-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Yalıtım ve dinamik bir teşvik etmek kemirgen Microglia kültürünü Morfoloji Serum-Alerjik orta Ram...
Yalıtım ve dinamik bir teşvik etmek kemirgen Microglia kültürünü Morfoloji Serum-Alerjik orta Ram...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Isolation and Culture of Rodent Microglia to Promote a Dynamic Ramified Morphology in Serum-free Medium

Yalıtım ve dinamik bir teşvik etmek kemirgen Microglia kültürünü Morfoloji Serum-Alerjik orta Ramified

Full Text
16,939 Views
12:00 min
March 9, 2018

DOI: 10.3791/57122-v

Hannah Y. Collins1, Christopher J. Bohlen1

1Department of Neurobiology,Stanford University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for isolating and culturing microglia from developing or adult rodents. The method allows for the maintenance of highly pure microglial cultures without serum exposure, which supports investigations into microglial morphology and their interactions with other CNS cell types.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cell Culture
  • Microglial Function

Background

  • The investigation of microglial function has been limited by a lack of effective culture models.
  • Mature in vivo microglia exhibit properties that are challenging to replicate in vitro.
  • Understanding microglial interactions is essential for insight into CNS functioning.
  • This protocol aims to overcome limitations by providing a defined-medium culture method.

Purpose of Study

  • To create a reliable method for isolating microglia.
  • To maintain the viability and functionality of cultured microglia in a defined medium.
  • To provide a foundation for studying microglial roles in neuroscience.

Methods Used

  • Cell culture protocol involving isolation and culture of microglia from rodent brains.
  • Utilized developing or adult rodents as biological models without serum exposure in culture.
  • The procedure includes careful brain removal, tissue dissociation, and cell isolation techniques.
  • Involves specific steps to preserve microglial viability during homogenization and filtration.
  • Adherence to panning dishes and careful trypsinization for subsequent cell recovery.

Main Results

  • Successfully isolated and cultured highly pure microglia from rodent tissue.
  • Maintained cellular morphology consistent with mature microglia.
  • Established methodology enables further study of microglial interactions and activation states.
  • Highlighted the protocol's potential to clarify microglial roles in health and disease.

Conclusions

  • This study demonstrates a novel approach for microglial isolation that enhances the understanding of their function.
  • The method's emphasis on serum-free culture supports the investigation of microglial biology more effectively.
  • Provides implications for future research in neuronal mechanisms and plasticity in the CNS.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using this isolation method?
The method allows for the generation of highly pure microglial cultures that can be maintained in defined medium without serum, enhancing the study of microglia.
How are the microglia prepared for culture?
Microglia are isolated from brains through careful dissection, tissue homogenization, and a series of centrifugations to remove debris.
What types of data can be obtained from these cultured microglia?
Data can include insights into microglial morphology, interactions with other CNS cells, and potential functional assays relevant to neuroinflammation.
Can this method be adapted for different ages of rodents?
Yes, the protocol is designed for use with developing or adult rodents, making it versatile for various research applications.
What are key considerations when implementing this protocol?
Attention to detail during tissue dissociation and bacterial contamination prevention are critical to ensure cell viability and culture success.

Ayrıntılı olarak mikroglial işlevini anlamak için çaba olgun vivo içinde microglia özelliklerini özetlemek mikroglial kültür modellerin eksikliği tarafından engel. Bu iletişim kuralı sağlam çok ramified olgun sıçan microglia tanımlanan-orta koşullar altında yaşama korumak için tasarlanmış bir yalıtım ve kültür yaklaşım anlatılmaktadır.

Bu hücre kültürü protokolünün genel amacı, seruma maruz kalmadan korunabilen, gelişmekte olan veya yetişkin kemirgenlerden oldukça saf mikroglia kültürleri üretmektir. Bu prosedür, mikroglia morfolojisi, fibröz ketozis ve mikroglia'nın diğer CNS hücre tipleri ile etkileşimi ile ilgili sinirbilimdeki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu protokolün ana avantajı, mikroglianın her yaştaki kemirgen dokusundan hızlı bir şekilde izole edilebilmesi ve seruma maruz kalmadan kültürlenebilmesidir.

Beyni çıkarmak için, beyne zarar vermemeye dikkat ederek, oksipital kondili bir hayvanın omuriliğinden her iki taraftan diseksiyon makasıyla kesin. Daha sonra, kafatasının üst kısmı boyunca cildi kesin ve parietal ve frontal kemik boyunca burun kemiğine doğru bir tarafı kesin. Kafatasının üst kısmını forseps ile dikkatlice geri çekin, beyni hızlı bir şekilde çıkarın ve buz üzerinde önceden soğutulmuş DPBS'ye yerleştirin.

