Summary

Tilberedning av matprøver ved hjelp av homogenisering og mikrobølgeassistert våtsyrefordøyelse for bestemmelse av flere elementer med ICP-MS

Published: December 22, 2023
doi:

Summary

Den presenterte protokollen beskriver prøvehomogenisering med en laboratorieblander, syrefordøyelse av matprøver ved bruk av en blanding av 68 vekt% HNO3 og 30 vekt% H2O2 via mikrobølgeassistert våtsyrefordøyelse og multielementbestemmelse utført med induktivt koblet plasmamassespektrometri.

Abstract

Prøvepreparering er avgjørende for elementær bestemmelse, og ulike teknikker er tilgjengelige, hvorav den ene involverer homogenisering etterfulgt av syrefordøyelse. Spesiell forsiktighet er nødvendig under prøvehåndtering i forberedelsesfasen for å eliminere eller minimere potensiell forurensning og analytttap. Homogenisering er en prosess som samtidig reduserer partikkelstørrelsen og fordeler prøvekomponentene jevnt. Etter homogenisering gjennomgår prøven syrefordøyelse, hvor den fordøyes med syrer og hjelpekjemikalier ved forhøyede temperaturer, og omdanner faste prøver til flytende tilstand. I denne prosessen reagerer metaller i den opprinnelige prøven med syrer for å danne vannløselige salter. Prøver fremstilt gjennom syrefordøyelse er egnet for elementær analyse ved hjelp av teknikker som induktivt koblet plasmamassespektrometri, induktivt koblet plasma optisk emisjonsspektroskopi, atomabsorpsjonsspektroskopi, elektrokjemiske metoder og andre analytiske teknikker. Dette arbeidet beskriver fremstilling av matprøver for bestemmelse av flere elementer ved bruk av induktivt koblet plasmamassespektrometri. Den trinnvise prosedyren innebærer homogeniseringsprosessen ved bruk av en blander i laboratoriestørrelse med keramiske blader, etterfulgt av syrefordøyelse i lukkede kar ved bruk av mikrobølgeassistert våtsyrefordøyelse. En blanding av 5,0 ml 68 vekt% HNO3 og 1,0 ml 30 vekt%H2O2tjener som hjelpereagens. Denne veiledningen gir en forklaring på prosessene som er involvert i begge stadier.

Introduction

Elementær analyse er en analytisk prosess for å bestemme elementær sammensetning av forskjellige prøver. Det kan brukes til å kontrollere inntaket av metaller i menneskekroppen (spesielt tungmetaller1) siden deres høye konsentrasjoner kan forårsake uønskede helseproblemer. Tungmetaller er også en av de viktigste miljøforurensningene, derfor er kontroll av deres tilstedeværelse i miljøet nødvendig2. Videre kan elementær analyse brukes til å bestemme den geografiske opprinnelsen til matvarer3 og for å kontrollere kvaliteten på mat- og vannressurser4. I tillegg brukes det til bestemmelse av mikro- og makronæringsstoffer i jord5 og for å få innsikt i geologiske prosesser gjennom historien ved å undersøke den kjemiske sammensetningen av mineraler og sedimenter6. Det er også gjort studier for å bestemme tilstedeværelsen av sjeldne metaller i elektrisk og elektronisk avfall for ytterligere metallregenerering7, for å evaluere suksessen til medikamentelle behandlinger8, og for å verifisere den elementære sammensetningen av metallimplantater9.

