Este estudio presenta un modelo quirúrgico porcino de isquemia miocárdica crónica por estenosis progresiva de la arteria coronaria, que resulta en deterioro de la función cardíaca sin infarto. Después de la isquemia, los animales se someten a un injerto de derivación de la arteria coronaria sin bomba con colocación epicárdica de un parche de colágeno cargado de exosomas derivados de células madre. Esta terapia adyuvante mejora la función miocárdica y la recuperación.
La isquemia miocárdica crónica resultante de la estenosis progresiva de la arteria coronaria conduce a la hibernación del miocardio (HIB), definido como el miocardio que se adapta a la disponibilidad reducida de oxígeno mediante la reducción de la actividad metabólica, evitando así la lesión irreversible de los cardiomiocitos y el infarto. Esto es distinto del infarto de miocardio, ya que el HIB tiene el potencial de recuperación con revascularización. Los pacientes con enfermedad arterial coronaria (EAC) significativa experimentan isquemia crónica, lo que los pone en riesgo de insuficiencia cardíaca y muerte súbita. La intervención quirúrgica estándar para la EAC grave es la cirugía de revascularización coronaria (CABG), pero se ha demostrado que es una terapia imperfecta, sin embargo, no existen terapias complementarias para recuperar miocitos adaptados a la isquemia crónica. Para abordar esta brecha, se utilizó un modelo quirúrgico de HIB que utiliza porcino que es susceptible a la cirugía de revascularización coronaria e imita el escenario clínico. El modelo incluye dos cirugías. La primera operación consiste en implantar un constrictor rígido de 1,5 mm en la arteria descendente anterior izquierda (DA). A medida que el animal crece, el constrictor causa gradualmente una estenosis significativa que resulta en una reducción de la función sistólica regional. Una vez que la estenosis alcanza el 80%, el flujo y la función miocárdica se ven afectados, creando HIB. A continuación, se realiza una cirugía de revascularización coronaria sin bomba con la arteria mamaria interna izquierda (LIMA) para revascularizar la región isquémica. El animal se recupera durante un mes para permitir una mejoría miocárdica óptima antes del sacrificio. Esto permite realizar estudios fisiológicos y tisulares de diferentes grupos de tratamiento. Este modelo animal demuestra que la función cardíaca sigue deteriorada a pesar de la cirugía de revascularización coronaria, lo que sugiere la necesidad de nuevas intervenciones complementarias. En este estudio, se desarrolló un parche de colágeno incrustado con exosomas derivados de células madre mesenquimales (MSC), que se puede aplicar quirúrgicamente a la superficie epicárdica distal a la anastomosis LIMA. El material se ajusta al epicardio, es absorbible y proporciona el andamio para la liberación sostenida de factores de señalización. Esta terapia regenerativa puede estimular la recuperación miocárdica que no responde solo a la revascularización. Este modelo se traslada al ámbito clínico al proporcionar medios de exploración fisiológica y mecanicista con respecto a la recuperación en HIB.
A nivel mundial, la enfermedad coronaria grave afecta a más de cien millones de pacientes y, aunque la tasa de mortalidad ha disminuido, sigue siendo una de las principales causas de muerte 1,2. La EAC tiene un amplio espectro clínico desde el infarto de miocardio (IM) hasta la isquemia con viabilidad preservada. La mayor parte de la investigación preclínica se centra en el infarto de miocardio, caracterizado por la presencia de tejido infartado, como es posible estudiar en modelos animales pequeños y grandes. Sin embargo, ese modelo no aborda a los pacientes con viabilidad preservada y susceptibles de revascularización. La mayoría de los pacientes sometidos a cirugía de revascularización coronaria tienen un suministro sanguíneo disminuido y una función limitada, al tiempo que mantienen la variabilidad en la reserva contráctil y la viabilidad3. Sin tratamiento, estos pacientes pueden progresar a insuficiencia cardíaca avanzada y muerte súbita, especialmente durante el aumento de la carga de trabajo4. Entre estos pacientes, el injerto de revascularización coronaria (CABG) es una terapia eficaz, pero puede no resultar en una recuperación funcional completa5. Es importante destacar que la disfunción diastólica, que es un marcador de peores resultados clínicos, no se recupera después de la revascularización, lo que sugiere la necesidad de nuevas terapias adyuvantes durante la cirugía de revascularización coronaria 6,7. En la actualidad, no hay intervenciones adyuvantes clínicamente disponibles que se utilicen con la cirugía de revascularización coronaria para restaurar la capacidad funcional completa de los cardiomiocitos. Se trata de una laguna terapéutica importante, ya que muchos pacientes evolucionan a insuficiencia cardiaca avanzada a pesar de una adecuada revascularización8.
