Summary

食事誘発性肥満糖尿病マウスにおける十二指腸-空腸バイパス手術

Published: October 18, 2024
doi:

Summary

十二指腸空腸バイパス術(DJB)は、グルコース代謝を改善し、インスリン抵抗性を低下させることができます。ここでは、DJBの安定した信頼性の高いマウスモデルを確立するためのプロトコルを紹介します。

Abstract

肥満と2型糖尿病の有病率は、世界的な深刻な健康問題です。肥満は、2型糖尿病、心血管疾患、および一部の癌の主要な病原性因子です。肥満手術は、肥満と糖尿病の両方に対して長期的かつ効果的な治療選択肢を提供します。スリーブ状胃切除術(SG)とRoux-en-Y胃バイパス術(RYGB)は、最も人気のある肥満手術として広く認識されています。さらに、いくつかの探索的肥満手術は、有望な治療効果を示しています。十二指腸空腸バイパス術 (DJB) は、ボディマス指数が低い糖尿病患者向けに特別に調整されており、有益な代謝結果を示しています。しかし、その体重に依存しない代謝の利点は、動物モデルが限られているため、完全には理解されていません。この記事では、食事誘発性肥満(DIO)糖尿病マウスでDJB手術を行うための最適化されたケアプロトコルと手術技術について説明します。マウスモデルを使用することで、DJB手術によって誘発される変化の性質をより深く理解すると同時に、関連する臨床診療を容易にすることができます。

Introduction

肥満と2型糖尿病は、世界で最も多い慢性疾患であり、若年者の間でその有病率が増加しています1。肥満手術は、肥満と糖尿病の最も効果的な治療法であり、長期的な血糖値の安定性を促進しながら、肥満に関連する合併症も改善します2,3。肥満手術にはいくつかの種類があり、胃の容積を減らすか腸の吸収を減らすかによって分類されます。これらには、制限的、吸収不良、および組み合わせ4,5が含まれます。

十二指腸空腸バイパス術 (DJB) は、Rubino と Marescaux によって最初に開発され、2 型糖尿病は胃の容積を減らすのではなく、十二指腸と空腸を接続することで軽減できることを実証しました 6,7。DJBは胃全体を保存し、十二指腸全体と近位空腸をバイパスします。腸は、胆道膵臓、消化器系、および総肢に分けられます6,8。DJBは、Roux-en-Y胃バイパス術(RYGB)、ミニ胃バイパス術、胆膵バイパス術、十二指腸迂回術、DJB plusスリーブ胃切除術9など、肥満手術といくつかの類似点を共有しています。RYGBと比較して、DJBは胃腸吻合を必要としないため、手術時間が短縮され、手術の成功率が向上します。DJBは、グルコース代謝の改善においてRYGBと似ていますが、体重に影響を与えません10。DJB手術後、遠位小腸への迅速な食物供給はグルカゴン様ペプチド-1(GLP-1)の分泌を刺激し、グルコース代謝を改善します11,12

動物モデルの使用は、代謝経路、細胞経路、および分子経路を理解するために不可欠です。肥満手術の動物モデルは、肥満と糖尿病の根底にある潜在的なメカニズムの理解に貢献しています13,14。しかし、種間の生理学的な違いにより、動物モデル15でヒトの病気を完全に再現することは不可能である。研究目的として利用可能な様々な動物モデルの中で、食餌性肥満(DIO)マウスモデルは、ヒトの肥満およびメタボリックシンドロームに最も近い16。DJB手術にはマウスを選抜し、手術の実現可能性を判断し、さらなる研究のための技術を提供しました。この原稿は、DJB手術の技術的側面と実験の詳細の両方を包括的にまとめたものです。

Protocol

以下に説明するすべてのプロトコル手順は、承認番号2020112501の下で、南部戦域司令部総合病院の動物管理および使用委員会のガイドラインに従っています。 1. 術前準備全般 注:30匹の6週齢の雄C57BL/6マウスを購入しました。マウスは、12時間の明暗サイクルの下で特定の病原体を含まない(SPF)実験室に収容されまし?…

Representative Results

一般的な条件DJB手術の平均手術時間は84.5±2.6分でした。15匹のマウスがDJB手術を受け、9匹のマウスが生存しました。 表1に示すように、死亡の大部分は手術中またはその後の7日間に発生しました。術後死亡因は術後1日目の出血(n=2)、術後4日目の吻合部漏出(n=1)、術後7日目の吻合部閉塞(n=2)、術後3週間後の原因不明(n=1)であった。 <p class…

Discussion

1953 年、Varco et al.18 は、肥満手術の始まりとして最初の空腸回腸バイパス術を実施しました。それ以来、外科医によって数多くの肥満手術が行われてきました。これらの手術は、体重減少と代謝合併症の改善をもたらしました4,19,20。さらに、1967年にメイソンと伊藤2…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