Induktivt koblet plasmamassespektrometri (ICP-MS) og induktivt koblet plasma optisk emisjonsspektroskopi (ICP-OES) er ofte brukte teknikker for elementær analyse av forskjellige prøver10. De tillater samtidig bestemmelse av flere elementer med deteksjonsgrenser (LOD) og kvantifiseringsgrenser (LOQ) så lave som ng / L. Generelt har ICP-MS lavere LOD-verdier11 og et bredere lineært konsentrasjonsområde sammenlignet med ICP-OES12. Andre teknikker for å bestemme elementær sammensetning er mikrobølgeindusert plasma optisk emisjonsspektrometri13 og flere varianter av atomabsorpsjonsspektroskopi (AAS), inkludert flammeatomabsorpsjonsspektroskopi, elektrotermisk atomabsorpsjonsspektroskopi2, kalddampatomabsorpsjonsspektroskopi og hydridgenerering atomabsorpsjonsspektroskopi14. Videre er elementær bestemmelse med lav LOD og LOQ mulig med forskjellige elektroanalytiske metoder, spesielt med anodisk strippevoltammetri15,16. Selvfølgelig finnes det andre metoder for å bestemme elementær sammensetning av prøver, men de brukes ikke så ofte som de ovennevnte metodene.

Direkte elementær bestemmelse av faste prøver er mulig ved bruk av laserindusert nedbrytningsspektroskopi og røntgenfluorescens17. For elementær bestemmelse med ICP-MS, ICP-OES og AAS er det imidlertid nødvendig å konvertere faste prøver til flytende tilstand. Til dette formål utføres syrefordøyelse ved bruk av syrer og hjelpereagenser (i de fleste tilfellerH2O2). Syrefordøyelse utføres ved forhøyet temperatur og trykk, omdanner den organiske delen av prøven til gassformige produkter og omdanner metallelementene til vannløselige salter, og løser dem dermed i løsningen18.

Det er to hovedtyper av syrefordøyelse, fordøyelse av åpne kar og fordøyelse av lukkede kar. Fordøyelsen av åpne beholdere er kostnadseffektiv14 , men har begrensninger, for eksempel maksimal fordøyelsestemperatur, som sammenfaller med koketemperaturen til syrer ved atmosfærisk trykk. Prøven kan varmes opp på kokeplater, varmeblokker, vannbad, sandbad2 og mikrobølger19. Ved å varme opp prøven på den måten går mye av den genererte varmen tapt til omgivelsene20, noe som forlenger fordøyelsestiden14. Andre ulemper ved fordøyelsen av åpne beholdere inkluderer større kjemisk forbruk, større mulighet for forurensning fra omgivelsene og mulig tap av analytter på grunn av dannelsen av flyktige komponenter og deres fordampning fra reaksjonsblandingen21.

Lukkede beholdersystemer er mer praktiske for fordøyelsen av organiske og uorganiske prøver sammenlignet med åpne fartøysystemer. Lukkede beholdersystemer benytter en rekke energikilder for å varme opp prøvene, for eksempel ledningsoppvarming og mikrobølger22. Fordøyelsesmetoder som bruker mikrobølger inkluderer mikrobølgeindusert forbrenning23, enkeltreaksjonskammersystemer24 og ofte brukt mikrobølgeassistert våtsyrefordøyelse (MAWD) 25,26. MAWD tillater fordøyelse ved høyere driftstemperaturer, mellom 220 °C og 260 °C og maksimalt trykk opp til 200 bar, avhengig av instrumentets arbeidsforhold27.

Effektiviteten og hastigheten til MAWD avhenger av flere faktorer, inkludert den kjemiske sammensetningen av prøvene, maksimal temperatur, temperaturgradienten, trykket i reaksjonsbeholderen, mengden syrer tilsatt og konsentrasjonen av syrer som brukes28. I MAWD kan fullstendig syrefordøyelse oppnås på få minutter på grunn av de forhøyede reaksjonsbetingelsene sammenlignet med langvarige fordøyelser i åpne karsystemer. Lavere volumer og konsentrasjoner av syrer er nødvendig i MAWD, noe som er i tråd med gjeldende retningslinjer for grønn kjemi29. I MAWD er det nødvendig med en mindre mengde prøve sammenlignet med fordøyelsen av åpne kar for å utføre syrefordøyelse, vanligvis er opptil 500 mg prøve tilstrekkelig 30,31,32. Større prøvemengder kan fordøyes, men de krever en større mengde kjemikalier.

