-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Fare T-hücrelerinin, T-hücre reseptörleri retroviral İletimi
Fare T-hücrelerinin, T-hücre reseptörleri retroviral İletimi
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
Retroviral Transduction of T-cell Receptors in Mouse T-cells

Fare T-hücrelerinin, T-hücre reseptörleri retroviral İletimi

Full Text
36,272 Views
10:14 min
October 22, 2010

DOI: 10.3791/2307-v

Shi Zhong1, Karolina Malecek1,2, Arianne Perez-Garcia1, Michelle Krogsgaard1

1NYU Cancer institute,New York University School of Medicine, 2Program in Structural Biology,New York University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for producing antigen-specific mouse T-cells through retroviral transduction. The method aims to express functional T-cell receptors on mouse T cells, facilitating immunological research and potential therapeutic applications.

Key Study Components

Area of Science

  • Immunology
  • Cell Biology
  • Gene Therapy

Background

  • Antigen-specific T-cells are crucial for effective immune responses.
  • Traditional methods, such as using transgenic mice, can be time-consuming.
  • Retroviral transduction offers a more efficient alternative for T-cell modification.
  • This technique can enhance adoptive T-cell transfer therapies for cancer treatment.

Purpose of Study

  • To develop a streamlined protocol for generating antigen-specific T-cells.
  • To evaluate the effectiveness of different T-cell receptors against specific antigens.
  • To facilitate research in immunological responses and therapies.

Methods Used

  • Transfection of retroviral packaging cells with TCR genes.
  • Isolation and purification of T cells from mouse spleens.
  • Infection of T cells with produced retrovirus.
  • Flow cytometry analysis to confirm TCR expression.

Main Results

  • Successful expression of functional antigen-specific TCRs on mouse T cells.
  • Demonstrated efficiency of the retroviral transduction method.
  • Provided insights into TCR performance against antigens.
  • Highlighted the potential for therapeutic applications in cancer treatment.

Conclusions

  • The protocol offers a rapid and effective method for T-cell modification.
  • It can significantly advance research in immunology and cancer therapy.
  • Future studies can build on this method to explore various TCRs.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this protocol?
The protocol is less time-consuming compared to traditional methods like using transgenic mice.
How are T cells activated before viral transduction?
T cells are activated using anti-CD3 and anti-CD28 antibodies.
What is the role of flow cytometry in this study?
Flow cytometry is used to analyze and confirm the expression of TCRs on T cells.
Can this method be applied to human T cells?
Yes, the technique can be adapted for in vitro modification of human T cells.
What are the implications of this research?
This research can enhance our understanding of T-cell responses and improve cancer therapies.
Who conducted this study?
The study was conducted by researchers at the NYU Cancer Institute.

Biz retroviral transdüksiyon kullanarak fare antijen spesifik T-hücrelerinin üretmek için bir protokol mevcut

Bu prosedürün amacı, fare T hücreleri üzerinde fonksiyonel antijene özgü T hücresi reseptörlerini eksprese etmektir. İlk olarak, retrovirüsü eksprese eden TCR'yi paketlemek için ilgilenilen TCR genini içeren plazmid ile retroviral üreten bir hücre hattını transfekte edin. Daha sonra, fare dalaklarından T hücrelerini izole edin ve saflaştırın, bu saflaştırılmış T hücrelerini ilk adımda üretilen retrovirüs ile enfekte edin.

Son olarak, kayda değer seviyelerde reseptör eksprese etmek ve elde etmek için dönüştürülmüş T hücrelerini genişletin. Sonuç olarak, akış sitometrisi yoluyla fare T hücreleri üzerinde fonksiyonel antijene özgü TCR'lerin ekspresyonunu gösteren sonuçlar elde edilebilir. Merhaba, benim adım Michelle Crow Guard.

NYU Tıp Fakültesi'ndeki NYU Kanser Enstitüsü'ndeyim. Bugün size birincil T hücresini nasıl transdüksiyon yapacağınızı göstereceğiz, bunu nasıl yapacağınızı gösterecek kişiler laboratuvarda doktora sonrası araştırmacı olan Shiong, laboratuvarda yüksek lisans öğrencisi olan Kaleena Melek ve laboratuvarda doktora sonrası araştırmacı olan Arian Perez Garcia olacak. Bu tekniğin transgenik fareler gibi mevcut yöntemlere göre en büyük avantajı, çok daha az zaman alıcı olmasıdır.

