Atualmente, a angiografia fluoresceínica (AF) é o método preferido para identificar padrões de vazamento em modelos animais de neovascularização de coroide (CNV). Entretanto, a AF não fornece informações sobre a morfologia vascular. Este protocolo descreve o uso da angiografia verde com indocianina (ICGA) para caracterizar diferentes tipos de lesões de CNV induzida por laser em modelos de camundongos.
A degeneração macular relacionada à idade (DMRI) é uma das principais causas de cegueira entre indivíduos mais velhos, e sua prevalência está aumentando rapidamente devido ao envelhecimento da população. A neovascularização da coroide (NVC) ou DMRI úmida, responsável por 10%-20% de todos os casos de DMRI, é responsável por alarmantes 80%-90% da cegueira relacionada à DMRI. As terapias anti-VEGF atuais mostram respostas subótimas em aproximadamente 50% dos pacientes. A resistência ao tratamento anti-VEGF em pacientes com CNV está frequentemente associada à CNV arteriolar, enquanto os respondedores tendem a ter CNV capilar. Embora a angiografia fluoresceínica (AF) seja comumente usada para avaliar padrões de vazamento em pacientes com DMRI úmida e modelos animais, ela não fornece informações sobre a morfologia vascular da NVC (CNV arteriolar vs. CNV capilar). Este protocolo introduz o uso da angiografia verde com indocianina (ICGA) para caracterizar tipos de lesões em modelos de CNV induzida por laser. Este método é crucial para investigar os mecanismos e estratégias de tratamento da resistência anti-VEGF na DMRI úmida. Recomenda-se incorporar ICGA ao lado de FA para avaliação abrangente de vazamento e características vasculares da CNV em estudos mecanísticos e terapêuticos.
A degeneração macular relacionada à idade (DMRI) é uma condição prevalente que leva à perda grave da visão em indivíduos idosos1. Somente nos Estados Unidos, o número de pacientes com DMRI deve dobrar, chegando a quase 22 milhões até 2050, em comparação com os atuais 11 milhões. Globalmente, espera-se que o número estimado de casos de DMRI atinja impressionantes 288 milhões até 20402.
A neovascularização da coroide (NVC), também conhecida como DMRI “úmida” ou neovascular, pode ter efeitos devastadores na visão devido à formação de vasos sanguíneos anormais abaixo da retina central. Isso leva a hemorragia, exsudação da retina e perda significativa da visão. A introdução de terapias antifator de crescimento endotelial vascular (VEGF), que têm como alvo o VEGF extracelular, revolucionou o tratamento da CNV. No entanto, apesar desses avanços, até 50% dos pacientes apresentam respostas subótimas a essas terapias, com atividade contínua da doença, como acúmulo de líquidos ehemorragias não resolvidas ou novas 3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14.
Estudos clínicos têm indicado que a resistência anti-VEGF em pacientes com NVC frequentemente corresponde à presença de CNV arteriolar, caracterizada por arteríolas ramificadas de grande calibre, alças vasculares e conexões anastomóticas9. O tratamento repetido com anti-VEGF pode contribuir para a anormalização dos vasos, o desenvolvimento de CNV arteriolar e, finalmente, a resistência às terapias anti-VEGF14,15. Nos casos de NVC arteriolar, o extravasamento de líquido persistente é provavelmente devido à exsudação aumentada causada por tight junctions inadequadamente formadas nas alças anastomóticas arteriovenosas, particularmente em condições de alto fluxo sanguíneo9. Por outro lado, indivíduos que respondem bem ao tratamento anti-VEGF tendem a apresentar CNV capilar.
Em nossos estudos utilizando modelos animais, demonstramos que a CNV induzida por laser em camundongos mais velhos desenvolve CNV arteriolar e apresenta resistência ao tratamento anti-VEGF16,17. Por outro lado, a CNV induzida por laser em camundongos mais jovens leva ao desenvolvimento de CNV capilar e alta responsividade ao tratamento anti-VEGF. Assim, é crucial diferenciar os tipos vasculares de CNV para investigações mecanicistas e terapêuticas.