Siden instrumentet for MAWD automatisk kontrollerer reaksjonsbetingelsene og personen ikke kommer i direkte kontakt med kjemikaliene under oppvarming, er MAWD tryggere å betjene enn fordøyelser av åpne beholdere. Imidlertid bør personen alltid fortsette med forsiktighet når han legger til kjemikalier til reaksjonsbeholderne for å forhindre at de kommer i kontakt med kroppen og forårsaker skade. Reaksjonsbeholdere må også åpnes sakte ettersom trykket bygges opp inne i dem under syrefordøyelsen.

Selv om syrefordøyelse er en nyttig teknikk for å forberede prøver for elementær bestemmelse, bør personen som utfører den være klar over dens mulige begrensninger. Syrefordøyelse kan ikke være egnet for alle prøver, spesielt de med komplekse matriser og de som er svært reaktive eller kan reagere eksplosivt. Derfor bør prøvesammensetningen alltid evalueres for å velge passende kjemikalier og reaksjonsbetingelser for fullstendig fordøyelse som løser opp alle ønskede elementer i løsningen. Andre bekymringer som brukeren må vurdere, og adressere er urenheter og tap av analytter ved hvert trinn i prøvepreparering. Syrefordøyelse må alltid utføres i henhold til spesifikke regler eller ved bruk av protokoller.

Protokollen beskrevet nedenfor gir instruksjoner for homogenisering av matprøver i en mikser i laboratoriestørrelse, en prosedyre for rengjøring av blanderens komponenter, riktig veiing av prøven, tilsetning av kjemikalier, utførelse av syrefordøyelse av MAWD, rengjøring av reaksjonsbeholderne etter at fordøyelsen er fullført, klargjøring av prøvene for elementær bestemmelse og utførelse av en kvantitativ bestemmelse av flere elementer med ICP-MS. Ved å følge instruksjonene nedenfor, bør man kunne forberede en prøve som er egnet for elementær bestemmelse og utføre målinger av fordøyede prøver.

Protocol

1. Eksempel homogenisering Bruk en ren keramisk kniv til å kutte matprøvene (brokkoli, sopp, pølser og nudler) manuelt i mindre biter for å fremskynde tørkeprosessen. Forbered nok prøver for minst 6 replikater av syrefordøyelsen (sørg for at minimumsmassen av de tørkede prøvene er 1500 mg).MERK: Økning av prøvens overflateareal utsetter en større del av prøven for den oppvarmede omgivende luften, noe som øker fordampningshastigheten til vannet. Legg prøven i et 250…

Representative Results

HomogeniseringAlle prøvene ble tørket til en konstant masse med laboratorietørketrommelen for å eliminere fuktighet. Ved å overføre prøven til en tørkemaskin kunne den avkjøles til romtemperatur uten å binde fuktighet fra omgivelsene. Matprøvene ble deretter homogenisert ved hjelp av laboratorieblanderen for å oppnå et fint pulver. De resulterende homogeniserte partiklene var jevne i størrelse og jevnt fordelt, slik at underprøver (prøver trukket fra en større prøve) som ble brukt t…

Discussion

Homogenisering
For å sikre reproduserbare resultater i elementær bestemmelse, er det nødvendig å homogenisere prøver før syrefordøyelse på grunn av deres komplekse og inhomogene struktur og sammensetning. Homogenisering tar sikte på å eliminere konstitusjonell og fordelingsmessig heterogenitet. Blanding av prøven minimerer fordelingsheterogenitet ved jevnt omfordelt komponenter gjennom hele prøven. På samme måte, ved å bringe partikkelstørrelsen ned til en ensartet størrelse, redusere…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne anerkjenner den økonomiske støtten fra det slovenske forskningsbyrået (Grant Nos. P2-0414, P2-0118, J1-2470, NK-0001 og J1-4416).

