Bu protokol, orta serebral arterin intraluminal oklüzyonu yoluyla farelerde geçici fokal serebral iskemi modelini açıklar. Ek olarak, manyetik rezonans görüntüleme ve davranış testleri kullanılarak sonuç değerlendirme örnekleri gösterilmiştir.
Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.
Yöntem makalesi
İnmenin Geçici Orta Serebral Arter Oklüzyon Modeli
Bu makalede
Özet
Özet
İnme, küresel olarak önemli bir ölüm veya kronik sakatlık nedeni olarak durmaktadır. Bununla birlikte, mevcut optimal tedaviler iskemik inmenin akut fazında reperfüzyon tedavileri ile sınırlıdır. İnme fizyopatolojisi hakkında bilgi edinmek ve yenilikçi terapötik yaklaşımlar geliştirmek için, in vivo kemirgen inme modelleri temel bir rol oynamaktadır. Genetiği değiştirilmiş hayvanların mevcudiyeti, farelerin deneysel inme modelleri olarak kullanılmasını özellikle teşvik etmiştir.
İnme hastalarında orta serebral arter (MCA) tıkanması sık görülen bir durumdur. Sonuç olarak, en yaygın deneysel model, kraniektomi gerektirmeyen minimal invaziv bir teknik olan MCA'nın intraluminal oklüzyonunu içerir. Bu prosedür, dış karotis arterden (ECA) bir monofilament yerleştirmeyi ve MCA'nın dallanma noktasına ulaşana kadar iç karotis arter (ICA) boyunca ilerletmeyi içerir. 45 dakikalık bir arteriyel tıkanıklıktan sonra, reperfüzyona izin vermek için monofilament çıkarılır. İşlem boyunca, oklüzyon sırasında azalmayı ve ardından reperfüzyon üzerine iyileşmeyi doğrulamak için serebral kan akışı izlenir. Nörolojik ve doku sonuçları, davranışsal testler ve manyetik rezonans görüntüleme (MRG) çalışmaları kullanılarak değerlendirilir.
Giriş
Dünya Sağlık Örgütü'ne göre inme, dünya çapında yılda yaklaşık 15 milyon insanı etkileyen yıkıcı bir hastalıktır. Hastaların yaklaşık üçte biri bu duruma yenik düşerken, üçte biri kalıcı sakatlık yaşar. İnme, nöral ve periferik immün hücreler, damar sistemi ve sistemik yanıtlar gibi çeşitli hücre tiplerini içeren karmaşık bir patolojidir1. Sistem düzeyinde inme ile tetiklenen karmaşık reaksiyon ağı, şu anda in vitro modeller kullanılarak çoğaltılamamaktadır. Bu nedenle, deneysel hayvan modelleri, hastalığın mekanizmalarını araştırmak ve yeni tedaviler geliştirmek ve test etmek için gereklidir. Şu anda, erken doku reperfüzyonu, doku tipi plazminojen aktivatörü (tPA) ile tromboliz veya endovasküler trombektomi1 yoluyla onaylanmış tek müdahaledir.
İnme hastalarında orta serebral arter (MCA) tıkanıklıkları sık görülür. Sonuç olarak, geçici MCA oklüzyonunun (tMCAo) kemirgen modelleri başlangıçta sıçanlardageliştirilmiştir 2,3,4. Günümüzde, genetiği değiştirilmiş fareler, deneysel inme modellerinde en yaygın kullanılan hayvanlardır. Bu çalışmada, farelerde minimal invaziv bir intraluminal tMCAo modeli tanımlanmıştır. Yaklaşım, kraniektomi yapılmadan boyun seviyesindeki karotis arter yoluyla gerçekleştirilir.