Se creó un innovador modelo porcino de isquemia miocárdica crónica susceptible de cirugía de revascularización coronaria, para imitar la experiencia clínica de la EAC9. Los cerdos proporcionan un buen modelo de enfermedad cardíaca sobre otros animales grandes, ya que no tienen colaterales puente epicárdicos, por lo que la estenosis de la DA por sí sola da lugar a una isquemia regional10. En este estudio, se utilizaron cerdos hembras Yorkshire-Landrace de 16 semanas de edad. En este modelo, la DA se revascularizó con cirugía de revascularización coronaria sin bomba utilizando el injerto de arteria mamaria interna izquierda (LIMA) (Tabla suplementaria 1). La intervención coronaria percutánea (ICP) no es posible para abrir la estenosis ya que el constrictor es un dispositivo rígido. La resonancia magnética cardíaca (RM) se utiliza para evaluar la función global y regional, la anatomía coronaria y la viabilidad de los tejidos. El análisis de la resonancia magnética cardíaca mostró que la función diastólica, caracterizada por la tasa de llenado máximo (PFR), permanece alterada a pesar de la cirugía de revascularización coronaria6. Es probable que el mecanismo de la disfunción diastólica se relacione con la alteración de la bioenergética mitocondrial y la formación de colágeno en la HIB que persisten después de la cirugía de revascularización coronaria11.
Las células madre mesenquimales (MSC) proporcionan señalización terapéutica a través de exosomas para mejorar la recuperación miocárdica cuando se aplican durante la cirugía de revascularización coronaria. En este modelo porcino y en estudios paralelos in vitro , se demostró que la colocación de un parche epicárdico de MSC vicryl durante la cirugía de revascularización coronaria recupera la función contráctil con un aumento de las proteínas mitocondriales clave, a saber, PGC-1α12, un importante regulador del metabolismo energético mitocondrial13. El modelo in vitro nos permitió investigar el mecanismo de señalización de las MSC sobre el deterioro de la función mitocondrial. Los exosomas son microvesículas estables secretadas (50-150 nm) que contienen proteínas o ácidos nucleicos, incluido el microARN (miARN)14. Datos recientes in vitro sugieren que los exosomas derivados de MSC son un importante mecanismo de señalización necesario para la recuperación de la respiración mitocondrial.
Los exosomas derivados de células madre son terapias complementarias prometedoras, ya que son fácilmente accesibles, pueden producirse comercialmente y carecen de conflictos éticos. Teniendo en cuenta la traslación clínica, se creó un parche de colágeno incrustado con exosomas derivados de MSC que se puede suturar quirúrgicamente a la región de hibernación del miocardio. Se demostró que hay una entrega sostenida de exosomas utilizando este parche y proporciona una terapia regenerativa libre de células con un mecanismo de señalización paracrina que se dirige a la recuperación mitocondrial y mejora la biogénesis mitocondrial15. Este procedimiento proporciona el modelo preclínico para estudiar el impacto de las terapias derivadas de MSC para mejorar la función cardíaca mediante la mejora de la función mitocondrial y la reducción de la inflamación en el momento de la revascularización y revertir las adaptaciones de los miocitos a la isquemia crónica.