Materials

Ar gas Messer 7440-37-1 Ar 5.0 gas (purity 99.999%).
AS-10 Autosampler system Shimadzu Autosampler connected to the ICP-MS, containing 68 ports for samples.
Automatic pipettes Sartorius 200 µL, 1 mL, and 5 mL automatic pipettes.
Balance XSE104 Mettler Toledo, Columbus, Ohio, USA Analytical balance scale with a maximum weighing mass of 120 g.
Ceramic knife Ceramic knife used for cutting fresh food samples.
Dessicator Glass desiccator with lumps of silica gel.
ETHOS LEAN Milestone, Sorisole, Italy Microwave system for wet acid digestion in closed 100 mL vessels made of TFM-PTFE.
Fume hood Laboratory fume hood with adjustable air flow.
Glass beakers RASOTHERM CarlRoth GmbH + Co.KG 50 mL, 250 mL glass beakers
Glass funnels Small glass funnels fitting into the neck of volumetric flasks.
He gas Messer 7440-59-7 He 5.0 gas (purity 99.999%).
Hydrogen peroxide ThermoFisher Scientific 7722-84-1 Hxdrogen peroxide 100 volumes 30 wt.% solution. Laboratory reagent grade.
ICP multi-element standard solution VIII Supelco 109492 100 mg/L ICP multi-element standard solution containing 24 elements (Al, B, Ba, Be, Bi, Ca, Cd, Co, Cr, Cu, Fe, Ga, K, Li, Mg, Mn, Na, Ni, Pb, Se, Sr, Te, Tl, Zn) in 2 % dilute nitric acid.
ICPMS 2030 Shimadzu Inductively coupled plasma mass spectrometry system for multi-element analysis of digested samples.
ICP-MS Tuning Solution A CarlRoth GmbH + Co.KG 250 mL tuning solution containing 6 elements (Be, Bi, Ce, Co, In, Mn) in 1 % nitric acid.
KIMTECH Purple Nitrile gloves Kimberly-Clark GmbH Disposable Purple Nitrile gloves (S, M or L).
Laboratory coat Any available supplier /
Mixer B-400 BÜCHI Labortechnik AG, Flawil, Switzerland Laboratory mixer with ceramic blades.
Nitric acid ThermoFisher Scientific 7697-37-2 Nitric acid, trace analysis grade, 68 wt%, density 1.42, Primar Plus, For Trace Metal Analysis.
Plastic centrifuge tubes Isolab 50 mL plastic centrifuge tubes with screw caps, single use.
Plastic syringes Injekt B. Braun 2 pice, single use 20 mL syringes.
Plastic tubes for autosampler Shimadzu 046-00147-04 Plastic tubes for autosampler, 15 mL capacity, 16 mm diameter, 100 mm length.
Plastic waste containers Plastic containers for the removal of chemicals after the cleaning procedure of reaction vessels.
Protective googles /
Samples (broccoli, sausage, noodles, zucchini, mushrooms) Fresh samples, which were dried to a constant weight and homogenized during the procedure. The samples were purchased from a local shop.
Spatula Plastic spatula.
Sterilizator Instrumentaria ST 01/02 Instrumentaria Dryer with adjustable temperature.
Syringe filters CHROMAFIL Xtra 729212 Syringe filters with polypropylene housing and polyamide hydrophilic membrane. Membrane diameter 25 mm, membrane pore size 0.2 µm.
Ultrapure water ELGA Labwater, Veolia Water Technologies. Ultrapure water with a resistivity of 18.2 MΩcm, obtained with laboratory water purification system.
Volumetric flasks 25 mL glass volumetric flasks.

