-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
CRISPR / Cas9 üzerinden Memeli Hücre Hatlarında Genomik Delesyonlar Üretimi
CRISPR / Cas9 üzerinden Memeli Hücre Hatlarında Genomik Delesyonlar Üretimi
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Generation of Genomic Deletions in Mammalian Cell Lines via CRISPR/Cas9

CRISPR / Cas9 üzerinden Memeli Hücre Hatlarında Genomik Delesyonlar Üretimi

Full Text
96,721 Views
09:40 min
January 3, 2015

DOI: 10.3791/52118-v

Daniel E. Bauer*1,2,3, Matthew C. Canver*1, Stuart H. Orkin1,2,3,4

1Harvard Medical School, 2Division of Hematology/Oncology,Boston Children's Hospital, 3Department of Pediatric Oncology,Dana-Farber Cancer Institute, 4Howard Hughes Medical Institute

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

CRISPR/Cas9, genlerin ve genetik elementlerin bozulmasını sağlayan sağlam bir sistemdir. Burada, CRISPR / Cas9 kullanarak memeli hücre hatlarında genomik delesyonların verimli bir şekilde oluşturulması için bir protokol açıklıyoruz.

Bu prosedürün genel amacı, genomik delesyonlar oluşturmak için CRISPR Cas dokuz nükleaz sistemini kullanmaktır. İlk elektro saflaştırma, iki CRISPR plazmidi ve bir GFP raportör plazmidi aynı anda hücrelere yerleştirir. Daha sonra floresanla aktive edilmiş hücre sıralamasını kullanarak, GFP eksprese eden hücrelerin ilk %3'ünü izole edin.

Daha sonra, sıralanmış hücreleri seyreltmeyi sınırlayarak plakalayın ve geleneksel PCR kullanarak biyo alelik delesyon klonlarını tarayın. Sonuç olarak, CRISPR Cas dokuz, fonksiyon kaybı delesyon alelleri üreterek genleri ve genetik elementleri incelemek için kullanılabilir Tek bir kılavuz RNA tarafından üretilen çerçeve kayması mutasyonlarıyla karşılaştırıldığında, CRISPR Cas dokuz nükleaz sistemi tarafından üretilen büyük delesyonlar, fonksiyon kaybı mutasyonlarının sağlanmasına yardımcı olabilir. Bu yaklaşım aynı zamanda geleneksel bir PCR yoluyla kolay ve ucuz taramaya izin verir.

Bu yöntem için ilk olarak, tek bir kılavuz RNA tarafından oluşturulan küçük indellerin taranmasının teknik olarak zorlu, zahmetli ve pahalı olduğunu bulduğumuzda aklımıza geldi. Delesyon alelleri de kaplama olmayan genetik elementlerin incelenmesi için özellikle bilgilendiricidir. Her CRISPR çifti peleti için, iki kez 10 ila altı hücre süspansiyon halinde büyütülür. Hücreleri 100 mikrolitre elektroporasyon çözeltisinde yeniden süspanse edin ve ardından bir elektroporasyon QAT'a aktarın.

Beş mikrogram CRISPR Cas dokuz, yapı SG RNAA, beş mikrogram CRISPR Cas dokuz ekleyin. GFP ekspresyonunun SG, a B ve 0.5 Mikrogramını oluşturun, karıştırmak için pipeti birkaç kez hafifçe yukarı ve aşağı yapın. Bir elektroporasyon sistemi kullanarak kabarcık üretmekten kaçının.

Hücreleri steril bir transfer pipeti ile iki milimetrelik bir damarda beş milisaniye boyunca 250 volt ile elektro saflaştırın, çözeltiyi hemen bir mililitre ön ısıtma kültür ortamına aktarın. Hücreleri 24 ila 72 saat boyunca 30 santigrat derecede inkübe edin. Hücreleri steril 50 mikronluk bir filtreden bir faks tüpüne geçirin.

Ardından, yüksek düzeyde plazmit alan hücreleri zenginleştirmek için GFP pozitif hücrelerin ilk %3'ünü faksla sıralayın. İlgilenilen hücreler için sınırlayıcı seyreltme koşullarını optimize ettikten sonra, plaka, hücreleri 96 oyuklu bir plakaya ve oyuk başına 100 mikrolitre hücre kültürü ortamı ile plaka başına 30 hücrelik bir seyreltmeye ayırdı. Kalan sıralanmış yığın hücreler için, gelecekteki kaplama için hücrelerin yarısını dondurur.