Oklüzyon süresinin süresi, iskemik lezyonun yaygınlığını belirleyen kritik bir faktördür. 10 dakikalık kısa tıkanıklıklar bile belirgin bir enfarktüs olmadan seçici nöronal ölüme neden olabilirken, tipik olarak 30 ila 60 dakika süren daha uzun tıkanıklıklar bir dereceye kadar serebral enfarktüse neden olur. MCA'nın korteksi besleyen ve kollateralleri olan proksimal ve distal dallarının aksine, striatuma kan sağlayan lentikülo-striatal arterlerde teminat yoktur5. Sonuç olarak, striatumdaki kan akışında tMCAo'dan sonra kortekse göre daha fazla azalma olur. Bu nedenle, 30 dakika veya daha kısa oklüzyonlar genellikle striatumu etkiler, ancak korteksi etkilemezken, 45 dakikadan itibaren daha uzun oklüzyonlar genellikle striatum ve dorsolateral korteks dahil olmak üzere tüm MCA bölgesinde iskemik bir lezyon oluşturur.
Farelerin refahını sağlamak için işlemden önce analjezik uyguluyoruz ve ameliyat sırasında anestezi kullanıyoruz. Bununla birlikte, anestezi potansiyel olarak farenin fizyolojisinde yapay değişiklikler getirebilir ve bazı sonuç ölçütlerini etkileyebilir6. Cerrahi müdahale, deneyimli personel tarafından yapıldığında, MCAo'yu indüklemek için genellikle yaklaşık 15 dakika sürer. Daha sonra, anestezi altındaki toplam süre oklüzyon süresine bağlıdır. Anestezinin en aza indirilmesinin çok önemli olduğu deneyler için, prosedürdeki alternatif bir adım, oklüzyon döneminde anestezinin kesilmesini ve sadece MCA'yı tıkayan filamentin yerleştirilmesi ve geri çekilmesi için cerrahi adımlarla sınırlandırılmasını içerir. Bu yaklaşım anestezi süresini azaltır ve deneysel model 7,8 üzerindeki potansiyel artefaktsal etkilerini en aza indirir. Bu nedenle, geçici fokal iskemiyi indükleme yöntemi, MCA'nın intraluminal oklüzyonu ile iki varyantla sunulur: tüm oklüzyon süresi boyunca fare uyuşturularak veya bu süre boyunca fare uyanıkken. Her iki durumda da, iskemik fareler üzerinde gerçekleştirilen müdahaleye paralel olarak sahte bir ameliyat yapılmalıdır. Ek olarak, sonuç değerlendirmesine ilişkin veriler, reperfüzyondan sonra çeşitli zaman noktalarında davranış testleri ve MRG ile ölçüldüğü şekilde sağlanır. Son olarak, deneysel prosedürü uygularken göz önünde bulundurulması gereken ana faktörler tartışılmaktadır.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Protokol
Hayvan çalışmaları, Katalan ve İspanyol yasalarına (Real Decreto 53/2013) ve Avrupa Direktiflerine uygun olarak, Barselona Üniversitesi etik komitesinin (Comité Ètic d'Experimentació Animal, CEEA) ve Generalitat de Catalunya'nın yerel düzenleyici kurumlarının onayı ile yürütülmüştür. Çalışmalar ARRIVE kılavuzlarına uygun olarak raporlanmaktadır. Bu prosedür, yaş sınırı olmaksızın 8 haftalıktan başlayarak yetişkin farelerde gerçekleştirilmek üzere tasarlanmıştır. 10-12 haftalık C57BL/6 farelerde geliştirilen cerrahi prosedür örnekleri burada verilmiştir. Fare suşuna bağlı anatomik farklılıklar göz önünde bulundurulmalıdır.
1. Hayvan hazırlama
- Cerrahi işleme başlamadan önce, gerekli tüm malzemeleri ve aletleri toplayın ve sterilize edin. Ameliyat masasını gerekli tüm cerrahi malzemelerle kurun ( Malzeme Tablosunda listelenmiştir).
- Oksijen ve nitröz oksit (% 30 /% 70) karışımı içinde izofluran inhalasyonu kullanarak hayvanı uyuşturun.
- Analjezi sağlamak ve herhangi bir ağrı ve rahatsızlığı hafifletmek için buprenorfini (bkz. Malzeme Tablosu) 0.05 mg / kg vücut ağırlığı dozunda deri altından uygulayın.
