마이크로미터 규모의 3D 프린팅을 통해 신경 세포 배양을 위한 고분자 장치의 신속한 프로토타이핑이 가능합니다. 원리 증명으로, 뉴런 사이의 구조적 연결은 신경돌기 성장에 영향을 미치는 장벽과 채널을 만들어 제한되었으며, 이러한 조작의 기능적 결과는 세포 외 전기 생리학에 의해 관찰되었습니다.
신경 세포 배양은 수십 년 동안 참조 실험 모델이었습니다. 그러나 3D 세포 배열, 신경돌기 증식에 대한 공간적 제약, 사실적인 시냅스 연결성은 빠져 있습니다. 후자는 구획화의 맥락에서 구조와 기능에 대한 연구를 제한하고 신경 과학에서 문화의 중요성을 감소시킵니다. 시냅스 연결성의 구조화된 해부학적 배열을 생체 외 에서 근사화하는 것은 리듬, 시냅스 가소성, 그리고 궁극적으로 뇌 병태생리학의 출현에 핵심임에도 불구하고 사소한 것이 아닙니다. 여기에서 3D 프린팅 기술로 이광자 중합(2PP)을 사용하여 마이크로미터 규모의 폴리디메틸실록산(PDMS)을 사용하여 고분자 세포 배양 장치를 신속하게 제조할 수 있습니다. 마이크로 포토그래피를 기반으로 하는 기존의 복제 성형 기술과 비교하여 2PP 마이크로 스케일 인쇄는 프로토타입을 빠르고 저렴하게 처리할 수 있습니다. 이 프로토콜은 모듈식 신경 네트워크 배양을 목표로 하는 PDMS 기반 미세유체 장치의 설계 및 제작을 보여줍니다. 원리 증명으로 연결을 물리적으로 제한하기 위해 2챔버 장치가 제공됩니다. 특히, 체외 발달 중 비대칭 축삭 돌기 성장이 선호되고 한 챔버에서 다른 챔버로 유도될 수 있습니다. 단방향 시냅스 상호 작용의 기능적 결과를 조사하기 위해 상용 미세 전극 어레이를 선택하여 상호 연결된 신경 모듈의 생체 전기 활성을 모니터링합니다. 여기에서는 1) 마이크로미터 정밀도로 금형을 제작하고 2) 쥐 대뇌 피질 신경 배양에서 시험관 내 다중 부위 세포외 기록을 수행하는 방법을 설명합니다. 비용을 절감하고 향후 2PP 3D 프린팅에 대한 접근성이 널리 보급됨에 따라 이 방법은 전 세계 연구 실험실에서 점점 더 관련성이 높아질 것입니다. 특히 신경 기술 및 고처리량 신경 데이터 기록에서 단순화된 체 외 모델의 프로토타이핑의 용이성과 신속성은 생체 내 대규모 신경 시스템에 대한 실험 제어 및 이론적 이해를 향상시킬 것입니다.
행동하는 유기체의 신경 활동을 조사하는 것은 몇 가지 과제를 제시합니다. 예를 들어, 뇌 조직에 대한 물리적 접근은 온전함을 유지해야 할 필요성에 의해 제한되기 때문에 뇌의 표재 영역을 더 쉽게 고려할 수 있습니다. 온전한 조직 내에서 특정 표적을 분리하는 것은 종종 어려운 작업이며 때로는 불가능합니다. 해리된 균질한 신경 세포 배양은 신경 회로의 개별적(하위) 세포 구성 요소의 분자, 생화학 및 생물물리학적 특성에 편리하게 접근할 수 있지만 온전한 뇌의 현실적인 연결성 및 해부학적 조직은 손실됩니다. 이러한 근본적인 제약은 생체 내 복잡성을 피하는 동시에 구조를 체외에서 구성할 수 있는 중간 지점을 달성하기 위한 연구 노력에 영감을 주었습니다 1,2,3,4,5,6,7,8,9 . 특히, 모듈식 신경 세포 배양은 지난 수십 년 동안 광범위한 연구의 주제였으며, 아래에 설명된 바와 같이 뇌 생리학의 주요 문제를 해결하는 것을 목표로 합니다.