Em ambientes clínicos, a CNV é comumente classificada com base nos padrões de vazamento da angiografia fluoresceínica (FA) (por exemplo, Tipo 1, Tipo 2), que usam corante fluoresceína para rastrear a exsudação e identificar áreas de vazamento patológico. Na pesquisa da DMRI, a CNV é predominantemente estudada usando FA em modelos animais. No entanto, a AF falha em revelar a morfologia vascular da NVC. Além disso, a AF capta apenas imagens no espectro da luz visível e não consegue visualizar a vasculatura coroidal abaixo do epitélio pigmentado da retina (EPR). Em contraste, o verde de indocianina (ICG), que apresenta forte afinidade pelas proteínas plasmáticas, facilita a retenção intravascular predominante e permite a visualização da estrutura vascular e do fluxo sanguíneo9. Ao utilizar a propriedade de fluorescência no infravermelho próximo da ICG, torna-se viável obter imagens do pigmento da retina e coroide usando a angiografia por ICG (ICGA). Neste contexto, é apresentado um protocolo que combina AF e ICGA para investigar o extravasamento e a morfologia vascular da neovascularização de coroide (CNV) induzida por laser em camundongos jovens e velhos, onde CNV capilar e arteriolar são observadas.
Este estudo demonstrou o uso da angiografia verde com indocianina (ICGA) para identificar a morfologia vascular da neovascularização arteriolar e capilar de coroide (CNV) em modelos murinos com CNV induzida por laser. As propriedades da luz infravermelha e ligada à hemoglobina do corante verde de indocianina (ICG) permitiram a detecção da morfologia da CNV, o que é desafiador de se conseguir usando a angiografia fluoresceínica (AF), o método atual empregado pela comunidade de pesquisa.
<p class="jove_content"…The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado por subsídios da BrightFocus Foundation, Retina Research Foundation, Mullen Foundation, e Sarah Campbell Blaffer Endowment in Ophthalmology para YF, NIH core grant 2P30EY002520 para Baylor College of Medicine, e uma concessão irrestrita para o Departamento de Oftalmologia no Baylor College of Medicine da Research to Prevent Blindness.
32-G Insulin Syringe | MHC Medical Products | NDC 08496-3015-01 | |
Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit secondary antibody | Invitrogen | A11008 | |
Anti-α smooth muscle Actin antibody | Abcam | ab5694 | |
Bovine Serum Albumin | Santa Cruz Biotechnology, Inc. | sc-2323 | |
C57BL/6J mice (7-9 weeks) | The Jackson Laboratory | Strain #:000664 | |
Fluorescein Sodium Salt | Sigma-Aldrich | MFCD00167039 | |
Gaymar T Pump Heat Therapy System | Gaymar | TP-500 | Water circulation heat pump for mouse recovery after imaging |
GenTeal Gel | Genteal | NDC 58768-791-15 | Clear lubricant eye gel |
GS-IB4 Alexa-Flour 568 conjugate | Invitrogen | I21412 | |
Heidelberg Eye Explorerer | Heidelberg Engineering, Germany | HEYEX2 | |
Indocyanine Green | Pfaultz & Bauer | I01250 | |
Ketamine | Vedco Inc. | NDC 50989-996-06 | |
Paraformaldehyde | Acros Organics | 416785000 | |
Proparacaine Hydrochloride Ophthalmic Solution (0.5%) | Sandoz | NDC 61314-016-01 | |
Spectralis Multi-Modality Imaging System Heidelberg Engineering, Germany SPECTRALIS HRA+OCT Tropicamide ophthalmic solution (1%) Bausch & Lomb NDC 24208-585-64 for dilation of pupils GenTeal Gel Genteal NDC 58768-791-15 clear lubricant eye gel Ketamine Vedco Inc NDC 50989-996-06 Xylazine Lloyd Laboratories NADA 139-236 Acepromazine Vedco Inc NDC 50989-160-11 32-G Needle Steriject PRE-32013 1-ml syringe BD 309659 Indocyanine Green Pfaltz & Bauer I01250 | Heidelberg Engineering, Germany | SPECTRALIS HRA+OCT | |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | X100-1L | |
Tropicamide ophthalmic solution (1%) | Bausch & Lomb | NDC 24208-585-64 | For dilation of pupils |
Xylazine | Lloyd Laboratories | NADA 139-236 |