NOT: Analjezi zorunludur, ancak farklı protokoller kabul edilir. MCAo'dan sonraki ilk günlerde ağrı ve rahatsızlık belirtileri de kontrol edilmelidir (bkz. adım 4). Gerektiğinde düzeltici çözümler uygular. - Hayvanı, derin anestezi durumuna ulaşana kadar (pençe ponksiyonunda refleks kaybı ve oküler refleks) %5 izofluran içeren bir anestezi indüksiyon kutusuna (Malzeme Tablosuna bakınız) yerleştirin.
- Fareyi ameliyat masasına yerleştirin ve yüz maskesi ile verilen izofluran seviyesini% 1,5'e düşürün. İşlem sırasında göz kuruluğunu önlemek için veteriner merhemi sürün.
- Vücut ısısını bir ısıtma yastığına bağlı bir rektal prob tarafından kontrol edilen 37 ± 0.5 °C'de tutun (Malzeme Tablosuna bakınız).
- Boynun ventral kısmını ve başını (calvaria) elektrikli bir tıraş bıçağıyla tıraş edin. Kürk kalıntılarını dikkatlice temizleyin ve cilt bölgelerini iyot bazlı dezenfektan ve% 70 alkol ile dairesel hareketlerle üç kez dezenfekte edin.
.
2. Lazer Doppler flowmetri (LDF) ile serebral kan akımı (CBF) değerlendirmesi
- Makasla, başın derisinde, sagital sütür yönünde, kulaklardan gözler arasındaki alana kadar bir kesi yapın.
- Cildi geri çekin ve kafatasının sağ tarafındaki periosteuumu çıkarın.
- Koordinatları bulun (Bregma'dan 2,5 mm yanal) ve siyanoakrilat kullanarak Doppler tutucuyu (Malzeme Tablosuna bakınız) takın. Yapıştırıcı kuruduktan sonra Doppler probunu bağlayın ve doğru sinyal okumasını kontrol edin.
3. Geçici orta serebral arter tıkanıklığı (tMCAo)
- Fareyi sırtüstü pozisyona getirin ve tıbbi bantla ameliyat masasına sabitleyin.
- Boyunda orta hat kesisi yapın. Karotis bölgesini ortaya çıkarmak için ekartörler kullanarak cildi ve tükürük bezlerini yanal olarak geri çekin (Malzeme Tablosuna bakınız).
- Ortak karotis arter (CCA), ICA ve ECA'nın vasküler anatomisini ve bunlardan türetilen farklı arterleri (maksiller ve lingual, superior tiroid, oksipital ve pterygopalatin) tanımlayın (Şekil 1A).
- Ana arterleri, ele alınabilmeleri için bitişik bağ dokusundan ayırın.
NOT: Sinirlere, özellikle CCA'ya paralel uzanan vagus sinirine zarar vermemeye özellikle dikkat edin. - Maksiller/lingual çatallanmada ECA'nın etrafına 6-0 ipek sütür (Malzeme Tablosuna bakınız) sarın. Dolaşımı kalıcı olarak kesmek için bir düğümü sıkıca sabitleyin.
- Aynı arterin etrafında, ilk düğüm ile CCA çatallanması arasında ikinci bir dikiş atın ve bu düğümü gevşek tutun.
- CCA'nın etrafına üçüncü bir iplik yerleştirin ve kolayca çözülebilen bir kayma düğümü bağlayın.
NOT: Bu, vasküler bir klipsle de gerçekleştirilebilir, ancak iplik daha fazla hareket ve esneklik sağlar. Bu aşamada, LDF sinyalinde CBF'de ilk azalmayı gözlemlemek mümkündür. - ICA'dan kan dolaşımını kesen bir vasküler klips yerleştirin (Malzeme Tablosuna bakın).
- ECA'da, sıkı düğümün bulunduğu bölgeye yakın küçük bir kesi yapın.
- Monofilamenti, kalın kaplama arteriyel lümene tamamen girene kadar yerleştirin.
- Monofilamenti arterin içinde tutmak için ikinci düğümü sıkın ve kanın uyguladığı basıncın onu dışarı itmesini önleyin (Şekil 1B).
- Vasküler klipsi ICA'dan çıkarın.
