Summary

Lesão por congelamento no músculo masseter de camundongo para estabelecer um modelo de fibrose muscular orofacial

Published: December 29, 2023
doi:

Summary

O objetivo deste protocolo é estabelecer um modelo de fibrose muscular orofacial. A comparação da histologia entre camundongos masseter e músculo tibial anterior após lesão por congelamento confirmou a fibrose do músculo masseter. Este modelo facilitará uma investigação mais aprofundada sobre o mecanismo subjacente à fibrose do músculo orofacial.

Abstract

O músculo orofacial constitui um subconjunto de tecido muscular esquelético, com trajetória evolutiva e origem de desenvolvimento distintas. Ao contrário dos músculos dos membros derivados de somitos, os músculos orofaciais se originam dos arcos branquiais, com contribuições exclusivas da crista neural craniana. Um estudo recente revelou que a regeneração também é diferente no grupo muscular orofacial. No entanto, o mecanismo regulatório subjacente ainda precisa ser descoberto. Os modelos atuais de regeneração do músculo esquelético se concentram principalmente nos músculos dos membros e do tronco. Neste protocolo, o gelo seco foi usado para induzir lesão por congelamento no músculo masseter do camundongo e no músculo tibial anterior para criar um modelo de fibrose do músculo orofacial. A dinâmica temporal das células satélites musculares e dos progenitores fibroadipogênicos foi diferente entre os dois músculos, levando a uma regeneração prejudicada das miofibras e deposição excessiva de matriz extracelular. Com a ajuda desse modelo, uma investigação mais profunda sobre a regeneração muscular na área orofacial poderia ser realizada para desenvolver abordagens terapêuticas para pacientes com doenças orofaciais.

Introduction

Os músculos orofaciais são críticos nas atividades fisiológicas diárias, como mastigação, fala, respiração e expressão facial1. Nas deformidades orofaciais congênitas, no entanto, esses músculos apresentam alterações atróficas e fibróticas, levando a comprometimento da saúde corporal e da cognição social2. A cirurgia reconstrutiva facial continua sendo o tratamento de primeira linha, mas até 30-70% dos pacientes pós-operatórios ainda sofrem de perda muscular e disfunção muscular 3,4 A falha na regeneração da musculatura orofacial tem sido atribuída a fatores intrínsecos, que não podem ser corrigidos apenas pela cirurgia.

O surgimento da musculatura orofacial é uma novidade evolutiva, acompanhando a complexa cabeça dos vertebrados e o coração compartimentado 5,6. Ao contrário de seus homólogos derivados de somitos dos membros, os músculos orofaciais se originam do arco branquial7. Esses caracteres filogenéticos e ontogenéticos podem predispô-los a comportamentos regenerativos distintos8. Foi relatado que o músculo masseter (MAS) desenvolveu fibrose grave no momento em que o músculo tibial anterior (TA) se regenerou totalmente após exposição à mesma extensão da lesão 1,9. No entanto, o mecanismo subjacente da regeneração permanece pouco compreendido.

Neste estudo, um modelo de lesão por congelamento do músculo masseter de camundongos foi estabelecido para facilitar a investigação da regeneração do músculo orofacial. Escolhemos 14 dias após a lesão como o momento para avaliar o fenótipo da fibrose, pois foi o primeiro momento em que a divergência discernível foi detectável entre dois músculos. A regeneração completa da SAM após a lesão requer pelo menos 40 semanas1. Consistentemente, este estudo revelou uma deposição notável de colágeno após lesão por congelamento de MAS em comparação com a regeneração regular do TA 14 dias após a lesão. Com a ajuda deste modelo, mais estudos mecanísticos de atrofia e fibrose muscular podem ser realizados, o que, por sua vez, ajudará no desenvolvimento de potenciais vias terapêuticas para promover a regeneração do músculo orofacial após a cirurgia.