References

  1. Catenza, K. F., Donkor, K. K. Determination of heavy metals in cannabinoid-based food products using microwave-assisted digestion and ICP-MS. Food Analytical Methods. 15, 2537-2546 (2022).
  2. Güven, D. E., Akinci, G. Comparison of acid digestion techniques to determine heavy metals in sediment and soil samples. Gazi University Journal of Science. 24, 29-34 (2011).
  3. Soós, &. #. 1. 9. 3. ;., Bódi, &. #. 2. 0. 1. ;., Várallyay, S., Molnár, S., Kovács, B. Microwave-assisted sample preparation of hungarian raw propolis in quartz vessels and element analysis by ICP-OES and ICP-MS for geographical identification. Talanta. 233, 122613 (2021).
  4. De Oliveira, A. F., Da Silva, C. S., Bianchi, S. R., Nogueira, A. R. A. The use of diluted formic acid in sample preparation for macro- and microelements determination in foodstuff samples using ICP-OES. Journal of Food Composition and Analysis. 66, 7-12 (2018).
  5. Moor, C., Lymberopoulou, T., Dietrich, V. J. Determination of heavy metals in soils, sediments and geological materials by ICP-AES and ICP-MS. Microchimica Acta. 136 (3), 123-128 (2001).
  6. Kuznetsova, O. V., Burmii, Z. P., Orlova, T. V., Sevastyanov, V. S., Timerbaev, A. R. Quantification of the diagenesis-designating metals in sediments by ICP-MS: Comparison of different sample preparation methods. Talanta. 200, 468-471 (2019).
  7. Buechler, D. T., et al. Comprehensive elemental analysis of consumer electronic devices: Rare earth, precious, and critical elements. Waste Management. 103, 67-75 (2020).
  8. Riisom, M., Gammelgaard, B., Lambert, I. H., Stürup, S. Development and validation of an ICP-MS method for quantification of total carbon and platinum in cell samples and comparison of open-vessel and microwave-assisted acid digestion methods. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 158, 144-150 (2018).
  9. Stricker, A., et al. Impurities in commercial titanium dental implants – a mass and optical emission spectrometry elemental analysis. Dental Materials. 38 (8), 1395-1403 (2022).
  10. Bressy, F. C., Brito, G. B., Barbosa, I. S., Teixeira, L. S. G., Korn, M. G. A. Determination of trace element concentrations in tomato samples at different stages of maturation by ICP-OES and ICP-MS following microwave-assisted digestion. Microchemical Journal. 109, 145-149 (2013).
  11. Lachas, H., et al. Determination of 17 trace elements in coal and ash reference materials by ICP-MS applied to milligram sample sizes. Analyst. 124 (2), 177-184 (1999).
  12. Meermann, B., Nischwitz, V. ICP-MS for the analysis at the nanoscale-a tutorial review. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 33 (9), 1432-1468 (2018).
  13. Lemos, M. S., Dantas, K. G. F. Evaluation of the use of diluted formic acid in sample preparation for elemental determination in crustacean samples by mip oes. Biological Trace Element Research. 201 (7), 3513-3519 (2022).
  14. Mohammed, E., Mohammed, T., Mohammed, A. Optimization of acid digestion for the determination of hg, as, se, sb, pb and cd in fish muscle tissue. MethodsX. 4, 513-523 (2017).
  15. Sobhanardakani, S., Tayebi, L., Farmany, A., Cheraghi, M. Analysis of trace elements (cu, cd, and zn) in the muscle, gill, and liver tissues of some fish species using anodic stripping voltammetry. Environmental Monitoring and Assessment. 184 (11), 6607-6611 (2012).
  16. Ostapczuk, P., Valenta, P., Rützel, H., Nürnberg, H. Application of differential pulse anodic stripping voltammetry to the determination of heavy metals in environmental samples. Science of The Total Environment. 60, 1-16 (1987).
  17. Gamela, R. R., Costa, V. C., Sperança, M. A., Pereira-Filho, E. R. Laser-induced breakdown spectroscopy (libs) and wavelength dispersive x-ray fluorescence (wdxrf) data fusion to predict the concentration of k, mg and p in bean seed samples. Food Research International. 132, 109037 (2020).