En este estudio, se muestra un método quirúrgico de cirugía de revascularización coronaria sin bomba que utiliza anastomosis de LIMA a DA para derivar el área de estenosis de la DA proximal, imitando el tratamiento estándar para pacientes con EAC. Como terapia adyuvante con cirugía de revascularización coronaria, se demostró la aplicación quirúrgica de un parche de colágeno incluido en exosomas derivado de MSC en la región isquémica del miocardio. Este modelo quirúrgico se puede utilizar para estudiar las respuestas fisiológicas al efecto paracrino observado con el uso de un parche de exosomas, así como los mecanismos moleculares de recuperación.
Este estudio presenta el primer modelo porcino de miocardio crónicamente isquémico, en el que se demostró que el tratamiento con un parche de colágeno cargado de exosomas derivado de MSC durante la revascularización quirúrgica recupera la función diastólica y sistólica tras la estimulación inotrópica, potencialmente al dirigirse a la recuperación mitocondrial. Previamente, se demostró que en un modelo animal grande de HIB la función diastólica y sistólica, medida por resonancia magnética cardíaca, perma…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue apoyado por el #I01 BX000760 de Revisión de Méritos de VA (RFK) de los Estados Unidos (EE. UU.) El Departamento de Asuntos de Veteranos, BLR&D y el Departamento de Asuntos de Veteranos de EE. UU. subvención #I01 BX004146 (TAB). También agradecemos el apoyo del Instituto del Corazón Lillehei de la Universidad de Minnesota. El contenido de este trabajo no representa los puntos de vista del Departamento de Asuntos de Veteranos del Gobierno de los Estados Unidos.
5 Ethibond | Ethicon | MG46G | Suture |
# 40 clipper blade | Oster | 078919-016-701 | Remove hair from surgery sites |
0 Vicryl | Ethicon | J208H | Suture |
1 mL Syringe | Medtronic/Covidien | 1188100777 | Administer injectable agents |
1" medical tape | Medline | MMM15271Z | Secure wound dressing and IV catheters |
1000mL 0.9% Sodium chloride | Baxter | 2B1324X | IV replacement fluid |
12 mL Syringe | Medtronic/Covidien | 8881512878 | Administer injectable agents |
18 ga needles | BD | 305185 | Administration of injectable agents |
20 ga needles | BD | 305175 | Administration of injectable agents |
20 mL Syringe | Medtronic/Covidien | 8881520657 | Administer injectable agents |
2-0 Vicryl | Ethicon | J317H | Suture |
250 mL 0.9% saline | Baxter | UE1322D | Replacement IV Fluid |
3 mL Syinge | Medtronic/Covidien | 1180300555 | Administer injectable agents |
3-0 Vicryl | Ethicon | VCP824G | Suture |
36” Pressure monitoring tubing | Smith’s Medical | MX563 | Connect art. Line to transducer |
4.0 mm ID endotracheal tube | Medline | DYND43040 | Establish airway for Hibernation |
4-0 Tevdek II Strands | Deknatel | 7-922 | Suture to secure constrictor around LAD |
48” Pressure monitoring tubing | Smith’s Medical | MX564 | Connect art. Line to transducer |
500mL 0.9% Sodium chloride | Baxter | 2B1323Q | Drug delivery, Provide mist for Blower Mister |
6 mL Syringe | Medtronic/Covidien | 1180600777 | Administer injectable agents |
6.0 mm ID endotracheal tube | Mallinckrodt | 86049 | Establish airway for Revasc,MRI and Termination |
6.5 mm ID endotracheal tube | Medline | DYND43065 | Establish airway for Revasc,MRI and Termination |