Bu yöntem, hangi TCR'nin antijenlere karşı daha iyi yanıt verebileceği gibi temel immünolojik soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu teknik, kanser hastalarının tedavisi için umut verici olduğu gösterilen ve şunlardan oluşur: in vitro T hücrelerinin in vitro modifikasyonu T hücresi reseptörü alfa ve beta zincirlerinin eşit ekspresyonunu sağlamak için. İlgilenilen geni, aynı promotörün kontrolü altında aynı retroviral vektöre alt klonlayın.

Kyogen Maxi hazırlık kitini kullanarak yüksek kaliteli plazma DNA'sı hazırlayın ve mikrolitre başına bir mikrogram stok yapın. Platin E retroviral paketleme hücreleri ile plakadan ortamı çıkarın ve plakayı bir XPBS ile bir kez yıkayın. Tripsin EDTA ekleyerek hücreleri yerinden çıkarın ve birkaç dakika 37 santigrat derecede inkübe edin.

Yerinden çıkan hücreleri DMEM ortamı ile nötralize edin ve bir şahin tüpüne aktarın. Daha sonra hücreleri beş dakika boyunca 1000 kez G'de santrifüjleyin. Supinatı aspire edin ve hücre peletini DMEM ortamında yeniden süspanse edin.

Hücre sayısını belirleyin ve hücreleri mililitrelik plaka başına 0.6 kez 10 ila altı kez seyreltin. 10 milimetre polilisin kaplı doku kültürü plakasında 10 mililitre hücre süspansiyonu ve gece boyunca %5 karbondioksit içinde 37 santigrat derecede bir hücre inkübatöründe büyür. Ertesi sabah, yaklaşık% 80 co akıcılığını doğrulamak için hücreleri ışık mikroskobu altında inceleyin.

Ortamı plakadan yavaşça çıkarın. Hücreleri bir XPBS ile bir kez yıkayın ve penisilin veya streptomisin içermeyen 10 mililitre önceden ısıtılmış taze DMEM ortamı ekleyin. Dudak ortalama transfeksiyon kompleksi için, iki karışım hazırlayın ve DNA'nın ME M1'ini ve lipektomi reaktifinin diğerini oda sıcaklığında beş dakika boyunca ayrı ayrı dengeleyin.

Sonra yavaşça karıştırın ve 20 dakika inkübe edin. Oda sıcaklığında, karışımı yavaşça platin E hücrelerine damlatın. Transfeksiyon karışımını eşit şekilde dağıtmak için plakayı hafifçe ileri geri sallayın.

Daha sonra hücreleri bir hücre inkübatöründe 37 santigrat derece ve% 5 karbondioksitte inkübe edin. Altı ila sekiz saat sonra, viral üretim için ortamı 10 mililitre taze DMEM ortamı ile değiştirin. Bir fare dalağını kesin ve RPMI ortamına aktarın.

Dalağı bir hücre süzgecine yerleştirin. Dalağı bir şırınga pistonu ile beş santimetrelik bir doku kültürü plakasına ezin. Hücreleri santrifüjlemek için hücre süzgecinden steril PBS ile durulayın, santrifüjü beş dakika boyunca 1000 kez G'de.

Malzemeyi atın. Resus, hücre peletini bir CK parçalama tamponunda askıya alarak devam edin. Dalak başına iki mililitre ekleyerek, iki dakika inkübe edin.

Oda sıcaklığında. 20 mililitreye kadar RPMI ortamı ekleyin ve beş dakika boyunca 1000 kez G'de santrifüjleyin. Son olarak, hücre peletini steril PBS'de yeniden süspanse edin.

Hücre sayısını belirleyin ve dört santigrat derecede beş dakika boyunca 1000 kez G'de santrifüjleyin. Viral transdüksiyondan önce fare T hücrelerini aktive etmek için, aktive edici antikorlar, yani anti CD üç epsilon ve anti CD 28 ile kap plakaları. Steril PBS'de mililitre anti CD başına bir mikrogram, üç epsilon ve mililitre anti CD 28 başına iki mikrogramlık bir antikor karışımı hazırlayın, 24 kuyulu doku kültürü plakasının her bir oyuğuna 250 mikrolitre antikor karışımı dağıtın ve 37 santigrat derecede iki saat inkübe edin.