Kalan tüm hayvanlar için prosedürü tekrarlayın. Beyinler soğuk DPBS'de toplandıktan sonra, her bir beyni soğuk bir neşter bıçağıyla buz üzerinde bir petri kabında bir küp milimetrelik parçalar halinde doğrayın ve beş ila yedi mililitre buz gibi soğuk douncing tamponu ile buz gibi soğuk bir dounce homojenizatöre aktarın. Ardından, dokuyu 10 ila 20 yumuşak ve eksik vuruşla ayırmak için gevşek oturan bir dounce homojenizatör kullanın.

Homojenizatörün altındaki dokuyu doğrudan ezmemeye dikkat edin. Bunun yerine, dokuyu pistonun kenarları ile homojenizatör arasındaki boşluktan itin. Mikroglia canlılığını korumak için dokuyu birden fazla douncing turu ile yavaşça homojenize etmek önemlidir.

Daha sonra, hava kabarcıklarının girmesini önlemek için pistonu dikkatlice çıkarın. Kötü ayrışmış doku parçalarının homojenizatörün dibine çökmesine izin verin ve süpernatanı yeni, soğutulmuş, 50 mililitrelik konik bir tüpe aktarın. Daha sonra, çıkarılan hacmi yeni douncing tamponu ile değiştirin ve ayrışma prosedürünü toplam üç ila dört tur boyunca veya tüm doku ayrışana kadar tekrarlayın.

Bu prosedürde, hücre süspansiyonunu içeren 50 mililitrelik konik tüpe buz gibi soğuk douncing tamponu ekleyin ve toplam hacmi 33,5 mililitre olarak ayarlayın. Daha sonra, hücre süspansiyonuna 10 mililitre MSB ekleyin ve tüpü birkaç kez ters çevirerek iyice karıştırın. Bu, 43.5 mililitrelik bir hacimde% 23'lük bir nihai MSB konsantrasyonu ile sonuçlanacaktır.

Bundan sonra, hücreleri yavaş frenleme ile 4 santigrat derecede 500 x g'de 15 dakika santrifüjleyin. Ardından, miyelin ve döküntülerin üst tabakasını ve süpernatanı bir pipetle çıkarın. Mümkün olduğunca fazlasının çıkarıldığından emin olmak için üst tabakayı çıkarırken dikkatli olun.

Bunu takiben, hücre peletini 12 mililitre kaydırma tamponunda yeniden süspanse edin. Kalan hücre kümelerini parçalamak için hücre süspansiyonunu nazikçe ezin. Bu adımda, büyük kalıntıları veya hücre kümelerini çıkarmak için hücre süspansiyonunu 70 mikrometrelik bir hücre süzgecinden geçirin.

OX42 kaplı kaydırma kabını DPBS ile üç kez durulayın. Yıkamalar arasında plakanın tamamen kurumasına izin vermeyin. Son DPBS yıkamasını dökün ve filtrelenmiş hücre süspansiyonunu kaydırma kabına uygulayın.

Hücreleri dağıtmak için plakayı hafifçe döndürün. Ardından, hücrelerin yapışmasını sağlamak için plakayı oda sıcaklığında düz bir yüzeyde 20 dakika inkübe edin. 20 dakikadan daha uzun süre kuluçkaya yatırmayın, aksi takdirde hücrelerin tabaktan kurtarılması çok zorlaşır.

Daha sonra, yapışmayan hücreleri çıkarmak için kaydırma kabını DPBS ile 10 kez durulayın. Mikroglia plakaya sıkıca tutturulacaktır, bu nedenle diğer yapışmayan hücrelerin çıkarılmasını sağlamak için plakayı her durulamada döndürün. Son DPBS yıkamasını dökün ve 15 mililitre DPBS ve 200 mikrolitre tripsin ile değiştirin.

Hücreleri denemek için, tabağı 37 santigrat derecede 10 dakikaya eşit veya daha az bir süre inkübe edin. 10 dakikalık tripsinizasyondan sonra, mikroglia hala plakaya yapışacaktır. Karışımı dökün ve tripsini çıkarmak için plakayı DPBS ile iki kez hafifçe yıkayın.