Diğer yarısını tarama ve astar doğrulaması için plakalayın. Bu toplu hücreleri üç ila yedi gün boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin. Klonların, hücre hattının iki katına çıkma süresine bağlı olarak yedi ila 14 gün boyunca 37 santigrat derecede kuluçkaya yatırılmasına izin verin.

Genomik DNA Resus'u izole etmek, ebeveyn ve toplu hücre peletlerini 50 mikrolitre DNA ekstraksiyon çözeltisinde askıya almak için kullanılır. Genomik DNA'yı çıkarmak için numuneyi bir termodöngüleyicide çalıştırın. Ardından DNA konsantrasyonunu ölçün.

Şimdi 10 mikrolitre iki XPCR karışımını birleştirerek 20 mikrolitrelik bir PCR reaksiyonu oluşturun. 0.5 mikrolitre 10 mikromolar ileri astar 0.5 mikrolitre 10 mikromolar ters astar, 50 ila 100 nanogram genomik DNA ve 20 mikrolitreye kadar su. Delesyon olmayan bant ve delesyon bandı için ayrı reaksiyonlarda PCR gerçekleştirin.

Daha sonra, numuneleri bir termodöngüleyiciye yerleştirin ve ekteki yazılı protokolde ayrıntılı olarak açıklandığı gibi 60 santigrat derece A diz çökme sıcaklığına sahip 35 döngü kullanarak çalıştırın. Numuneleri, bir XTAE tamponu kullanarak santimetre başına 2 voltta% 10'lik bir aros jel üzerinde çözün. Ardından, delesyon olmayan ve delesyon bantlarının varlığı veya yokluğu için numuneleri inceleyin.

Delesyon ve delesyon olmayan PCR primer çiftlerini tek bir reaksiyonda çoğullamak için bir strateji düşünün. Alternatif olarak, silme ve silme olmayan PCR reaksiyonlarını ayrı ayrı çalıştırabilirsiniz. Süspansiyon hücreleri için, tüm klonları, kuyucuk başına 50 mikrolitre hücre kültürü ortamı içeren tek bir 96 oyuklu plakaya aktarın.

Daha sonra her oyuktan 50 mikrolitreyi 96 oyuklu bir PCR plakasına aktarın. Alternatif olarak, yapışma hücreleri için, tripsin, gözler, tek bir 96 oyuklu plakaya aktarılmadan önce klonlar. Daha sonra, her bir oyuktan 50 mikrolitreyi 96 oyuklu bir PCR plakasına aktarın, PCR plakasını beş dakika boyunca 400 kez G'de santrifüjleyin ve PCR plakasını bir lavabonun üzerine iterek süpernatanı çıkarın.

Şimdi, oyuk başına 50 mikrolitre DNA ekstraksiyon solüsyonu ekleyin ve genomik DNA ekstraksiyonundan sonra hücre peletlerini yeniden askıya alın, klonlardan delesyon olmayan ve delesyon bantlarını tespit etmek için PCR reaksiyonlarını çalıştırın. PCR ürünlerini santimetre başına 2 voltta% 10 aros jel üzerinde çözün. Bir XTAE arabelleği kullanarak.

İstenen silme ile klonları tanımlayın ve kültürleri daha büyük bir plaka veya şişede çoğaltın. Gösterilen örnekte, soldan sağa ebeveyn hücrelerini, üç delesyon olmayan klonu, üç mono alelik delesyon klonunu ve üç bi alelik delesyon klonunu gözlemleyin. Birden fazla örtüşmeyen SG r NNA çiftinin kullanılması, hedef dışı etkilerin kontrol edilmesine yardımcı olabilir.

Her çift, benzersiz bir silme işleminin üretilmesine yol açacaktır. Gene göre çeşitli konumlardaki SG çiftlerini hedefleyen kesme noktası, alellerden biri veya her ikisi silinmemiş olsa bile veya belirli bir izoformun bozulmasına izin vermek için çerçeve kayması indelleri oluşturmak için tüm gen gövdesini silmek için kullanılabilir. Bu deneyde.

Tüm genin silinmesi ile ilgili olarak, PIM bir iki SG RNA çifti, PX 3 3 0 ekspresyon vektörüne klonlanmış olarak tasarlandı ve elektroporasyon ile MEL hücrelerine verildi. GFP raportörü ile birlikte, GFP pozitif hücrelerin ilk %3'ü, delesyonun sınırlanmasında klonal olarak kaplandı ve bu PIM bir delesyon için delesyon olmayan mono alelik ve biyo alelik delesyon klonları için PCR ile tarandı. Biyo alelik delesyon klonları, genişleme için beş gün izin verildikten sonra daha fazla çoğalma için seçildi.