6” pressure tubing line | Smith’s Medical | MX560 | Collect bone marrow |
60 mL Syringe | Medtronic/Covidien | 8881560125 | Administer injectable agents |
7.0 mm ID endotracheal tube | Medline | DYND43070 | Establish airway for Revasc,MRI and Termination |
7-0 Prolene | Ethicon | M8702 | Suture |
Advanced DMEM (1X) | ThermoFisher Scientific | 12491023 | |
Alcohol Prep pads | MedSource | MS-17402 | Skin disinfectant |
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Unit | Millipore Sigma | UFC910024 | |
Anesthesia Machine | Drager | Fabious Trio | maintains general anesthesia |
Anesthesia Machine + ventilator | DRE Drager- Fabius Tiro | DRE0603FT | Deliver Oxygen and inhalant to patient |
Anesthesia Monitor | Phillips Intellivue | MP70 | Multiparameter for patient safety |
Arterial Line Kit | Arrow | ASK-04510-HF | Femoral catheter for blood pressure monitoring |
Artificial Tears | Rugby | 0536-1086-91 | Lubricate eyes to prevent corneal drying |
Bair Hugger | 3M | Model 505 | Patient Warming system |
Basic pack | Medline | DYNJP1000 | Sterile drapes and table cover |
Blood Collection Tubes- green top | Fisher Scientific | 02-689-7 | Collect microsphere blood samples |
Blower Mister Kit | Medtronic/Covidien | 22120 | Clears surgical field for vessel anastomosis |
BODIPY TR Ceramide | ThermoFisher Scientific | D7540 | |
Bone marrow needle- 25mm 15 ga IO needle | Vidacare | 9001-VC-005 | Collect bone marrow |
Bone Wax | Medline | ETHW31G | Hemostasis of cut bone |
Bovie Cautery hand piece | Covidien | E2516 | Hemostasis |
Bupivicaine | Pfizer | 00409-1161-01 | Local Anesthetic |
Buprenorphine 0.3 mg/mL | Sigma Aldrich | B9275 | Pre operative Analgesic for survivial procedures |
Cell Scrapers | Corning | 353085 | |
Cephazolin 1 gr | Pfizer | 00409-0805-01 | Antibiotic |
Chest Tube | Covidien | 8888561043 | Evacuates air from chest cavity |
Cloroprep | Becton Dickenson | 260815 | Surgical skin prep |
Corning bottle-top vacuum Filter System (500mL) | Millipore Sigma | 430758 | |
CPT tube | BD | 362753 | MSC isolation from bone marrow |
Delrin Constrictor | U of MN | Custom made | Creates stenosis of LAD |
Dermabond | Ethicon | DNX12 | Skin adhesive |
DMEM (1X) Dulbecco's Modified Eagle Medium, HEPES | ThermoFisher Scientific | 12430062 | |
Dobutamine 12.5 mg/mL | Pfizer | 00409-2344-01 | Increases blood pressure and heart rate during the second microsphere blood collection |
ECG Pads | DRE | 1496 | Monitor heart rhythm |
Exosome-Depleted FBS | ThermoFisher Scientific | A2720801 | |
Falcon Disposable Polystyrene Serological Pipets, Sterile, 10mL | Fisher Scientific | 13-675-20 | |
Femoral and carotid introducer | Cordis- J&J | 504606P | femoral and carotis cannulas |
Fetal Bovine Serum, Heat Inactivated, Gibco FBS | ThermoFisher Scientific | 16140089 | |
Flo-thru 1.0 | Baxter | FT-12100 | used to anastomos LIMA to L |
Flo-thru 1.25 | Baxter | FT-12125 | FT-12125 |
Flo-thru 1.5 | Baxter | FT-12150 | FT-12150 |
Flo-thru 2.0 | Baxter | FT-12200 | FT-12200 |
GlutaMAX Supplement | ThermoFisher Scientific | 35050061 | |
Hair Clipper | Oster | 078566-011-002 | Remove hair from surgery sites |
Helistat collagen sponge | McKesson | 570973 1690ZZ | Sponge for embedding exosomes |