Ardından, 12 mililitre buz gibi soğuk MGM ile değiştirin. Daha sonra, hücre ve substrat etkileşimini zayıflatmaya yardımcı olmak için kaydırma kabını iki dakika boyunca buzun üzerine yerleştirin ve kaydırma kabının alanlarının kurumasını önlemek için kabın düz olduğundan emin olun. Bundan sonra, kaydırma kabından hücreleri kurtarmak için 10 mililitrelik bir pipet ve pipet kontrol cihazı ile yüksek hızda kuvvetlice pipetleyin.

Tüm hücreleri denemek ve çıkarmak için pipetten gelen sıvı akışıyla 16'ya 16'lık bir ızgara çizin. Genel hücre geri kazanımı ile kültürünüzün sağlığı arasında bir denge bulmak önemlidir. Hücre süpernatanının kaydırma kabına karşı tekrar tekrar pipetlenmesi, kültürünüzün canlılığının azalmasına neden olacaktır.

Plakadan ayrıldıklarından emin olmak için hücreleri 20x büyütmede mikroskop altında kontrol edin. Tabağın üst kısmında hücrelerin sıkıştığı noktaları işaretleyin ve bu alanlarda pipetlemeyi tekrarlayın. Hücre süspansiyonunu toplayın ve her 15 mililitrelik konik tüpe üç ila dört mililitre süpernatan tahsis edin.

Yavaş frenleme ile dört santigrat derecede 500 x g'de 15 dakika döndürün. 15 dakika sonra, süpernatanı aspire edin ve hücre peleti ile 0,5 mililitre MGM bırakın. Ardından, kalan MGM'deki her peleti yeniden süspanse edin ve hücreleri tüm tüplerden çekin.

Bunu takiben, hücreleri bir hemositometre ile sayın. Şimdi, 15 mikrolitre kollajen IV kaplamayı doğrudan 24 kuyulu anyonik kaplı bir doku kültürü plakasının ortasına yerleştirin ve 37 santigrat derecede 15 dakika inkübe edin. Hücreleri bir hemositometre ile saydıktan sonra, MGM'de mililitrede beşe 2.3 x 10'a seyreltin.

Kollajen IV noktasını aspire edin ve hemen bu noktaya 15 mikrolitre hücre süspansiyonu uygulayın, böylece nokta başına üç hücreye 3.5 x 10 verin. Daha sonra, hücrelerin yapışmasını sağlamak için 37 santigrat derecede beş ila on dakika inkübe edin. Ardından, kuyuya yavaşça 500 mikrolitre CO2 dengelenmiş TIC ekleyin.

Kapak kaymaları üzerine kaplama yapılıyorsa, önce steril cam kapak fişlerini mililitre PDL başına 10 mikrogram ile oda sıcaklığında bir saat su ile kaplayın. Daha sonra üç kez su ile yıkayın ve kapak fişleri üzerine nokta kaplama işlemine geçmeden önce UV ışığı altında bir kapüşonda kurumaya bırakın. Yüksek saflıkta mikroglia'nın başarılı bir şekilde izole edilmesini ve kültürünü göstermek için, P21 sıçanlarından mikroglia'yı izole ettik ve bu hücreleri sekiz gün boyunca% 10 FCS ile desteklenmiş TIC veya TIC'de kültürledik.

Hücreler daha sonra mikroglial belirteçler ve proliferasyon belirteçleri ile sabitlendi ve boyandı. TIC'de kültürlenen hücreler, dallanmış bir morfoloji, düşük proliferasyon seviyeleri ve mikroglia belirteçlerinin ekspresyonu gösterir. Karşılaştırıldığında,% 10 FCS ile takviye edilmiş TIC'de kültürlenen hücreler ayrıca mikroglial belirteçler için boyandı, ancak aktive edilmiş mikroglialarda sıklıkla görülen özellikler olan yüksek düzeyde proliferasyon ve amip morfolojisi gösterir.

Hücre belirteçleri için boyamaya ek olarak, yeni izole edilmiş hücreler üzerindeki RNA-Seq, hücrelerin RNA profilini değerlendirmek için güçlü ve hassas bir araç sağlayabilir ve kültürlerin başlangıç saflığını bilgilendirmeye yardımcı olabilir. CD11b mikropanlama tipik olarak, CD11b pozitif mikrogliaya ek olarak, CD11b pozitif nötrofillerin küçük bir yüzdesi ve monosit taşınması ile sonuçlanır. Bu hücreler birkaç gün sonra TIC'de ölecektir, ancak daha önceki zaman noktalarının analizini zorlaştırabilir.