조직: 생체 내 연구에 따르면 뇌는 해부학적으로 정확한 세포 유형과 돌기 배열이 있는 층으로 구성되어 있습니다. 기능적 분석은 정확한 연결 체계10,11을 사용하여 노드 어셈블리 및 모듈에서 신경 네트워크의 조직을 밝혔습니다. 그러나 연결성과 미세회로 모티프의 역할은 관련된 시냅스의 수가 너무 많을 뿐만 아니라 발달 및 활동 의존적 가소성의 얽힌 효과로 인해 생체 내에서 적절하게 연구될 수 없습니다.
신호 전송: in vivo 또는 무작위 in vitro 배양에서는 신호 전달을 평가하기가 어렵습니다. 축삭돌기 전도 및 축삭돌기 길이에 따른 활동 전위를 검사하려면 표면 기능화 또는 화학적 패터닝에 의해 신경돌기 돌출부를 유도해야 하며, 전기적 활동의 세포외 판독에서 높은 신호 대 잡음비를 제공해야 한다12.
번역 관련성: 병리학적 조건에서 시냅스 전후 요소의 배타적 역할을 해독하려면 이러한 요소에 개별적으로 접근할 수 있어야 합니다. 시냅스 전후 요소를 효과적으로 분리하는 제한된 연결성을 가진 모듈식 배양은 이를 위해 필수적인 도구입니다13.
신경 세포 배양에서 어떤 형태의 구조를 얻기 위한 몇 가지 방법이 있습니다. 크게 화학적 및 물리적 표면 조작으로 분류할 수 있다9. 전자의 방법(14,15)은 특정 (생)화학 화합물에 부착하는 신경 세포의 성향에 의존한다. 이를 위해서는 접착제 또는 매력적인 분자를 마이크로 스케일의 정밀도로 표면에 증착하고 상세한 패턴을 따라야 합니다. 이를 통해 원하는 패턴에 따라 세포 표면을 부분적으로 커버할 수 있지만, 화학적 방법은 본질적으로 제한적이며 신경돌기 성장 유도에서 상대적으로 낮은 성공률을 갖는다16. 축삭 방향성을 완전히 제어하려면 축삭 유도17을 형성하기 위해 임시 화학 물질의 공간적 구배를 설정해야 합니다. 후자의 방법은 물리적 표면 조작을 포함하며 체외에서 신경 네트워크를 구조화하는 데 더 일반적으로 사용됩니다. 신경 세포는 미세한 챔버, 벽, 채널 등과 같은 기하학적 구속에 의해 원하는 위치에서 물리적으로 제약되어 폴리디메틸실록산(PDMS)3,5,6,7,18,19,20과 같은 생체 적합성 폴리머를 형성하여 경화되고 미세유체 장치로 응고됩니다. PDMS 미세유체 제조를 위한 사실상의 방법은 소프트 포토리소그래피(soft photolithography)(21)이며, 여기서 2차원 마스크는 마이크로 스케일로 패터닝되고 UV 노광시 실리콘 기반 재료를 선택적으로 에칭하기 위해 채용된다. 간단히 말해서, UV 경화 수지(즉, 포토레지스트)는 스핀 코팅을 통해 실리콘 웨이퍼에 코팅되어 점도와 회전 속도에 의해 결정되는 특정 높이에 도달합니다. 그런 다음, 패터닝된 마스크를 포토레지스트 위에 위치시키고 UV 광에 노출시킨다. 관심 영역에 해당하는 마스크 내의 투명한 영역은 UV 광선이 포토레지스트 분자의 국부적인 가교를 유도할 수 있도록 합니다. 노출되지 않은 포토레지스트 영역은 용매를 사용하여 씻겨 나가 마스터 몰드를 형성합니다. 이것은 선택한 엘라스토머(예: PDMS)를 베이킹하는 데 반복적으로 사용되며, 원하는 만큼 복제품에 원하는 형상으로 새겨집니다. 이러한 제조 방법은 미세유체 장치(22)를 제조하는 가장 일반적인 방법이다. 아마도 연질 포토리소그래피의 주요 한계는 주목할만한 자본 투자의 전제 조건과 필요한 기술과 전문 지식을 갖춘 생물학 실험실의 생소함일 것입니다. 마스크의 준비와 복잡한 다중 높이의 높은 종횡비 형상을 설계하는 데 필요한 소프트 포토리소그래피의 단계는 사소하지 않으며(23) 종종 아웃소싱을 필요로 한다. 대안적이고 저예산적인 방법들이 제안되었지만, 그것들이 생물학적 프로토타이핑의 고정밀 요구사항들을 항상 만족시키는 것은 아니다24.