- ECA'yı ilk düğümün altından kesin ve kütüğü ICA yönünde yönlendirmek için döndürün (Şekil 1C).
- Monofilamenti, MCA'nın dallandığı noktaya kadar ICA aracılığıyla ilerletin.
NOT: Oklüzyon, LDF okumasında ani bir kan akışı düşüşüne yansır. CBF'deki düşüş bazal değerden% 70'ten fazla olduğunda başarılı bir oklüzyon olarak kabul edilir. CBF ölçüm sistemleri mevcut değilse, tıkanma noktası, yetişkin farelerde genellikle CCA'nın çatallanmasından yaklaşık 11 mm olan ilerlemeye karşı direnç ile not edilebilir.- Oklüzyon döneminde anesteziye devam edilirse fareyi monitörize edin ve 45 dakika boyunca sürekli gözlem altında tutun.
- Oklüzyon döneminde farenin uyanması durumunda, boyun derisini birkaç dikişle dikin. LDF probunun bağlantısını kesmeden, fareyi sıcaklık kontrollü kutuya yerleştirin ve anesteziden kurtulmayı sağlayın.
NOT: Farenin bu dönemde başarılı oklüzyonun göstergesi olarak spontan daire çizme davranışı sergilemesi yaygındır. - 40 dakika sonra, 1.4, 1.5 ve 1.7 maddelerinde belirtilen anestezi ve dezenfeksiyon prosedürlerini izleyerek fareyi tekrar uyuşturun. Ameliyat masasına geri yerleştirin ve dikişleri boyundan alın.
- 45 dakikalık oklüzyondan sonra, monofilamenti yerinde tutan düğümü gevşetin. Filamenti yavaşça ve nazikçe çekin ve doku rekanalizasyonunun gerçekleşip gerçekleşmediğini kontrol edin.
- Filamenti dışarı çekin ve kan kaybını önlemek için düğümü sıkın.
- CCA düğümünü çözün. Arteriyel duvar hasarı olmadığından emin olun.
- Ekartörleri çıkarın ve kasları, bezleri ve cildi yeniden konumlandırın. Cildi dikin (6-0) ve dezenfektan uygulayın.
- Doppler probunu ayırın ve tutucuyu ayırın. Başın cildini dikin ve dezenfekte edin.
- Anesteziden iyileşme döneminde, fareyi sıcaklığı korumak için ısıtıcı bulunan bir kafeste bırakın. Anesteziden tamamen iyileşene kadar sürekli gözlem altında tutun. İyileştikten sonra, fare kafesine geri dönebilir.
NOT: Sosyal zenginleştirme ile konut şiddetle tavsiye edilir. Bununla birlikte, saldırganlığı önlemek için ameliyatlı fareleri ameliyatlı farelerle aynı kafeste herhangi bir fiziksel ayrım olmadan asla karıştırmayın.
4. Ameliyat sonrası bakım
- Yerel yönetmeliklere göre belirlenen prosedür ve yönetmeliklere uyarak hayvanları periyodik olarak denetleyin. Ameliyattan sonra ağrıyı en aza indirmek için uygun programda analjezik tedavi sağlayın.
NOT: Bu çalışmada, girişimin başlangıcında olduğu gibi aynı analjezik (Buprenorfin 0.05 mg / kg vücut ağırlığı) ameliyattan 6 saat ve 24 saat sonra uygulandı. - Denetim parametreleri bunu gösterdiğinde, kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek ötenazi gerçekleştirin.
- Günlük olarak hayvanların ağırlığını izleyin. Ameliyattan sonraki ilk birkaç gün boyunca hayvanlara yumuşak yiyecekler verin. Ek olarak, ameliyattan hemen sonra deri altı salin (200 μL) enjeksiyonu ile ve farenin kendi kendine hidratasyon yapmadığı gözlemlenirse periyodik olarak nemlendirin. Yiyecek ve suyu hayvanın kolayca erişebileceği şekilde düzenleyin.
