-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
İskemik İnmenin Sıçan Modelinde İmmünofloresan ile Hücre Ölümü Sinyalinin Değerlendirilmesi
İskemik İnmenin Sıçan Modelinde İmmünofloresan ile Hücre Ölümü Sinyalinin Değerlendirilmesi
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Evaluating Cell Death Signaling by Immunofluorescence in a Rat Model of Ischemic Stroke

İskemik İnmenin Sıçan Modelinde İmmünofloresan ile Hücre Ölümü Sinyalinin Değerlendirilmesi

Full Text
1,201 Views
11:32 min
January 3, 2025

DOI: 10.3791/67606-v

Hengshu Chen*1, Kexin Chen*2, Xing Hua1, Simiao Wu1, Weihong He2

1Department of Neurology, West China Hospital,Sichuan University, 2Department of Physiology, West China School of Basic Medical Sciences and Forensic Medicine,Sichuan University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Sıçan in vivo modelleri, iskemik inme için patolojik mekanizmaları ve terapötik hedefleri araştırmak için vazgeçilmez araçlardır. Bu çalışma, sıçanlarda orta serebral arter tıkanıklığını (MCAO) takiben enfarktüslü beyin dilimlerinde immünofloresan boyama gerçekleştirmeyi açıklayacaktır.

Transcript

İskemik inme, dünya çapında önde gelen ölüm ve sakatlık nedenidir. Çalışmalarımız inme için ilaç hedeflerine odaklanmıştır. RUNX1 ve katepsinler gibi ortaya çıkan birkaç hedefle ilgileniyoruz. Bu hedefleri değerlendirmek için, orta serebral arteri tıkayarak iskemik inme için bir sıçan modeli geliştirdik.

Sıçanlarda iskemik inmeyi, orta serebral arteri tıkamak için bir filament yerleştirerek modelliyoruz. Orta serebral arter oklüzyon modeli, TTC, immünofloresan ve TUNEL boyama gibi diğer tekniklerle birlikte klinik öncesi inme çalışmaları için en yaygın kullanılan kemirgen modelidir. İnme patofizyolojisini entegre bir yaklaşımla inceleyebiliriz. İmmünofloresan için, antikorların özgüllüğü, floresan arka planını en aza indirmek ve floresan etiketlerin ve spesifik antikorların özelliklerinden yararlanarak sinyal-gürültü oranını optimize etmek gibi bazı teknik zorluklar vardır. İmmünofloresan, hücresel mimarinin karmaşık manzarasını ve orta serebral arter tıkanıklığı modeli ile moleküler etkileşimleri anlamamızı sağlar.

Bir dizi beyin dokusu, inme için uygun bir zaman penceresi ile potansiyel olarak kurtarılabilir. Sonuçlarımız, orta serebral arter tıkanıklığı sonrası sıçan beyinlerinin sayısında katepsin B ekspresyonunun aktive olduğunu göstermektedir. Artmış apoptoz eşlik eder. Hücre ölümü sinyalinin altında yatan mekanizma üzerine daha ileri çalışmalar, ilaç için yeni hedefler sağlayabilir.

Gelecekteki çalışmamızda, enflamatuar yollarda ve hücre ölümü sinyallerinde potansiyel moleküler hedefleri keşfetmeye devam edeceğiz. Deneysel çalışmalarla keşfedilen bu hedeflerden bazılarının klinik tedaviye çevrilebileceğini ve böylece inme hastaları için sağkalımı ve yaşam kalitesini iyileştirebileceğini umuyoruz.