여기에서는 이광자 중합(2PP) 및 적층 제조에 의존하는 대체 제조 방법을 제시합니다. 간단하며 고급 미세 가공 및 미세 포토그래피 전문 지식이 필요하지 않습니다. 2PP 마이크로 매뉴팩처의 연구 분야는 90년대 후반25년에 등장했으며 그 이후로 기하급수적인 성장을 목격했습니다26. 이 기법의 기본 원리에 대한 자세한 내용은 다른 곳에서 찾을 수 있다26. 간단히 말해서, 3차원 공간에 여기광 임펄스를 집중시킴으로써 2PP는 강도에 대한 다광자 흡수의 비선형 의존성을 활용합니다. 이는 제한된 흡수 기능을 부여하여 매우 국부적인 영역 내에서 정확하고 선택적인 여기를 보장합니다. 본질적으로, 네거티브-톤 포토레지스트는, 광 노출시 용해도가 감소된 물질로서, 낮은 듀티 사이클(27)에서 펨토초 레이저 펄스의 집속된 빔에 노출된다. 이를 통해 낮은 평균 전력에서 높은 강도의 충격을 허용하여 재료에 해를 끼치지 않고 중합을 가능하게 합니다. 광유도 라디칼 단량체의 상호작용은 라디칼 올리고머를 발생시키고, 광저항 전체에 걸쳐 뚜렷한 부피, 즉 복셀까지 확장되는 중합을 개시하며, 그 크기는 레이저 펄스(28)의 강도 및 지속시간에 의존한다.
이 연구에서는 A) 일회용 고분자 신경 세포 배양 장치를 생산하기 위해 여러 번 재사용할 수 있는 3D 프린팅 금형의 설계 및 신속한 제작(그림 1)과 B) 평면 신경 세포 배양 기질 또는 생체 전기 신호의 다중 사이트 기록이 가능한 기판 통합 미세 전극 어레이의 표면에 기계적 결합이라는 두 가지 구성 요소가 제시됩니다.
3D 기계 모델의 컴퓨터 지원 설계는 여기에서 매우 간략하게 설명되며 3D 프린팅 금형 및 PDMS 장치 제작으로 이어지는 단계도 자세히 설명되어 있습니다.
다양한 CAD(Computer-Aided Design) 소프트웨어 응용 프로그램을 사용하여 시작 3D 개체 모델을 생성하고 STL 파일을 생성하여 2PP 인쇄 프로세스를 제어할 수 있습니다. 자료 목차에서 나열된 첫 번째 및 마지막 응용 프로그램은 무료이거나 무료 라이선스와 함께 제공됩니다. 3D 모델을 구성하려면 항상 2D 스케치를 작성해야 하며, 이 스케치는 후속 모델링 단계에서 돌출됩니다. 이 개념을 설명하기 위해 프로토콜 섹션에서 일반적인 3D CAD 소프트웨어 설계 프로세스가 강조 표시되어 겹치는 큐브로 구성된 구조로 이어집니다. 보다 포괄적인 정보를 보려면 자료 표에 표시된 대로 다양한 온라인 자습서 및 무료 교육 리소스를 사용할 수 있습니다.