- İn vivo çalışma tamamlandıktan sonra, fareleri uyuşturun, ötenazi yapın ve daha fazla histopatolojik analiz için (gerekirse) beyin dokusunu çıkarın.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Sonuçlar
tMCAo prosedürünün sonucunu değerlendirmek için farklı yaklaşımlar vardır. Burada in vivo nörogörüntüleme yöntemleri (MRI) ve davranışsal testler kullanılmaktadır.
Fareler beyinde iskemik lezyonlar geliştirir ve esas olarak striatum ve dorsolateral korteks gibi MCA ipsilateral tarafından oklüzyona sağlanan bölgeyi etkiler. Lezyonun yaygınlığını belirlemek için 2,3,5-trifeniltetrazolyum klorür (TTC) doku boyama, histolojik boyama (hematoksilen/eozin, tionin asetat) ve MRG gibi in v...
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Tartışma
İntraluminal tMCAo prosedürü, temel araştırmalarda reperfüzyonlu fokal beyin iskemisinin en sık kullanılan modelidir. Şu anda, genetiği değiştirilmiş suşların mevcudiyeti nedeniyle fareler tercih edilen hayvan modelidir. Bununla birlikte, genetiği değiştirilmiş farelerin ve genetik geçmişlerinin beyin vaskülarizasyonunu etkileyebileceğini kabul etmek önemlidir. Farklı arter bölgeleri arasında kollateral dolaşım ve anastomozların varlığı, deneysel prosedürlerin sonuçlarını önemli ölçüde etkileyebilir11
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Açıklamalar
Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmezler.
Teşekkürler
Çalışma, Ministerio de Ciencia e Innovación (MCIN)/Agencia Estatal de Investigación (AEI), Gobierno de España/10.13039/501100011033 ve "Avrupa Bölgesel Kalkınma Fonu (ERDF) tarafından finanse edilen PID2020-113202RB-I00 hibesi ile desteklenmiştir. Avrupa'yı yaratmanın bir yolu". NCC ve MAR, MCIN / AEI / 10.13039 / 501100011033 tarafından finanse edilen doktora öncesi burslara (sırasıyla PRE2021-099481 ve PRE2018-085737) sahipti. Teknik destekleri için Francisca Ruiz-Jaén ve Leonardo Márquez-Kisinousky'ye teşekkür ederiz. Institut d'Investigacions Biomèdiques August Pi i Sunyer'in (IDIBAPS) MRI görüntüleme tesisinin desteğini kabul ediyoruz. Generalitat de Catalunya'nın Centres de Recerca de Catalunya (CERCA) Programı IDIBAPS'ı desteklemektedir.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Malzemeler
| Ad | Şirket | Katalog numarası | Yorumlar |
|---|---|---|---|
| 6/0 sütür | Arago | Vasküler ligatürler | |
| 6/0 kavisli iğneli sütür | Arago | Deri sütürleri | |
| 9 mg/mL Saline | Fresenius Kabi | CN616003 EC | Hidrasyon için |
| Anestezi sistemi | SurgiVet | ||
| Künt ekartörler, 1 mm genişliğinde | Güzel Bilim Araçları | 18200-09 | |
| Buprenorfine | Buprex | İçin ağrı kesici | |
| Forseps uygulayan kelepçe | Güzel Bilim Araçları | S & T CAF4 | |
| Dumont mini forseps | Güzel Bilim Araçları | M3S 11200-10 | |
| Forseps | Güzel Bilim Araçları | 91106-12 | |
| Tutkal | Loctite | LDF probunu kafatasına yapıştırmak için | |
| Kavrama Gücü Ölçer | IITC Life Science Inc. | #2200 | |
| Isoflurane | B-Braun | CN571105.8 | |
| LDF Perimed | Perimed Periflux | System 5000 | |
| LDF Prob Tutucular | Perimed | PH 07-4 | |
| Tıbbi bant | |||
| MRI mıknatısı | Bruker BioSpin, Ettlingen, Almanya | BioSpec 70/30 yatay hayvan tarayıcı | |
| Sütür Kesici ile İğne Tutucu | Güzel Bilim Araçları | 12002-14 | |
| Naylon filament | Doccol | 701912PK5Re | |
| Isıtma yastığı | |||
| Sirgical makas | Güzel Bilim Araçları | 91401-12 | |
| Küçük gemi koterizatör kiti | Güzel Bilim Araçları | 18000-00 | |
| Stereomikroskop ve soğuk ışık | Leica | M60 | |
| Sütür bağlama forseps | Güzel Bilim Araçları | 18025-10 | |
| Termostat, rektal prob ve fare altlığı | Letica Science Instruments | LE 13206 | |
| Vannas yaylı makas (4 mm kesme kenarı) | Güzel Bilim Araçları | 15019-10 | |
| Vasküler kelepçeler | Güzel Bilim Araçları | 00396-01 |
Kaynaklar
- Siddiqi, A. Z., Wadhwa, A. Treatment of acute stroke: current practices and future horizons. Cardiovascular Revascularization Medicine. 49, 56-65 (2023).