  18. Hu, Z., Qi, L., Holland, H. D., Turekian, K. K. . Treatise on geochemistry (second edition). , 87-109 (2014).
  19. Ojeda, C. B., Rojas, F. S., Worsfold, P., Poole, C., Townshend, A., Miró, M. . Encyclopedia of analytical science (third edition). , 85-97 (2019).
  20. Bizzi, C. A., Nóbrega, J. A., Barin, J. S., Flores, &. #. 2. 0. 1. ;. M. d. M. . Microwave-assisted sample preparation for trace element analysis. , 179-204 (2014).
  21. Twyman, R. M., Worsfold, P., Townshend, A., Poole, C. . Encyclopedia of analytical science (second edition). , 146-153 (2005).
  22. Traversa, L. C., et al. Closed-vessel conductively heated digestion system for the elemental analysis of agricultural materials by high-resolution continuum source flame atomic absorption spectrometry (hr-cs faas). Analytical Letters. 56 (15), 2443-2456 (2023).
  23. Rondan, F. S. Determination of se and te in coal at ultra-trace levels by ICP-MS after microwave-induced combustion. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 34 (5), 998-1004 (2019).
  24. Muller, E. I., et al. Microwave-assisted wet digestion with H2O2 at high temperature and pressure using single reaction chamber for elemental determination in milk powder by ICP-OES and ICP-MS. Talanta. 156 – 157, 232-238 (2016).
  25. Pardinho, R. B., et al. Determination of toxic elements in yerba mate by ICP-MS after diluted acid digestion under O2 pressure. Food Chemistry. 263, 37-41 (2018).
  26. Barela, P. S., et al. Microwave-assisted digestion using diluted nitric acid for further trace elements determination in biodiesel by sf-ICP-MS. Fuel. 204, 85-90 (2017).
  27. Müller, E. I., Mesko, M. F., Moraes, D. P., Korn, M. D. G. A., Flores, &. #. 2. 0. 1. ;. M. M., Flores, &. #. 2. 0. 1. ;. M. d. M. . Microwave-assisted sample preparation for trace element analysis. , 99-142 (2014).
  28. Das, S., Ting, Y. -. P. Evaluation of wet digestion methods for quantification of metal content in electronic scrap material. Resources. 6 (4), 64 (2017).
  29. Nóbrega, J. A., et al. Microwave-assisted digestion of organic samples: How simple can it become. Talanta. 98, 272-276 (2012).
  30. Bizzi, C. A., et al. Evaluation of oxygen pressurized microwave-assisted digestion of botanical materials using diluted nitric acid. Talanta. 83 (5), 1324-1328 (2011).
  31. Da Silva, I. J. S., Lavorante, A. F., Paim, A. P. S., Da Silva, M. J. Microwave-assisted digestion employing diluted nitric acid for mineral determination in rice by ICP-OES. Food Chemistry. 319, 126435 (2020).
  32. Bizzi, C. A., Flores, E. M. M., Barin, J. S., Garcia, E. E., Nóbrega, J. A. Understanding the process of microwave-assisted digestion combining diluted nitric acid and oxygen as auxiliary reagent. Microchemical Journal. 99 (2), 193-196 (2011).
  33. Le Gresley, A., Ampem, G., De Mars, S., Grootveld, M., Naughton, D. P. 34;Real-world" evaluation of lipid oxidation products and trace metals in french fries from two chain fast-food restaurants. Frontiers in Nutrition. 8, 620952 (2021).
  34. Kutscher, D., Cui, J., Cojocariu, C. Key steps to create a sample preparation strategy for inductively coupled plasma (ICP) or ICP-mass spectrometry (ICP-MS) analysis. Spectroscopy. 37 (1), 38-42 (2022).
  35. Mccurdy, E., Proper, W. Improving ICP-MS analysis of samples containing high levels of total dissolved solids. Spectroscopy. 29 (11), 14 (2014).
  36. . Membrane filtration: How to choose the appropriate filter material for every sample Available from: https://www.cytivalifesciences.com/en/us/solutions/lab-filtration/knowledge-center/membrane-filtration-choosing-the-correct-type-of-filter (2023)
  37. May, T. W., Wiedmeyer, R. H. A table of polyatomic interferences in ICP-MS. Atomic Spectroscopy-Norwalk Connecticut. 19, 150-155 (1998).
  38. Taleuzzaman, M. Limit of blank (lob), limit of detection (lod), and limit of quantification (loq). Organic & Medicinal Chemistry International Journal. 7 (5), 127-131 (2018).