그런 다음 결과 STL 파일은 3D 프린터에서 실행할 일련의 명령으로 변환됩니다(즉, 슬라이싱 절차). 사용 중인 특정 2PP 3D 프린터의 경우 소프트웨어 DeScribe를 사용하여 STL 파일을 가져와 독점적인 GWL(General Writing Language) 형식으로 변환합니다. 2PP 프린팅 공정의 성공 여부는 다양한 매개변수, 특히 레이저 출력과 스캔 속도, 스티칭 및 해칭 슬라이싱 거리에 달려 있습니다. 대물렌즈 및 포토레지스트의 선택과 함께 이러한 매개변수의 선택은 설계의 가장 작은 기능과 의도된 응용 분야에 따라 달라집니다. 따라서 파라미터 최적화는 다양한 설계 시나리오 및 사용 사례의 요구 사항을 충족하는 데 필수적입니다. 이 작업을 위해 권장 레시피 IP-S 25x ITO Shell(3D MF)이 인쇄 매개변수에 대한 구성으로 고려되었습니다. 궁극적으로 기계적으로 안정적인 프린팅 부품은 3D 프린팅 시간을 최소화하면서 필요한 해상도로 프린팅됩니다.
이 작업에서 시연된 금형 설계 및 관련 STL 파일은 세포 배양 공간을 외부 영역(즉, 이후에 소스라고 함)과 내부 영역(즉, 이후에 타겟이라고 함)의 두 구획으로 분리하는 정사각형 프레임으로 구성됩니다. 이 두 구획은 각각 날카로운 각도의 경계가 특징인 마이크로 채널 세트를 통해 연결되며, 표적에서 근원으로의 신경돌기의 성장을 특별히 방해하도록 설계되었지만 그 반대의 경우도 마찬가지이며, 따라서 두 영역에서 성장하는 뉴런 간의 방향성 시냅스 연결을 촉진합니다.
이전 연구에서는 신경돌기의 방향성 성장을 촉진하기 위해 다양한 미세채널 형상을 사용했습니다. 예를 들어, 삼각형 형상(18), 수로 미늘 구조물(19) 및 테이퍼링 관로(20)가 있다. 여기에는 마이크로 채널의 경계를 가로지르는 날카로운 각도 장벽이 있는 디자인이 사용되며, 비대칭 입구도 특징입니다. 이러한 마이크로 채널은 밀폐된 내부인 타겟 구획과 외부 영역인 소스 구획 사이의 연속성을 설정하는 역할을 합니다. 소스 측에서 마이크로 채널 초기 부분의 깔때기 모양은 소스와 타겟을 연결하는 최단, 즉 직선 경로를 따라 축삭 다발의 형성과 성장을 촉진하도록 설계되었습니다. 예리한 각도를 향하여 구현된 삼각형 공간은 타겟 측에서 더 큰 부피를 가지므로 신경돌기의 경로 찾기를 효과적으로 지연시키는 동시에 소스에서 비롯된 번들의 빠른 발사를 선호하고 사용 가능한 공간을 점유하는 것을 선호합니다. 마이크로채널의 길이에 대해 540μm를 선택하면 일반적으로 더 짧은 수지상 돌출부(39)를 효과적으로 걸러낸다. 또한 5μm 높이로 세포 소마타가 마이크로 채널을 통해 침투하는 것을 방지합니다. 전반적으로, 이 구성은 외부, 소스 및 내부 Target 모듈 간의 단방향 연결을 촉진하는 것으로 입증되었으며, 여기에는 많은 대안 선택 중 원칙 증명으로 제시되어 있습니다.
2PP 몰드로 제작된 PDMS 장치는 유리 커버슬립 또는 페트리 접시와 같은 일반적인 세포 배양 기판의 표면에 부착할 수 있지만, 이 작업에서는 상업적으로 이용 가능한 기판 통합 미세 전극 어레이가 사용되었습니다. 미세전극 어레이 레이아웃에 대한 3D 설계를 최적화하기 위한 노력은 없었으며, 기계적 결합은 어레이를 가로질러 장치를 배치하는 것만을 목표로 실체현미경 유도 하에 수행되었으며, 일부 미세전극은 소스와 타겟 양쪽에 노출되지 않은 상태로 남겨두었습니다. 이를 통해 신경 세포 배양에서 제한된 연결성의 기능적 결과를 예비적으로 평가할 수 있습니다.