本研究は、中国広東省科学技術計画プロジェクト(第202002020069号)の助成を受けて行われました。

Materials

Abdominal retractor F.S.T 17000-03 Colibri Retractor -3cm,retractor range 1.5cm/3cm long
1% sodium pentobarbital solution Guangzhou Chemical Reagent Factory /  Dissolved 500mg of pentobarbital sodium powder in 50ml of normal saline to obtain 1% pentobarbital sodium solution.
Benzylpenicillin sodium for Injection North China Pharmaceutical Company Ltd. F2062121 Penicillin
Buprenorphine Guangzhou Chemical Reagent Factory / Analgesia
Buprenorphine Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd / Analgesic
Citric acid-sodium citrate buffer LEAGENE R00522 Buffer solution
Cotton buds HaoZheng Medical 60220610 Cotton swabs
Depilatory paste Veet AAPR-S222 Hair removal cream
Ear tag ZEYA SUS304 Ear-mark
Electric blanket ZOSEN ZS-CWDRT Heat pad
Electronic scale WETTLER TOLEDO 20060902-6 Measure the weight
Enteral nutritional powder Abbott Laboratories / Nutrition powder
Eye ointment Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd / Protect the eyes
Glucometer Roche 6993788001 Assess blood glucose
Graphpad Prism version 9.4.1 GraphPad Software version 9.4.1 Software for statistical analysis
High-fat diet (High Fat [60FDC] Purified Rodent Diet) Dyets 112252 60kcal% High Fat Diet
Micro Forceps Jinzhong Medical 18-1140 Micro forceps
Micro needle holder Jinzhong Medical EMT-160-Z Needle holder
Micro Scissors Jinzhong Medical YBC010 Micro scissors
Microscope camera LAPSUN E 2000 Video
Ophthalmic scissors Jinzhong Medical Y00030 Surgical scissors
Pentobarbital Guangzhou Chemical Reagent Factory / Narcosis
Sodium chloride Injection Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd B21L0301 NaCl 0.9%
Stereo microscope ZEISS Stemi 305 Binocular stereomicroscope
Streptozotocin Sigma S110910-1g STZ
Suture line LINGQIAO SUTURE ZS-LQPMRZ5/0 Prolene 6/0,Prolene 10/0
Tissue forceps Jinzhong Medical H1701 Surgical forceps