  39. Willner, J., et al. A versatile approach for the preparation of matrix-matched standards for la-ICP-MS analysis – standard addition by the spraying of liquid standards. Talanta. 256, 124305 (2023).
  40. Green, J. M. Peer reviewed: A practical guide to analytical method validation. Analytical Chemistry. 68 (9), 305A-309A (1996).
  41. Xu, J., et al. A critical view on spike recovery for accuracy evaluation of analytical method for medicinal herbs. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 62, 210-215 (2012).
  42. Massart, D. L., et al. . Handbook of chemometrics and qualimetrics: Part a. , (1998).
  43. UNOO. . Guidance for the validation of analytical methodology and calibration of equipment used for testing of illicit drugs in seized materials and biological specimens: A commitment to quality and continuous improvement. , (2009).
  44. Berben, G., et al. Guidelines for sample preparation procedures in GMO analysis. Publications Office of the European Union. EUR27021, JRC94042 (2014).
  45. Lacorte, S., Bono-Blay, F., Cortina-Puig, M., Pawliszyn, J. . Comprehensive sampling and sample preparation. , 65-84 (2012).
  46. Kaur, G. J., Orsat, V., Singh, A. An overview of different homogenizers, their working mechanisms and impact on processing of fruits and vegetables. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 63 (14), 2004-2017 (2021).
  47. Baudelaire, E. D., Bhandari, B., Bansal, N., Zhang, M., Schuck, P. . Handbook of food powders. , 132-149 (2013).
  48. Jung, H., Lee, Y. J., Yoon, W. B. Effect of moisture content on the grinding process and powder properties in food: A review. Processes. 6 (6), 69 (2018).
  49. Krejčová, A., Pouzar, M., Černohorský, T., Pešková, K. The cryogenic grinding as the important homogenization step in analysis of inconsistent food samples. Food Chemistry. 109 (4), 848-854 (2008).
  50. Balasubramanian, S., Gupta, M. K., Singh, K. Cryogenics and its application with reference to spice grinding: A review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 52, 781-794 (2012).
  51. Potočnik, D., Jagodic Hudobivnik, M., Mazej, D., Ogrinc, N. Optimization of the sample preparation method for determination of multi-elemental composition in fruit samples by ICP-MS analysis. Measurement: Sensors. 18, 100292 (2021).
  52. DINEN ISO. . Theory of sample preparation using acid digestion, pressure digestion and microwave digestion (microwave decomposition). , (1972).
  53. Bizzi, C. A., Barin, J. S., Oliveira, J. S., Cravotto, G., Flores, E. M. Microwave-assisted oxidation of organic matter using diluted hno 3 under o 2 pressure: Rationalization of the temperature gradient effect for acid regeneration. Journal of the Brazilian Chemical Society. 28, 1673-1681 (2017).
  54. Castro, J. T., et al. A critical evaluation of digestion procedures for coffee samples using diluted nitric acid in closed vessels for inductively coupled plasma optical emission spectrometry. Talanta. 78 (4), 1378-1382 (2009).
  55. Ju, T., Han, S., Meng, Y., Song, M., Jiang, J. Occurrences and patterns of major elements in coal fly ash under multi-acid system during microwave digestion processes. Journal of Cleaner Production. 359, 131950 (2022).
  56. Matusiewicz, H. . Comprehensive analytical chemistry. 41, 193-233 (2003).
  57. Sheng, P. P., Etsell, T. H. Recovery of gold from computer circuit board scrap using aqua regia. Waste Management & Research. 25 (4), 380-383 (2007).
  58. Sucharova, J., Suchara, I. Determination of 36 elements in plant reference materials with different si contents by inductively coupled plasma mass spectrometry: Comparison of microwave digestions assisted by three types of digestion mixtures. Analytica Chimica Acta. 576, 163-176 (2006).
  59. Santos, H. M., et al. Microwave-assisted digestion using diluted HNO3 and H2O2 for macro and microelements determination in guarana samples by ICP-OES. Food Chemistry. 273, 159-165 (2019).