수십 년이 지났음에도 불구하고 마이크로미터 규모의 PDMS 기반 복제 성형에 2PP 기술을 적용하는 것은 최근의 개발입니다43,44. 이러한 맥락에서 사용자가 이 작업을 효과적으로 재현하는 데 도움이 되는 일련의 사항이 아래에 논의됩니다.
3D 모델 설계의 경우 모델에 구멍이나 자체 교차가 없는지 확인합니다. STL로 저장할 때 ASCII로 인코딩된 파일 크기보다 파일 크기가 작기 때문에 이진 파일 형식에 권한을 부여합니다. 이는 복잡한 형상을 가진 설계와 밀리리터 너비의 물체에 특히 유용합니다. 바이너리 STL 파일을 사용하면 나중에 기계 부품을 3D 프린팅할 수 있도록 준비하는 과정에서 CPU 부하가 낮습니다. STL 파일 내에서 피쳐의 물리적 치수는 무차원 단위로 표현됩니다. STL 파일을 후처리하는 동안 단위는 마이크로미터로 해석됩니다. 따라서 파일을 준비할 때 관심 단위(예: 마이크로미터)를 미리 채택하는 것이 좋습니다. 인쇄된 모델의 정확도는 테셀레이션된 삼각형에 가까운 표면 수에 따라 결정됩니다. 표면 수가 충분하지 않으면 원치 않는 표면 거칠기가 나타납니다. 그럼에도 불구하고 매우 많은 수의 표면에서 과도하게 높은 정확도를 목표로 하면 높은 계산 부하가 발생하여 파일 처리 속도가 느려집니다.
3D 프린팅의 경우 프린팅 중에 xy 평면의 빠른 갈보 스캐닝과 z 방향의 피에조 모션을 사용하여 3D 물리적 물체가 형성됩니다. 이것은 주어진 3D 복셀 내에서 펨토초 레이저 빔을 집중시킵니다. 그러나 인쇄 구조가 갈보 및 피에조의 공간 커버리지 범위보다 큰 경우 개체를 프로그래밍 방식으로 블록으로 분할해야 합니다. 이것은 밀리미터 크기의 인쇄 부품에 대한 요구 사항이지만 블록 간의 접합부는 (불완전한) 스티칭 라인과 연관됩니다. 블록 수를 신중하게 최적화하고 x, y 및 z 방향의 스티칭 라인을 배치하는 것은 스티칭 라인이 있는 최종 물체의 중요한 기하학적 특징을 방해하지 않도록 하는 데 중요합니다. 다양한 이유(예: 기판 포토레지스트의 불순물 및 불균일성)로 인해 인쇄 계면에 기포가 형성될 수 있으며 인쇄된 구조의 품질과 무결성에 부정적인 영향을 미칠 수 있습니다. 또한 레이저 출력이 높을수록 발생률이 증가할 수 있습니다. 인쇄된 부품의 가장 낮은 층에서 레이저 출력을 줄이면 기포 형성 가능성이 최소화됩니다. 전체 부품을 견고한 구조로 인쇄하는 대신 쉘 및 스캐폴드 방법을 고려할 수 있습니다. 여기에는 부품(쉘)의 외부 표면과 그 안에 있는 삼각형 프리즘 요소만 인쇄하는 작업이 포함됩니다. 이러한 요소는 수평 층(스캐폴드)으로 분리되어 중합되지 않은 수지를 작은 주머니에 고정합니다. 이 방법은 특히 밀리미터 크기의 구조와 관련된 인쇄 시간을 크게 단축합니다. 그러나 중합되지 않은 수지가 남아 있기 때문에 인쇄된 부품의 변형을 방지하기 위해 이 단계를 부드럽게 수행해야 하지만 완전한 기계적 안정성을 보장하려면 인쇄 후 UV 노출이 필수적입니다. 사후 경화 시간은 선택한 수지, 부품의 두께 및 UV 출력40에 따라 다릅니다. 최적의 결과를 얻으려면 UV 노출 후 포토레지스트 한 방울을 사용하고 단면 절단을 평가하여 전체 심도 경화에 필요한 시간을 추정하기 위한 초기 시험을 수행하는 것이 좋습니다. 일반적인 경화 시간은 5분에서 20분 사이입니다.