Heparin | Pfizer | 0409-2720-03 | anticoaggulant |
Histology Jars | Fisher Scientific | 316-154 | Formalin for tissue samples |
HyClone Characterized Fetal Bovine Serum (FBS) | Cytiva | SH30071.03 | |
Hypafix | BSN Medical | 4210 | Secure wound dressing and IV catheters |
Isoflurane | Sigma Aldrich | CDS019936 | General Anesthestic- Inhalant |
IV Tubing for Blower Mister | Carefusion | 42493E | Adapts to IV Fluids for Blower/Mister |
Jelco 18 ga IV catheter | Smiths medical | 4054 | IV access in Revasc, MRI and Term |
Lidocaine 2% | Pfizer | 00409-4277-01 | Local Anesthetic/ antiarrthymic |
Ligaclips | Ethicon | MSC20 | Surgical Staples for LIMA takedown |
Long blade for laryngoscope | DRE | 12521 | Allows for visualization of trachea for intubation |
Meloxicam 5 mg/mL | Boehringer Ingelheim | 141-219 | Post operative Analgesic |
Microsphere pump | Collect blood samples from femoral introducer | ||
Monopolar Cautery | Covidien | Valleylab™ FT10 | Hemostasis |
Nanosight NS 300 | Malvern Panalytical | MAN0541-03-EN | |
NTA 3.1.54 software | Malvern Panalytical | MAN0520-01-EN-00 | |
OPVAC Synergy II | Terumo Cardiovascular System | 401-230 | Heart positioner and Stabilizer |
Oxygen Tank E cylinder | various | various | Used for Blower Mister if anesthesia machine doesn't have auxiliary flow meter |
PBS, pH 7.2 | ThermoFisher Scientific | 20012050 | |
Penicillin-Streptomycin-Neomycin (PSN) Antibiotic Mixture | ThermoFisher Scientific | 15640055 | |
Pigtail 145 catheter 6 French | Boston Scientific | 08641-41 | Measure LV pressures |
Pressure Transducer | various | Must adapt to anesthesia monitor | Monitor direct arterial pressures |
Propofol | Diprivan | 269-29 | Induction agent |
Roncuronium | Mylan | 67457-228-05 | Neuromuscular blocking agent |
SR Buprenorphine 10 mg/mL | Abbott Labs | NADA 141-434 | Post operative Analgesic |
Sterile Saline 20 mL | Fisher Scientific | 20T700220 | Flush for IV catheters |
Sternal Saw/ Necropsy Saw | Thermo Fisher | 812822 | Used to open chest cavity |
Stop Cocks | Smith Medical | MX5311L | 2 to connect to pig tail |
Succinylcholine 20 mg/mL | Pfizer | 00409-6629-02 | Neuromuscular blocking agent |
Suction tubing | Medline | DYND50223 | |
Suction Container | Medline | DYNDCL03000 | |
Surgery pack with chest retractor | various | See pack list | Femoral cut down and median sternotomy |
Surgical Instruments | various | See pack list | Femoral and carotid cutdowns and sternotomy |
Surgical Spring Clip | Applied Medical | A1801 | Clamp end of LIMA after takedown |
Syringe pump | Harvard | Delivers IV Dobutamine infusion | |
SYTO RNASelect Green Fluorescent cell Stain – 5 mM Solution in DMSO | Millipore Sigma | S32703 | |
Telazol 100 mg/mL | Fort Dodge | 01L60030 | Pre operative Sedative |
Telpha pad | Covidien | 2132 | Sterile wound dressing |
Timer | Time collection of blood samples | ||
Total Exosome Isolation Reagent (from cell culture media) | ThermoFisher Scientific | 4478359 | |
TPP Tissue Culture Flask, T75, Filter Cap w/ 0.22uM PTFE | ThermoFisher Scientific | TP90076 | |
Triple Antibiotic Ointment | Johnson & Johnson | 23734 | Topical over wound |
Vicryl mesh | Ethicon | VKML | Patch for epicardial cell application |
Vortex | Mix microspheres | ||
Xylazine 100 mg/mL | Vedco | 468RX | Pre operative Sedative/ analgesic |