İşte TIC'de 14 DIV'den sonra P21 sıçan mikroglia'nın hızlandırılmış bir filmi. İki hafta sonra, serumsuz kültürler, çanak boyunca hızlı proses uzantıları ve geri çekilmeler ile dinamik sürveyans davranışı gösterir. İşte fetal buzağı serumuna maruz kalmadan önce ve sonra TIC'de beş DIV'den sonra P21 sıçan mikrogliasının hızlandırılmış bir filmi.

Serum maruziyetinden sonra hızlı bir morfolojik değişiklik belirgindir. Bir kez ustalaştıktan sonra, bu protokol uygun şekilde gerçekleştirilirse dört ila beş saat içinde yapılabilir. Bu prosedürü takiben, mikroglia fonksiyonu ile ilgili ek soruları yanıtlamak için fagositoz, kemotaksis, sağkalım, sitokin salınımı, uyaranlara transkripsiyonel yanıtları izlemek için diğer testler yapılabilir.

Bu videoyu izledikten sonra, mikroglia'yı yetişkin kemirgen dokusundan nasıl hızlı bir şekilde izole edeceğinizi ve serumsuz koşullar altında nasıl kültürleyeceğinizi iyi anlamış olmalısınız.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neuroscience sayı: 133 Microglia hücre kültürü tanımlanmış orta nörolojik makrofaj Serum-ücretsiz Ramified İmmünoloji

Related Videos

Yenidoğan Rat Beyin Dokusu Karışık Glial Hücre Kültürleri Primer mikroglia İzolasyonu

10:20

Yenidoğan Rat Beyin Dokusu Karışık Glial Hücre Kültürleri Primer mikroglia İzolasyonu

Related Videos

40.5K Views

Murin astrositlerini izole etmek ve kültürlemek için basit bir teknik

04:51

Murin astrositlerini izole etmek ve kültürlemek için basit bir teknik

Related Videos

805 Views

Sıçan Beyinlerinden Serumsuz Besiyeri Kullanılarak Mikroglia İzolasyonu ve Kültürü

08:59

Sıçan Beyinlerinden Serumsuz Besiyeri Kullanılarak Mikroglia İzolasyonu ve Kültürü

Related Videos

719 Views

Sıçan Serebellar Granül Nöron Kültüründen Mikroglia'nın Seçici Olarak Çıkarılması

05:58

Sıçan Serebellar Granül Nöron Kültüründen Mikroglia'nın Seçici Olarak Çıkarılması

Related Videos

398 Views

Yenidoğan ve Erişkin Merkezi sinir sisteminin Kültüre Mikroglia

11:28

Yenidoğan ve Erişkin Merkezi sinir sisteminin Kültüre Mikroglia

Related Videos

28.8K Views

Kemirgen Yenidoğan itibaren Korunan immunfenotipine ve İşlevselliği ile Kortikal mikrogliya İzolasyonu

09:12

Kemirgen Yenidoğan itibaren Korunan immunfenotipine ve İşlevselliği ile Kortikal mikrogliya İzolasyonu

Related Videos

16.7K Views

Geliştirilmiş Saflık ve Çok Yönlü İlköğretim mikroglia hızlı ve Rafine CD11 Manyetik İzolasyon

07:54

Geliştirilmiş Saflık ve Çok Yönlü İlköğretim mikroglia hızlı ve Rafine CD11 Manyetik İzolasyon

Related Videos

10.3K Views

Karakterizasyonu ve yoğunluk Gradient Santrifüjü tarafından fare birincil Microglia izolasyonu

10:21

Karakterizasyonu ve yoğunluk Gradient Santrifüjü tarafından fare birincil Microglia izolasyonu

Related Videos

20.2K Views

Birincil Hücre Kültürleri için Yenidoğan Fareden Mikroglial Hücrelerin Manyetik İzolasyonu

07:23

Birincil Hücre Kültürleri için Yenidoğan Fareden Mikroglial Hücrelerin Manyetik İzolasyonu

Related Videos

3.7K Views

İn Vitro Tahliller ve Transkriptomik Çalışmalar için Yetişkin Fare Omuriliğinden Saf Astrositlerin ve Mikroglia'nın İzolasyonu

06:45

İn Vitro Tahliller ve Transkriptomik Çalışmalar için Yetişkin Fare Omuriliğinden Saf Astrositlerin ve Mikroglia'nın İzolasyonu

Related Videos

2.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code