PDMS 복제 성형의 경우, 클린룸 시설 없이 마이크로미터 규모의 기능을 갖춘 PDMS 장치를 클린 방식으로 제작하는 것은 어려울 수 있습니다: 공기 중 미세 입자가 PDMS의 접착력이 높은 표면에 상주하여 장치와 기판 사이의 밀봉을 방해하거나 개별 마이크로채널 섹션을 차단할 수 있습니다. 층류 후드 아래에서 프로토콜 단계를 수행하고 PDMS 표면을 이소프로판올로 일관되게 차폐하면 오염 위험을 크게 최소화할 수 있습니다. 경화 온도와 지속 시간은 PDMS 가교 및 그에 따른 물리적 특성에 직접적인 영향을 미칩니다. 특히 경화된 PDMS의 접착력은 중요한 요소입니다. 한편으로는, 신경돌기의 통과를 효과적으로 제한하기 위해 PDMS 장치와 신경 세포 배양에 사용되는 표면(예: 유리 커버슬립 또는 MEA) 사이에 단단한 밀봉이 필요합니다. 한편, PDMS 소자는 소자 제거 후 섬세한 절연층 MEA가 손상되지 않도록 표면에 가역적으로 부착되어야 한다. 경화 중 PDMS 수축이 발생하고 금형의 스케일을 미리 재조정하여 수정할 수 있지만, 여기에 표시된 온도 및 경화 간격의 경우 수축은 2%42 미만이며 단층 PDMS 장치에는 큰 영향을 미치지 않습니다. 전반적으로 최상의 결과를 얻으려면 권장 경화 온도 및 지속 시간 값을 정확하게 따르십시오.
방법의 장점과 한계에 대한 개요
모듈식 신경망의 실험적 연구를 위한 마이크로 스케일 고분자 장치의 신속한 제작을 위해 2광자 직접 레이저 쓰기를 기반으로 하는 기술이 제안됩니다. 소프트 포토리소그래피와 달리 제안된 접근 방식은 기능적인 2PP 3D 프린팅 설정에 액세스할 수 있고 작동할 수 있는 경우 높은 수준의 기술 전문 지식이 필요하지 않습니다. 놀랍게도, 이 방법을 사용하면 CAD로 설계된 3D 모델에서 기능적인 PDMS 장치로 하루 만에 전환할 수 있으므로 개념에서 실질적인 실현에 이르기까지 직접적이고 효율적인 경로를 제공합니다. 특히, 쉘 및 스캐폴드 인쇄 모드를 선택하면 부피의 일부만 인쇄되기 때문에 금형을 만드는 데 필요한 시간이 크게 줄어듭니다. 프린팅 부품의 후속 UV 경화는 기계적 안정성과 견고성을 보장하며, 이는 PDMS를 사용한 50회 이상의 주조 주기에서 확인되었습니다.
기존 방법과 비교할 때 2PP 3D 프린팅은 상당한 종횡비, 까다로운 해상도 요구 사항 및 복잡한 3차원 형상을 가진 금형 제작과 관련하여 가장 두드러지는 분명한 이점을 자랑합니다. 표준 UV 리소그래피를 사용한 마스터 몰드의 생산은 약 200μm의 레지스트 두께로 제한됩니다. 더 큰 높이와 종횡비를 달성하기 위해서는 스핀 코팅 및 노광 사이클(35), 비용이 많이 드는 LIGA(리소그래피, 전기도금 및 성형) 또는 심층 반응성 이온 에칭(DRIE) 공정(36 )의 복잡한 시퀀스가 요구된다. 이와는 대조적으로, 2010년 Kumi et al.의 선구적인 연구(37)에서 입증된 바와 같이, 2PP 기술은 마이크로미터 미만에서 밀리미터에 이르는 인쇄 부품의 종횡비에 대해 본질적으로 무한한 범위를 제공합니다. 여기에서는 부품의 높이에 상당한 차이가 있는 금형의 미세 제조 공정이 예시되었으며, 마이크로 채널의 높이(5μm)와 최대 금형 높이(545μm, 그림 2 참조) 사이에 100배 이상의 차이가 있습니다.