- Tamura, A., Graham, D. I., McCulloch, J., Teasdale, G. M. Focal cerebral ischemia in the rat: 1. Description of technique and early neuropathological consequences following middle cerebral artery occlusion. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 1, 53-60 (1981).
- Koizumi, J., Nakazawa, T., Ooneda, G. Experimental studies of ischemic brain edema. A new experimental model of cerebral embolism in rats in which recirculation can be introduced in the ischemic area. Japanese Journal of Stroke. 8, 1-8 (1986).
- Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, R., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20 (1), 84-91 (1989).
- Hossmann, K. A. Cerebral ischemia: Models, methods, and outcomes. Neuropharmacology. 55, 257-270 (2008).
- Seto, A., et al. Induction of ischemic stroke in awake freely moving mice reveals that isoflurane anesthesia can mask the benefits of a neuroprotection therapy. Frontiers in Neuroenergetics. 6, 1(2014).
- Díaz-Marugan, L., et al. Poststroke lung infection by opportunistic commensal bacteria is not mediated by their expansion in the gut microbiota. Stroke. 54 (7), 1875-1887 (2023).
- Xie, L., Kang, H., Nedergaard, M. A novel model of transient occlusion of the middle cerebral artery in awake mice. Journal of Natural Sciences. 2 (2), e176(2016).
- Arbaizar-Rovirosa, M., et al. Aged lipid-laden microglia display impaired responses to stroke. EMBO Molecular Medicine. 15 (2), e17175(2023).
- Orsini, F., et al. Targeting mannose-binding lectin confers long-lasting protection with a surprisingly wide therapeutic window in cerebral ischemia. Circulation. 126 (12), 1484-1494 (2012).
- Majid, A., et al. Differences in vulnerability to permanent focal cerebral ischemia among 3 common mouse strains. Stroke. 31, 2707-2714 (2000).
- Rogers, D. C., Campbell, C. A., Stretton, J. L., Mackay, K. B. Correlation between motor impairment and infarct volume after permanent and transient middle cerebral artery occlusion in the rat. Stroke. 28, 2060-2065 (1997).
- Hedna, V. S., et al. Validity of Laser Doppler flowmetry in predicting outcome in murine intraluminal middle cerebral artery occlusion stroke. Journal of Vascular and Interventional Neurology. 8 (3), 74-82 (2015).
- Yin, L., et al. Laser speckle contrast imaging for blood flow monitoring in predicting outcomes after cerebral ischemia-reperfusion injury in mice. BMC Neuroscience. 23, 80(2022).
- Thakkar, P. C., et al. Therapeutic relevance of elevated blood pressure after ischemic stroke in the hypertensive rats. Hypertension. 75 (3), 740-747 (2020).
- Yu, X., Feng, Y., Liu, R., Chen, Q. Hypothermia protects mice against ischemic stroke by modulating macrophage polarization through upregulation of interferon regulatory factor-4. Journal of Inflammation Research. 14, 1271-1281 (2021).
- Denorme, F., Portier, I., Kosaka, Y., Campbell, R. A. Hyperglycemia exacerbates ischemic stroke outcome independent of platelet glucose uptake. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 19, 536-546 (2021).
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Yeniden basım ve izinler