Protocol

Todos os procedimentos em animais neste estudo foram revisados e aprovados pelo Comitê de Ética da Escola de Estomatologia da China Ocidental, Universidade de Sichuan (WCHSIRB-D-2020-114). Camundongos C57BL / 6 machos (5 semanas de idade) foram criados em uma instalação com umidade controlada (53 ± 2%) e temperatura controlada (23 ± 2 ° C) e estavam em um ciclo claro/escuro de 12 horas. Consulte a Tabela de Materiais para obter detalhes relacionados a todos os materiais, reagentes e instrumentos u…

Representative Results

A coloração HE e Sirius Red (Figura 4 e Figura Suplementar S1) revelou regeneração muscular completa da AT neste modelo de lesão por congelamento. Em contraste, a SAM exibiu regeneração de miofibras prejudicada e deposição excessiva de matriz extracelular. A histologia do músculo MAS e TA íntegros é mostrada na Figura 4A,B, onde as miofibras estão alinhadas e a área fibrótica apareceu apenas no es…

Discussion

Há uma variedade de modelos de lesão para estudar a regeneração muscular esquelética, incluindo o uso de estímulos físicos, químicos e cirúrgicos 10,11,12,13,14,15,16. A cardiotoxina e o cloreto de bário são os dois produtos químicos mais utilizados para iniciar a regeneração m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudo foi apoiado por doações do Comitê Provincial de Saúde e Bem-Estar de Sichuan (Número da concessão: 21PJ063) e da Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (Número da concessão: 82001031).

Materials

1 mL syringe Shifeng Medical Apparatus and Instrument (Chengdu, Sichuan, China) 1-ml syringe /
Acetone Chron Chemicals Aceton /
Adhesion microscope slides Citotest Scientific 188105 /
Animal depilatory Phygene Scientific PH1877 /
BSA (bovine serum albumin) Solarbio Life Sciences A8010 /
DAPI Solarbio Life Sciences C0065 /
Donkey anti-goat Alexa Fluor 488 Abcam ab150129 1:200
donkey serum Solarbio Life Sciences SL050 /
Dry Ice Sinrro Technology (Chengdu, Sichuan, China) rice-shaped dry ice /
IFKine Red Donkey anti-rabbit Abbkine Scientific Company A24421 1:200
Insulation barrels (big) Thermos D600 /
Insulation barrels (small) Polar Ware 250B /
Isoflurane RWD Life Technology Company (Shenzhen, Guangdong, China) R510-22 /
Isopentane MACKLIN M813375 /
Laminin Sigma-Aldrich L9393 1:1000
Liquid nitrogen Sinrro Technology (Chengdu, Sichuan, China) / /
M.O.M kit Vector Laboratories BMK-2202
Mice   Dashuo Biological Technology Company(Chengdu, Sichuan, China) 5 weeks old /
mounting medium Solarbio Life Sciences S2100 /
Nertral balsam Solarbio Life Sciences G8590 /
Pax7 Developmental Studies Hybridoma Bank  Pax7 1:5
Pdgfra R&D systems AF1062 1:40
Sirus Red Staining Kit Solarbio Life Sciences G1472 /
Surgical instruments (forceps, scissors, needle holder, scalpel, and suture) Zhuoyue Medical Instrument (Suqian, Jiangsu, China) / /
Tissue-tek OCT Sakura 4583 /
Triton Shanghai Scigrace Biotech ABIO-Biofroxx-0006A /
Zoletil Virbac Zoletil 50 /