또한 마이크로미터 미만의 분해능은 설명된 프로토콜 사양을 따라 쉽게 달성할 수 있습니다. 이에 비해 UV 포토리소그래피를 통해 향상된 금형 해상도를 달성하려면 자본 투자가 필요합니다. 600nm의 공칭 분해능에서 석영에 크롬 증착을 사용하는 가장 미세한 해상도의 마스크는 250 μm35의 분해능을 갖는 레이저 프린팅 오버헤드 투명 마스크보다 몇 배 더 높은 가격이 책정되지만 Pirlo et al.41의 작업을 참조하십시오. 사내에서 사용할 수 있으려면 선택한 방법이 비용 효율적이어야 합니다. 많은 생물학 실험실의 경우, 기존의 소프트 포토리소그래피 또는 직접 레이저 라이팅과 관련된 전체 비용이 장벽이 됩니다. 필수 구성 요소를 구매하고 조립하여 두 기술에 더 쉽게 접근할 수 있도록 하는 것이 가능하지만 이 접근 방식에는 추가 전문 지식이 필요하고 여전히 상당한 투자가 필요합니다. 이러한 맥락에서 고려해야 할 필수 사항은 직접 레이저 쓰기를 통해 달성할 수 있는 응용 분야의 광범위한 스펙트럼입니다. 주로 금형 미세 제조에 국한된 기존의 소프트 포토리소그래피와 달리 2PP 3D 프린팅은 놀라운 다양성을 보여줍니다. 잠재적인 응용 분야는 미세유체역학 및 미세광학에서 통합 포토닉스 및 미세역학에 이르기까지 다양합니다. 따라서 이 기술에 대한 투자는 다양한 과학 분야를 위한 공유 시설로서 매력적입니다. 예를 들어, 이 프로토콜에서 고안된 2PP 기반 방법론은 우리 기관 내 신경 과학 및 수학 부서 간의 학제 간 협력의 결과입니다. 또한 포토레지스트 개발은 활발한 연구 분야이며 잠재적으로 2PP 3D 프린팅의 적용 범위를 확장할 수 있습니다. 최근 IP-PDMS 수지의 도입이 좋은 예입니다. 이 수지는 PDMS38과 같은 특성을 가진 구조로 중합되어 표면이 뒤얽히거나 빈 공간이 있는 생체 적합성 구성 요소를 직접 미세 가공할 수 있는 가능성을 열어줍니다. 이러한 복잡성은 기존의 복제 성형 절차를 통해 유사한 결과를 달성하는 데 장벽이 됩니다.
이 방법의 시연으로, 모듈식 뉴런 네트워크에서 두 모듈 간의 단방향 연결의 개발을 시사하는 증거가 제공되었습니다. 2PP 기술로 제조된 마이크로 스케일 금형은 여러 PDMS 주조를 거치기에 충분한 내구성을 가지고 있으며 필요한 마이크로 스케일 정밀도를 가지고 있습니다. 결론적으로, 이 작업에 설명된 프로토콜의 적용 범위는 설명된 경우를 넘어 확장됩니다. 2PP 프린팅 기술에 대한 접근이 점점 더 널리 보급됨에 따라 구현에 필요한 초기 투자는 감소하는 반면 잠재적 응용 분야는 확장될 것입니다.
The authors have nothing to disclose.
