van eierstokkanker als chemotherapieresistentie. Daarom is een grondig begrip van DNA-reparatiemechanismen noodzakelijk. Hier wordt een methodologie gepresenteerd om DNA-schadehersteleiwitten in 3D, intacte organoïden te bestuderen. Een reproduceerbaar, betrouwbaar protocol wordt ontwikkeld met behulp van kenmerkende antilichamen om DNA-schade, homologe recombinatie, niet-homologe eindverbinding en replicatiestress te evalueren. Belangrijk is dat de…
The authors have nothing to disclose.
We zijn dankbaar voor de begeleiding van Pavel Lobatsjevski, PhD bij het opstellen van dit protocol. We willen ook de Washington University’s School of Medicine in St. Louis’s Department of Obstetrics and Gynecology en Division of Gynecologic Oncology, Washington University’s Dean’s Scholar Program, Gynecologic Oncology Group Foundation en het Reproductive Scientist Development Program bedanken voor hun steun aan dit project.
1x phosphate buffered saline with calcium and magnesium (PBS++) | Sigma | 14-040-133 | |
1x phosphate buffered saline without calcium and magnesium (PBS) | Fisher Scientific | ICN1860454 | |
Ant-53BP1 Antibody | BD Biosciences | 612522 | diluted to 1:500 in staining buffer |
Ant-Geminin Antibody | Abcam | ab104306 | diluted to 1:200 in staining buffer |
Anti-Geminin Antibody | ProteinTech | 10802-1-AP | diluted to 1:400 in staining buffer |
Anti-RAD51 Antibody | Abcam | ab133534 | diluted to 1:1000 in staining buffer |
Anti-yH2AX Antibody | Millipore-Sigma | 05-636 | diluted to 1:500 in staining buffer |
Ant-phospho-RPA32 (S4/S8) Antibody | Bethyl Laboratories | A300-245A-M | diluted to 1:200 in staining buffer |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Fisher Scientific | BP1605 100 | |
Centrifuge; Sorvall St 16R Centrifuge | Thermo Scientific | 75004240 | |
Confocal Microscope, Leica SP5 confocal system DMI4000 | Leica | 389584 | |
Conical Tubes, 15 mL | Corning | 14-959-53A | |
Countess 3 FL Automated Cell Counter (Cell Counting Machine) | Thermo Scientific | AMQAF2000 | |
Countess Cell Counting Chamber Slides | Thermo Scientific | C10228 | |
Cover Slip | LA Colors | Any clear nail polish will suffice | |
Cultrex RGF Basement Membrane Extract, Type 2 | R&D Systems | 3533-010-02 | Could probably use Matrigel or other BME Matrix |
DAPI | Thermo Scientific | R37606 | NucBlue Fixed Cell ReadyProbes Reagent, Diluted in 1x PBS |
Glycine | Fisher Scientific | NC0756056 | |
JCountPro | JCountPro | For access to the software, Email: jcountpro@gmail.com | |
Microcentrifuge Tubes | Fisher Scientific | 07-000-243 | |
Nail Polish | StatLab | SL102450 | |
Parafomraldehyde (PFA), 2% | Electron Microscopy Sciences | 157-4 | Dilute to 4% PFA in PBS++ to obtain 2% PFA |
Permeabilization Buffer | Made in Lab | 0.2% X-100 Triton in PBS++ | |
Pipette | Rainin | 17014382 | |
Pipette Tips | Rainin | 17014967 | |
ProLong Gold Antifade Mountant | Thermo Scientific | P36930 | |
Staining Buffer | Made in Lab | 0.5% BSA, 0.15% Glycine, 0.1% X-100 Triton in PBS++ | |
Thermo Scientific Nunc Lab-Tek II Chamber Slide System | Thermo Scientific | 12-565-8 | |
Triton X-100 | Sigma-Alderich | 11332481001 | |
Trypan Blue Solution, 0.4% | Thermo Scientific | 15250061 | |
TrypLE Express | Invitrogen | 12604013 | animal origin-free, recombinant enzyme |
X-RAD 320 Biological Irradiator | Precision X-Ray Irradiation | X-RAD320 |