Dalak hücrelerini ürün kılavuzuna göre manyetik olarak etiketleyin. Manyetik alana bir LS sütunu yerleştirin. Sütuna etiketli hücre askıya alma işlemi uygulayın.

Zenginleştirilmiş fare CD'si sekiz artı T hücresinden akışı toplayın. Kolonu üç mililitre tamponla üç kez yıkayın ve önceki üfleme ile birleştirin. Hücreleri anti CD üç epsilon ve anti CD sekiz alfa antikoru ve analiz edilmiş akış sitometrisi ile boyayın.

Daha sonra, hücreleri beş dakika boyunca 1000 kez G'de santrifüjleyin ve rekombinant insan IL iki ile RPMI ortamında hücre pellesini mililitrede 1 milyon hücreye yeniden süspanse edin. Antikor çözeltisini aktivasyon plakasından çıkarın. Her kuyuyu steril PBS ile durulayın.

Her oyuğa bir mililitre hücre süspansiyonu ekleyin ve plakayı 37 santigrat dereceye yerleştirin. Bir hücre inkübatöründe% 5 karbondioksit. İki günlük virüs üretiminden sonra, platin ESE hücre plakasındaki ortam sarı renkte olmalıdır.

Hücre kalıntılarını gidermek için viral supinatı 15 mililitrelik konik bir tüpe aktarın. Virüs S süpernatantını beş dakika boyunca 1000 kez G'de santrifüjleyin. Virüs supinatını dikkatlice yeni bir tüpe aktarın.

Tüpün dibinde bir miktar sıvı bırakın ve hücre kalıntılarını rahatsız etmeyin. Aktive edilmiş T hücrelerini plakadan 50 milimetrelik konik bir tüpe toplayın. Hücre numarasını belirleyin.

Bazı hücreleri, beş dakika boyunca 1000 kez G'de negatif kontrol santrifüjü olarak kullanılmak üzere ayrı bir tüpte saklayın ve sırtüstü natanı atın. Daha sonra hücre peletini virüs sırtında yeniden süspanse edin. Mililitre başına 10 ila altı hücrede, mililitre başına 20 nanogram rekombinant insan, interlökin iki ve mililitre protein sülfat başına 10 mikrogram natant.

Kontrol tüpü için 24 oyuklu plakanın her bir oyuğuna bir mililitre hücre süspansiyonu ekleyin. Resus. Hücreleri, aynı miktarda rekombinant insan, interlökin iki ve protein sülfat ile aynı hücre yoğunluğunda RPMI ortamında askıya alın. Hücreleri aynı plakaya ekleyin.

Plakayı plastik film santrifüjü ile 90 dakika boyunca 2000 kez G'de 32 santigrat derecede ara vermeden sarın. Santrifüjlemeden sonra plastik filmi çıkarın. Her birine iki adet mililitre rekombinant insan interlökin başına 20 nanogram içeren bir mililitre taze RPMI ortamı ekleyin, plakayı tekrar inkübatöre koyun.

Aktarılan T hücrelerinin günlük olarak incelenmesi önemlidir. Gerektiğinde hücreleri bir ila üç oranında bölün. Hücrelerin aşırı büyümesine izin vermeyin veya ortamın altıncı veya yedinci günde sararmasına izin vermeyin.

T hücresi yüzeyindeki TCR ekspresyonunu değerlendirmek için hücreleri TCR'ye özgü antikor ve MHC tetramer ile boyayın. UNSD T hücrelerini kontrol olarak kullanın. Bu transdüksiyonlu T hücreleri artık daha sonraki sonraki uygulamalar için hazırdır.

Viral transdüksiyondan önce. T hücreleri üzerindeki TCR'lerin ekspresyon seviyesini değerlendirmek için ticari manyetik boncuklar kullanılarak yüksek saflıkta T hücresi alt kümeleri elde etmek avantajlıdır. TCR alfa veya beta zincirlerine özgü antikor kullanılabilir.

Tipik olarak, hücrelerin %30 ila %80'i, TCR genlerine ve virüs titrelerine bağlı olarak dönüştürülmüş TCR'yi eksprese edebilir. TCR'ye özgü MHC Tetramer, TCR'lerin fonksiyonel ekspresyonunu daha fazla doğrulamak için de kullanılabilir. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik uygun şekilde yapılırsa bir hafta içinde yapılabilir.