M.G.는 유럽 혁신 위원회(IN-FET 프로젝트, GA n. 862882, Arbor-IO 프로젝트, FLAG-ERA 및 인간 뇌 프로젝트, ID 650003) 및 SISSA(신경 과학 영역)를 통한 유럽 연합의 H2020 프레임워크 프로그램의 재정적 지원을 인정합니다. GN은 Dipartimenti di Eccellenza 2018-2022(수학 분야) 보조금을 통해 이탈리아 대학 연구부(MUR)의 재정 지원을 인정합니다. 3D 프린팅, 세포 배양 및 라이브 이미징에 도움을 주신 M. Gigante, B. Pastore 및 M. Grandolfo와 토론에 참여해 주신 P. Massobrio, P. Heppenstall, L. Ballerini, Di Clemente, H.C. Schultheiss 박사에게 감사드립니다. 연구비 지원자들은 연구 설계, 자료 수집 및 분석, 출판 결정, 원고 준비에 아무런 역할도 하지 않았다.
2-Propanol | Sigma-Aldrich | 650447 | |
BB cure compact polymerizer | PCube Srl | Wavelengths 365-405 nm, Power 120W | |
BioMed Amber Resin 1 L | formlabs | Resin used for mounting the 3D Printed mold to Petri dish | |
Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | A9418 | |
CAD application software SolidWorks | Dassault Systèmes SolidWorks Corporation, US | Fusion 360 (Autodesk Inc., US), AutoCAD (Autodesk Inc., US), PTC Creo (PTC corp., US), SolidWorks (Dassault Systèmes SolidWorks corp., US) and Tinkercad (Autodesk Inc., US). ————————————– Tutorials: https://www.mycadsite.com/tutorials.html Trainings: https://www.autodesk.com/training |
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CellTracker Green CMFDA | Invitrogen | C7025 | |
D-(+)-Glucose | Sigma-Aldrich | G8270 | |
D-AP5 | Tocris | #0106 | |
Deoxyribonuclease I | Sigma-Aldrich | D5025 | |
DeScribe | Nanoscribe GmbH & Co. KG | ||
di-Sodium hydrogen phosphate | Sigma-Aldrich | 106585 | |
Gentamicin | Thermo Fisher | 15710049 | |
Hanks′ Balanced Salts | Sigma-Aldrich | H2387 | |
HEPES | Sigma-Aldrich | H7523 | |
Horse Serum | Sigma-Aldrich | H1138 | |
in vitro MEA recording system MEA2000 mini | Multichannel Systems GmBH, Reutlingen, Germany | ||
IP-S Photoresist | Nanoscribe GmbH & Co. KG | ||
Kynurenic acid | Sigma-Aldrich | K3375 | |
L-Glutamine (200 mM) | Gibco | 25030081 | |
Magnesium sulfate | Sigma-Aldrich | M2643 | |
MEA recording application software (Experimenter) | Multichannel Systems GmBH, Reutlingen, Germany | ||
Minimum Essential Medium | Sigma-Aldrich | 51412C | |
NanoWrite | Nanoscribe GmbH & Co. KG | ||
ophthalmic stab Knife 15° | HESTIA Medical | ||
Photonic Professional GT2 (PPGT2) 3D printer | Nanoscribe GmbH & Co. KG | SN617 | |
Plasma Cleaner | HARRICK PLASMA | ||
Poly(ethyleneimine) solution | Sigma-Aldrich | P3143 | |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P3911 | |
Propylene glycol methyl ether acetate (PGMEA) | Sigma-Aldrich | 484431 | |
Repel-silane ES | Sigma-Aldrich | GE17133201 | |
Soda lime ITO-coated substrates for 3D MF DiLL | Nanoscribe GmbH & Co. KG | ||
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S6014 | |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S9888 | |
Substrate-integrated planar MEAs (120MEA100/30iR-ITO-gr) | Multichannel Systems GmBH, Reutlingen, Germany | TiN electrodes, SiN isolator, 4 internal reference electrodes,120 recording electrodes, Electrode spacing 100 µm,Electrode diameter 30 µm | |
SYLGARD 184 Kit | Dow Corning | ||
Trypsin | Sigma-Aldrich | T1005 | |
Trypsin inhibitor | Sigma-Aldrich | T9003 | |
vacuum pump Single phase asynchronous 2 poles | CIMAMOTORI |