[Ekran Okuyucusu] Başlamak için, anestezi uygulanmış sıçanı sırtüstü pozisyona getirin ve düzenlenmiş bir ısı matı ve bir rektal sıcaklık izleme probu kullanarak vücut sıcaklığını 36.5 ° C'de tutun. Boyundaki cildi tıraş edin ve iyodofor dezenfekte edici bir solüsyon kullanarak dezenfekte edin. Daha sonra, boyunda 2 cm'lik bir orta hat kesisi yapın ve karotis damarlarını ortaya çıkarmak için yumuşak dokuları geri çekin. Forseps kullanarak, sağ ortak karotis arteri veya CCA, dış karotis arter, ECA ve iç karotis arter, ICA'yı izole edin. Dikişler kullanarak proksimal sağ CCA'yı bağlayın. Ardından doğru ICA ve ECA'yı bir mikroklips ile kökenlerinde sıkıştırın. Küçük bir kesiden CCA'nın lümenine yuvarlak bir silikon uçla kaplanmış bir naylon monofilament yerleştirin ve monofilamentin kanamasını ve yerinden çıkmasını önlemek için CCA'ya bir düğüm atın. Sağ ICA mikroklibini açın ve monofilamenti, silikon uç MCA'nın kökenini tıkayana kadar ICA güdüğü boyunca sağ orta serebral artere veya MCA'ya yerleştirin. Naylon monofilamentin açıkta kalan kısmını kesin ve orta hat boyun kesisini kapatın. İki saatlik MCA oklüzyonundan sonra, boyun kesisini açın ve CCA'daki düğümü çözün. Ardından, MCA'yı yeniden perfüze etmek için naylon monofilamenti geri çekin. Ameliyattan sonra, sıcaklık ayarlı bir ısıtma matı ile tutulan ısıtılmış bir kafeste anesteziden iyileşme sırasında fareyi gözlemleyin. Zaya Long Davranışsal Derecelendirme Ölçeğini kullanarak, orta serebral arter tıkanıklığından veya MCAO'dan iki saat sonra ve reperfüzyondan 22 saat sonra nörolojik fonksiyonu değerlendirin. Tüm beyni MCAO model sıçandan izole ettikten sonra, beyni -20 ° C'de 20 dakika boyunca dondurun. Donmuş beyni, dilimler arasında 2 mm mesafe olacak şekilde altı koronal dilim halinde kesin. Dilimleri karanlıkta 37 °C'de 15 dakika boyunca %2 TTC ile boyayın. Daha sonra beyin dilimlerini oda sıcaklığında 24 saat boyunca% 4 paraformaldehit ile sabitleyin. Yakın çekim nesneleri için otomatik moda ayarlanmış bir dijital fotoğraf makinesi kullanarak lekeli dilimlerin fotoğrafını çekin. Görüntüleri bir bilgisayara aktarın ve enfarktüs boyutunu ölçmek için ImageJ yazılımını kullanın. Enfarktüs boyutunu, altı dilimin tümündeki enfarktüs alanının toplamının aynı dilimlerdeki toplam beyin alanının toplamına oranı olarak hesaplayın. MCAO grubunda, sahte grupta enfarktüs olmamasına kıyasla önemli enfarktüs alanları gözlendi. İmmünofloresan analizi için, MCAO model sıçandan alınan sağlam beyni 24 saat boyunca% 4 paraformaldehit içinde sabitleyin. Daha sonra beyni% 10,% 15 ve% 30 konsantrasyonlarda,% 10,% 15 ve% 30 konsantrasyonlarda bir dizi sükroz çözeltisi gradyanında kurutun ve doku batana kadar devam edin. Susuz kalmış beyni optimum kesme sıcaklığı bileşiğine gömün ve hava kabarcıklarını giderin. Beyni sıvı nitrojen içinde dondurun. Bir kriyostatta, beyni 5 μm kalınlığında bölümlere ayırın. Donmuş beyin bölümlerini oda sıcaklığında dengeledikten sonra, her biri 5 dakika boyunca steril PBS ile üç kez yıkayın. 