References

  1. Lascar, N., Brown, J., Pattison, H., Barnett, A. H., Bailey, C. J., Bellary, .S. Type 2 diabetes in adolescents and young adults. Lancet Diabetes Endocrinol. 6 (1), 69-80 (2018).
  2. Song, Y., Zhao, F. Bibliometric analysis of metabolic surgery for type 2 diabetes: current status and future prospects. Updates Surg. 74 (2), 697-707 (2022).
  3. Cummings, D. E., Rubino, F. Metabolic surgery for the treatment of type 2 diabetes in obese individuals. Diabetologia. 61 (2), 257-264 (2018).
  4. Buchwald, H. The evolution of metabolic/bariatric surgery. Obes Surg. 24 (8), 1126-1135 (2014).
  5. Akalestou, E., Miras, A. D., Rutter, G. A., le Roux, C. W. Mechanisms of weight loss after obesity surgery. Endocr Rev. 43 (1), 19-34 (2022).
  6. Rubino, F. et al. The mechanism of diabetes control after gastrointestinal bypass surgery reveals a role of the proximal small intestine in the pathophysiology of type 2 diabetes. Ann Surg. 244 (5), 741-749 (2006).
  7. Rubino, F., Marescaux, J. Effect of duodenal-jejunal exclusion in a non-obese animal model of type 2 diabetes: a new perspective for an old disease. Ann Surg. 239 (1), 1-11 (2004).
  8. Akalestou, E., et al. Establishing a successful rat model of duodenal- jejunal bypass: A detailed guide. Lab Anim. 53 (4), 362-371 (2019).
  9. Yu, H. H., Hsieh, M. C., Wu, S. Y., Sy, E. D., Shan, Y. S. Effects of duodenal-jejunal bypass surgery in ameliorating nonalcoholic steatohepatitis in diet-induced obese rats. Diabetes Metab Syndr Obes. 12, 149-159 (2019).
  10. Garciacaballero, M., Navarrete, S., Favretti, F., Celik, A., Del Castillo, D. Diabetes surgery in type 2 BMI 24-29 vs IMC 30-34 diabetic patients: is there differences among restrictive, malabsorptive and gastric bypass procedures? Nutr Hosp. 28 Suppl 2:23-30 (2013).
  11. Vidal, J., Jiménez, A. Diabetes remission following metabolic surgery: is GLP-1 the culprit? Curr Atheroscler Rep. 15 (10):357 (2013).
  12. Speck, M., Cho, Y. M., Asadi, A., Rubino, F., Kieffer, T. J. Duodenal-jejunal bypass protects GK rats from {beta}-cell loss and aggravation of hyperglycemia and increases enteroendocrine cells coexpressing GIP and GLP-1. Am J Physiol Endocrinol Metab. 300 (5), E923-932 (2011).
  13. Ashrafian, H. et al. Metabolic surgery: an evolution through bariatric animal models. Obes Rev. 11(12), 907-920 (2010).
  14. Rao, R. S., Rao, V., Kini, S. Animal models in bariatric surgery–a review of the surgical techniques and postsurgical physiology. Obes Surg. 20 (9), 1293-1305 (2010).
  15. Im, Y. R. et al. A systematic review of animal models of NAFLD finds high-fat, high-fructose diets most closely resemble human NAFLD. Hepatology. 74 (4), 1884-1901 (2021).
  16. Kleinert, M. et al. Animal models of obesity and diabetes mellitus. Nat Rev Endocrinol. 14 (3), 140-162 (2018).
  17. Furman, B. L. Streptozotocin-induced diabetic models in mice and rats. Curr Protoc. 1 (4):e78 (2021).
  18. Buchwald, H., Varco, R. L., Moore, R. B., Schwartz, M. Z. Intestinal bypass procedures. Partial ileal bypass for hyperlipidemia and jejunoileal bypass for obesity. Curr Probl Surg. 1-51 (1975).
  19. DeMaria, E. J. Bariatric surgery for morbid obesity. N Engl J Med. May 24;356(21):2176-2183 (2007).
  20. Bolling, C. F., Armstrong, S. C., Reichard, K. W., Michalsky, M. P. Metabolic and bariatric surgery for pediatric patients with severe obesity. Pediatrics. 144 (6), e20193224 (2019).
  21. Mason, E. E. Gastric bypass for morbid obesity. Surg Annu. 11, 99-126 (1979).
  22. Cheng, Y. et al. Sleeve gastrectomy with bypass of proximal small intestine provides better diabetes control than sleeve gastrectomy alone under postoperative high-fat diet. Obes Surg. 29 (1), 84-92 (2019).
  23. Rubino, F. et al. The role of the small bowel in the regulation of circulating ghrelin levels and food intake in the obese Zucker rat. Endocrinology. 146 (4), 1745-1751 (2005).
  24. Zachariah, P. J. et al. Compared to sleeve gastrectomy, duodenal-jejunal bypass with sleeve gastrectomy gives better glycemic control in T2DM patients, with a lower β-cell response and similar appetite sensations: mixed-meal study. Obes Surg. 26 (12), 2862-2872 (2016).
  25. Jiang, B., et al. Role of proximal intestinal glucose sensing and metabolism in the blood glucose control in type 2 diabetic rats after duodenal jejunal bypass surgery. Obes Surg. 32 (4), 1119-1129 (2022).
  26. Han, H. F. et al. Duodenal-jejunal bypass increases intraduodenal bile acids and upregulates duodenal SIRT1 expression in high-fat diet and streptozotocin-induced diabetic rats. World J Gastroenterol. 28 (31), 4338-4350 (2022).
  27. Yan, S., et al. Reduction of intestinal electrogenic glucose absorption after duodenojejunal bypass in a mouse model. Obes Surg. 23 (9), 1361-1369 (2013).
  28. Arble, D. M. et al. Metabolic comparison of one-anastomosis gastric bypass, single-anastomosis duodenal-switch, Roux-en-Y gastric bypass, and vertical sleeve gastrectomy in rat. Surg Obes Relat Dis. 14 (12), 1857-1867 (2018).
  29. Liang, Y. et al. Duodenal-jejunal bypass surgery reverses diabetic phenotype and reduces obesity in db/db Mice. Curr Chem Genom Transl Med. 11, 41-49 (2017).
  30. Barataud, A. et al. Absence of role of dietary protein sensing in the metabolic benefits of duodenal-jejunal bypass in the mouse. Sci Rep. 7, 44856 (2017).
  31. Close-up on lab animal microsurgery. Lab Anim (NY). 35(1), 43 (2006).
  32. Couceiro, J., Castro, R., Tien, H., Ozyurekoglu, T. Step by step: microsurgical training method combining two nonliving animal models. J Vis Exp. (99), e52625 (2015).
  33. Nasser, K. M., Wahba, H. A., Kamal, E., El-Makhzangy, A. M., Bahaa, N. Animal model for training and improvement of the surgical skills in endolaryngeal microsurgery. J Voice. 26 (3), 351-357 (2012).

Play Video

Cite This Article
He, J., Li, H., Dai, X., Xie, Z., Song, Z., Chen, X., Huang, H., Ding, Y., Qi, T., Liu, Q., Zhang, H., Wu, L. Duodenal-Jejunal Bypass Surgery in Diet-Induced Obese Diabetic Mice. J. Vis. Exp. (212), e66049, doi:10.3791/66049 (2024).

View Video