References

  1. Yoshioka, K., Kitajima, Y., Seko, D., Tsuchiya, Y., Ono, Y. The body region specificity in murine models of muscle regeneration and atrophy. Acta Physiologica. 231 (1), e13553 (2021).
  2. Worley, M. L., Patel, K. G., Kilpatrick, L. A. Cleft lip and palate. Clinics in Perinatology. 45 (4), 661-678 (2018).
  3. Pai, B. C. J., Hung, Y. -. T., Wang, R. S. H., Lo, L. -. J. Outcome of patients with complete unilateral cleft lip and palate: 20-year follow-up of a treatment protocol. Plastic and Reconstructive Surgery. 143 (2), 359e-367e (2019).
  4. Parsaei, Y., Chandler, L., Smetona, J. T., Lopez, J., Steinbacher, D. Aesthetic repair of unilateral cleft lip using the modified inferior triangle and adjunctive techniques. Plastic and Reconstructive Surgery. 149 (1), 70e-73e (2022).
  5. Schubert, F. R., Singh, A. J., Afoyalan, O., Kioussi, C., Dietrich, S. To roll the eyes and snap a bite – function, development and evolution of craniofacial muscles. Seminars In Cell & Developmental Biology. 91, 31-44 (2019).
  6. Vyas, B., Nandkishore, N., Sambasivan, R. Vertebrate cranial mesoderm: developmental trajectory and evolutionary origin. Cellular and Molecular Life Sciences: CMLS. 77 (10), 1933-1945 (2020).
  7. Sambasivan, R., Kuratani, S., Tajbakhsh, S. An eye on the head: the development and evolution of craniofacial muscles. Development. 138 (12), 2401-2415 (2011).
  8. Cheng, X., et al. Head muscle fibro-adipogenic progenitors account for the tilted regeneration towards fibrosis. Biochemical and Biophysical Research Communications. 589, 131-138 (2022).
  9. Pavlath, G. K., et al. Heterogeneity among muscle precursor cells in adult skeletal muscles with differing regenerative capacities. Developmental Dynamics. 212 (4), 495-508 (1998).
  10. Camacho-Alonso, F., et al. Regeneration of lingual musculature in rats using myoblasts over porcine bladder acellular matrix. Oral Diseases. 27 (6), 1580-1589 (2021).
  11. LeBoff, M. S., et al. The clinician’s guide to prevention and treatment of osteoporosis. Osteoporosis International. 33 (10), 2049-2102 (2022).
  12. Julien, A., et al. Direct contribution of skeletal muscle mesenchymal progenitors to bone repair. Nature Communications. 12 (1), 2860 (2021).
  13. Mahdy, M. A. A. Glycerol-induced injury as a new model of muscle regeneration. Cell and Tissue Research. 374 (2), 233-241 (2018).
  14. Guardiola, O., et al. Induction of acute skeletal muscle regeneration by cardiotoxin injection. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (119), 54515 (2017).
  15. Larouche, J. A., Wallace, E. C., Spence, B. D., Buras, E., Aguilar, C. A. Spatiotemporal mapping of immune and stem cell dysregulation after volumetric muscle loss. JCI Insight. 8 (7), e162835 (2023).
  16. Anderson, S. E., et al. Determination of a critical size threshold for volumetric muscle loss in the mouse quadriceps. Tissue Engineering. Part C, Methods. 25 (2), 59-70 (2019).
  17. Lukjanenko, L., et al. Aging disrupts muscle stem cell function by impairing matricellular WISP1 secretion from fibro-adipogenic progenitors. Cell Stem Cell. 24 (3), 433-446.e7 (2019).
  18. Dong, J., Dong, Y., Chen, Z., Mitch, W. E., Zhang, L. The pathway to muscle fibrosis depends on myostatin stimulating the differentiation of fibro/adipogenic progenitor cells in chronic kidney disease. Kidney International. 91 (1), 119-128 (2017).
  19. Lemos, D. R., et al. Nilotinib reduces muscle fibrosis in chronic muscle injury by promoting TNF-mediated apoptosis of fibro/adipogenic progenitors. Nature Medicine. 21 (7), 786-794 (2015).
  20. Joe, A. W. B., et al. Muscle injury activates resident fibro/adipogenic progenitors that facilitate myogenesis. Nature Cell Biology. 12 (2), 153-163 (2010).
  21. Biferali, B., Proietti, D., Mozzetta, C., Madaro, L. Fibro-adipogenic progenitors cross-talk in skeletal muscle: the social network. Frontiers In Physiology. 10, 1074 (2019).

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Cite This Article
Cheng, X., Huang, Y., Li, Y., Li, J., Wang, Y. Freezing Injury in Mouse Masseter Muscle to Establish an Orofacial Muscle Fibrosis Model. J. Vis. Exp. (202), e65847, doi:10.3791/65847 (2023).

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