  60. Usepa, E. Method 3052: Microwave assisted acid digestion of siliceous and organically based matrices. United States Environmental Protection Agency, Washington, DC USA. , (1996).
  61. Elemental analysis manual, 4.7 inductively coupled plasma-mass spectrometric determination of arsenic, cadmium, chromium, lead, mercury, and other elements in food using microwave assisted digestion. Available from: https://s27415.pcdn.co/wp-content/uploads/2020/01/64ER20-7/Heavy_Metals/1-FDA-EAM-4.7-Inductively-Coupled-Plasma-MS-Determination-of-Arsenic-Cadmium-Chromium-Lead-Mercury-etc.pdf (2015)
  62. Leme, A. B. P., Bianchi, S. R., Carneiro, R. L., Nogueira, A. R. A. Optimization of sample preparation in the determination of minerals and trace elements in honey by ICP-MS. Food Analytical Methods. 7 (5), 1009-1015 (2014).
  63. Vanhoe, H., Goossens, J., Moens, L., Dams, R. Spectral interferences encountered in the analysis of biological materials by inductively coupled plasma mass spectrometry. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 9, 177-185 (1994).
  64. Loula, M., Kaňa, A., Mestek, O. Non-spectral interferences in single-particle ICP-MS analysis: An underestimated phenomenon. Talanta. 202, 565-571 (2019).
  65. Muller, C. C. Feasibility of nut digestion using single reaction chamber for further trace element determination by ICP-OES. Microchemical Journal. 116, 255-260 (2014).
  66. Muller, A. L. H., Oliveira, J. S. S., Mello, P. A., Muller, E. I., Flores, E. M. M. Study and determination of elemental impurities by ICP-MS in active pharmaceutical ingredients using single reaction chamber digestion in compliance with usp requirements. Talanta. 136, 161-169 (2015).
  67. Duarte, F. A., et al. Microwave-induced combustion in disposable vessels: A novel perspective for sample digestion. Analytical Chemistry. 92 (12), 8058-8063 (2020).
  68. Novaes, C. G., et al. A review of multivariate designs applied to the optimization of methods based on inductively coupled plasma optical emission spectrometry (ICP-OES). Microchemical Journal. 128, 331-346 (2016).
  69. Damak, F., Asano, M., Baba, K., Ksibi, M., Tamura, K. Comparison of sample preparation methods for multielements analysis of olive oil by ICP-MS. Methods and Protocols. 2 (3), 72 (2019).
  70. Thomas, R. . Practical guide to ICP-MS: A tutorial for beginners. , (2013).
  71. Yamada, N. Kinetic energy discrimination in collision/reaction cell ICP-MS: Theoretical review of principles and limitations. Spectrochimica Acta Part B: Atomic Spectroscopy. 110, 31-44 (2015).
  72. The 30-minute guide to ICP-MS. Perkin Elmer, Shelton CT Available from: https://resources.perkinelmer.com/corporate/cmsresources/images/44-74849tch_icpmsthirtyminuteguide.pdf (2001)
  73. Gonzálvez, A., Armenta, S., Pastor, A., De La Guardia, M. Searching the most appropriate sample pretreatment for the elemental analysis of wines by inductively coupled plasma-based techniques. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 56 (13), 4943-4954 (2008).
  74. Lum, T. -. S., Leung, K. . S. -. Y. Strategies to overcome spectral interference in ICP-MS detection. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 31 (5), 1078-1088 (2016).
  75. Agatemor, C., Beauchemin, D. Matrix effects in inductively coupled plasma mass spectrometry: A review. Analytica Chimica Acta. 706 (1), 66-83 (2011).
  76. Melaku, S., Dams, R., Moens, L. Determination of trace elements in agricultural soil samples by inductively coupled plasma-mass spectrometry: Microwave acid digestion versus aqua regia extraction. Analytica Chimica Acta. 543 (1), 117-123 (2005).

Play Video

Cite This Article
Rantaša, M., Majer, D., Finšgar, M. Preparation of Food Samples Using Homogenization and Microwave-Assisted Wet Acid Digestion for Multi-Element Determination with ICP-MS. J. Vis. Exp. (202), e65624, doi:10.3791/65624 (2023).

View Video