Her klon, BIC delesyonunu ve delesyonunu doğrulamak için genomik DNA'nın PCR'si ile yeniden test edildi. Amplikonlar, kesin silmeyi tanımlamak için Sanger dizilimine tabi tutuldu. RNA, BIC delesyon klonlarından izole edildi ve PIM bir ekspresyonunun kaybını doğrulamak için R-T-Q-P-C-R ile analiz edildi.

Bir kez ustalaştıktan sonra, bu teknik, hayati delesyon klonlarını tanımlamak için birkaç hafta içinde tamamlanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, CRISPR plazmitlerini inceleyerek, GFP parlak hücrelerini sıralayarak ve BioE delesyon klonları için geleneksel PCR ile bireysel klonları tarayarak genomik delesyonlar oluşturmak için CRISPR CAS dokuz nükleaz sisteminin nasıl kullanılacağını iyi anlamış olmalısınız.

Explore More Videos

Moleküler Biyoloji Sayı 83 CRISPR Cas9 Genom Mühendisliği Gen Nakavt Genomik Silme Gen Yönetmeliği

Related Videos

Yaratma CRISPR / Cas9 aracılığı monoallelik Delesyonlar Fare Embriyonik Kök Hücreleri Artırıcı Fonksiyonu Eğitim için

11:31

Yaratma CRISPR / Cas9 aracılığı monoallelik Delesyonlar Fare Embriyonik Kök Hücreleri Artırıcı Fonksiyonu Eğitim için

Related Videos

14.8K Views

CRISPR genotipine bir Floresan PCR kılcal jel elektroforezi Tekniği / yüksek verimli bir Format Nakavt Mutants Cas9 aracılı

08:25

CRISPR genotipine bir Floresan PCR kılcal jel elektroforezi Tekniği / yüksek verimli bir Format Nakavt Mutants Cas9 aracılı

Related Videos

14.5K Views

Memeli Hücrelerinde CRISPR / Cas9 aracılı Gen Knockout'larının Seçime Bağlı ve Bağımsız Üretimi

11:35

Memeli Hücrelerinde CRISPR / Cas9 aracılı Gen Knockout'larının Seçime Bağlı ve Bağımsız Üretimi

Related Videos

13.4K Views

Memeli hücre CRISPR-Cas kullanarak satırları genom düzenleme

07:56

Memeli hücre CRISPR-Cas kullanarak satırları genom düzenleme

Related Videos

23.4K Views

Memeli Hücrelerinde Havuzlu CRISPR Tabanlı Genetik Ekranlar

09:05

Memeli Hücrelerinde Havuzlu CRISPR Tabanlı Genetik Ekranlar

Related Videos

23.4K Views

İnsan Pluripotent Kök Hücrelerinde CRISPR-CAS9 Kullanılarak Tanımlanmış Genomik Modifikasyonların Üretimi

09:04

İnsan Pluripotent Kök Hücrelerinde CRISPR-CAS9 Kullanılarak Tanımlanmış Genomik Modifikasyonların Üretimi

Related Videos

8.9K Views

MicroRNA Küme Ağ Analizi için CRISPR Gen Düzenleme Aracı

10:40

MicroRNA Küme Ağ Analizi için CRISPR Gen Düzenleme Aracı

Related Videos

2.9K Views

CRISPR/Cas9 Sistemini Kullanarak Sentromerle İlişkili Protein-E CENP-E-/- Nakavt Hücre Hatlarının Üretilmesi

11:49

CRISPR/Cas9 Sistemini Kullanarak Sentromerle İlişkili Protein-E CENP-E-/- Nakavt Hücre Hatlarının Üretilmesi

Related Videos

1.3K Views

CRISPR-Cas1 Sistemini Kullanarak Bir RIP937 Nakavt U9 Hücre Hattının Oluşturulması

08:15

CRISPR-Cas1 Sistemini Kullanarak Bir RIP937 Nakavt U9 Hücre Hattının Oluşturulması

Related Videos

990 Views

Besleyicisiz Koşullar Altında Kültürlenen İnsan Pluripotent Kök Hücrelerinde CRISPR-Cas9 Aracılı Gen Delesyonuna

04:21

Besleyicisiz Koşullar Altında Kültürlenen İnsan Pluripotent Kök Hücrelerinde CRISPR-Cas9 Aracılı Gen Delesyonuna

Related Videos

1.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code