Bu prosedürü denerken, bu prosedürü takiben hücreleri sağlıklı durumda tutmayı unutmamak önemlidir. Sitotoksisite asidi veya sitokin salınım testleri gibi diğer yöntemler, transdücenin özgüllüğü ve duyarlılığı gibi ek soruları yanıtlamak için gerçekleştirilebilir. TCR'ler.

Bu videoyu izledikten sonra, en sevdiğiniz TCR'yi birincil T hücrelerine dönüştürme konusunda uzman olmalısınız. Laboratuvarda görüşmek üzere.

Explore More Videos

İmmünoloji Sayı 44 T-hücre T-hücre reseptör Retrovirus Fare İletimi dalak

Related Videos

293T hücreleri geçici Transfeksiyon Çoğaltma-Arızalı Retrovirus Üretimi

09:40

293T hücreleri geçici Transfeksiyon Çoğaltma-Arızalı Retrovirus Üretimi

Related Videos

20.2K Views

Karşı Önceden tanımlanmış T Hücre Reseptör özgüllükleri Transnuclear Fare Toxoplasma gondii SCNT ile Elde Edilen

13:36

Karşı Önceden tanımlanmış T Hücre Reseptör özgüllükleri Transnuclear Fare Toxoplasma gondii SCNT ile Elde Edilen

Related Videos

14.7K Views

Naif CD4 adenoviral İletimi Treg Farklılaşma Eğitim Hücreler T

15:33

Naif CD4 adenoviral İletimi Treg Farklılaşma Eğitim Hücreler T

Related Videos

16.5K Views

Kemik iliği projenitör hücrelerinin retroviral İletimi T-hücre reseptör Retrogenic fareler üretmek için

09:08

Kemik iliği projenitör hücrelerinin retroviral İletimi T-hücre reseptör Retrogenic fareler üretmek için

Related Videos

10.1K Views

Eğitim için bir genetik Yaklaşım olarak yardımcı T hücrelerinin retroviral İletimi Mekanizmaları kendi Farklılaşma ve Kontrol Fonksiyonunun

11:50

Eğitim için bir genetik Yaklaşım olarak yardımcı T hücrelerinin retroviral İletimi Mekanizmaları kendi Farklılaşma ve Kontrol Fonksiyonunun

Related Videos

11.7K Views

Tek hücre TCR yalıtım ve üretme-in Vitro için Retroviral Vektörler ve In Vivo ifade insan TCRs aerodinamik

11:21

Tek hücre TCR yalıtım ve üretme-in Vitro için Retroviral Vektörler ve In Vivo ifade insan TCRs aerodinamik

Related Videos

10.1K Views

Merkezi Bellek Fenotip Bakımı ile Dokuz Günde Primer T Hücrelerinin Transdüksiyonu ve Genişlemesi

08:49

Merkezi Bellek Fenotip Bakımı ile Dokuz Günde Primer T Hücrelerinin Transdüksiyonu ve Genişlemesi

Related Videos

11.7K Views

Murine B-1a Hücrelerinde CXCR4'ün Retroviral Aşırı Ekspresyonu ve Hedeflenen B-1a Hücre Nakliiçin Kemik İliği ve IgM Üretimine Geçişinde Benimsenmiş Transfer

08:22

Murine B-1a Hücrelerinde CXCR4'ün Retroviral Aşırı Ekspresyonu ve Hedeflenen B-1a Hücre Nakliiçin Kemik İliği ve IgM Üretimine Geçişinde Benimsenmiş Transfer

Related Videos

5.6K Views

T Hücreli Lösemide Onkogenleri İncelemek için Delta Benzeri 4 Eksprese Eden Stromal Hücreler Üzerinde Murin Timositlerinin Ko-Kültürü ve Transdüksiyonu

09:43

T Hücreli Lösemide Onkogenleri İncelemek için Delta Benzeri 4 Eksprese Eden Stromal Hücreler Üzerinde Murin Timositlerinin Ko-Kültürü ve Transdüksiyonu

Related Videos

2.7K Views

Akut LCMV ile Enfekte Farelerde Virüse Özgü Foliküler Yardımcı CD4+ T Hücresinin Erken Farklılaşmasına Erişim

05:03

Akut LCMV ile Enfekte Farelerde Virüse Özgü Foliküler Yardımcı CD4+ T Hücresinin Erken Farklılaşmasına Erişim

Related Videos

1.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code