10 dakika boyunca oda sıcaklığında mL başına 20 μg proteinaz K ve% 0.3 Triton X-100 ile inkübe etmeden önce dokuyu bir immünohistokimya kalemi ile ana hatlarıyla belirtin. Bölümleri PBS ile yıkadıktan sonra, belirtilen dokuya% 3 BSA uygulayın ve bloke etmek için oda sıcaklığında bir saat inkübe edin. Bloke edici solüsyonu uygun primer antikorla değiştirin ve bölümleri gece boyunca karanlıkta 4 ° C'de inkübe edin. Ertesi gün, bölümleri her biri 5 dakika boyunca% 0.1 Tween-20 içeren steril PBS ile üç kez yıkayın. Gerekli florofora konjuge edilmiş uygun ikincil antikoru ekleyin ve bölümleri ışıktan koruyarak nemlendirilmiş bir odada bir saat inkübe edin. Bölümleri Tween-20 içeren PBS ile yıkadıktan sonra, DAPPI içeren bir montaj ortamı ile boyayın ve kapak fişleri ile örtün. Bir floresan mikroskobunda, lekeli beyin kesitini yakalamak için uyarma dalga boyunu 488 nm'ye, emisyon dalga boyunu 520 nm'ye ve maruz kalma süresini 500 ms'ye ayarlayın.Yaş. Katepsin B immünoreaktivitesi, MCAO grubunun iskemik çekirdeğinde sahte gruba kıyasla önemli ölçüde artmıştır. Katepsin B immünoreaktivitesi, MCAO grubunun penumbra korteksinde sahte gruba kıyasla önemli ölçüde artmıştır. İskemik çekirdek ve penumbral korteks arasında katepsin B immünoreaktivitesinde anlamlı bir fark gözlenmedi. Başlamak için, MCAO model sıçanından paraformaldehit ile sabitlenmiş beyin dilimlerini, her biri 35 ila 50 dakika boyunca artan etanol konsantrasyonunda kurutun. Daha sonra beyin dilimlerini 35 ila 50 dakika boyunca terebentin yağı tipi şeffaf biyolojik ajan 1 ile tedavi edin, ardından doku tamamen şeffaf olana kadar 35 ila 50 dakika boyunca ajan 2'yi temizleyin. Şimdi beyin dilimlerini her biri 60 dakika sırayla 1, 2, 3 ve 4 numaralı gömme ortamlarına daldırın. Beyin dilimlerini bir gömme kasetine yerleştirin, sıkıca kapatın ve katılaşma için soğuk hava deposunda saklayın. Mikrotomu kullanarak doku bloğunu 10 μm'de kesin ve ardından 5 μm'de dilimleyin. Doku bölümlerinin 45 ° C'de 30 saniye boyunca bir su banyosunda yüzmesine izin verin ve ardından bunları slaytlara aktarın. Kuruduktan sonra, beyin bölümlerini her biri 10 dakikalık iki döngü boyunca bir temizleme maddesinde deparafinize edin. Daha sonra azalan etanol konsantrasyonlarında beyin bölümlerini yeniden sulandırın. Şimdi bölümü PBS'de her biri beş dakika boyunca üç kez durulayın. Fazla nemi aldıktan sonra, her bölüme 100 μL proteinaz K ekleyin ve 37 ° C'de 20 dakika inkübe edin. PBS yıkamalarından sonra, her numuneye 100 μL terminal deoksinükleotidil transferaz dengeleme tamponu uygulayın ve nemlendirilmiş bir odada 37 °C'de 10 ila 30 dakika inkübe edin. Emici kağıt kullanarak tamponu çıkarın ve TUNEL tahlil kitinden 50 μL etiketleme çalışma solüsyonu ekleyin. Ardından, DAPPI çalışma solüsyonunu bölümlere uygulayın ve çekirdekleri lekelemek için karanlıkta beş dakika inkübe edin. Numuneleri PBS'de her biri 5 dakika boyunca dört kez durulayın. Fazla sıvıyı çıkarın ve sürgüyü solmaya karşı dayanıklı bir montaj ortamıyla kapatın. Vectra Polaris multispektral görüntüleme sistemini kullanarak lekeli slaytı tarayın. TUNEL boyama, MCAO grubunun penumbral korteksinde sahte gruba kıyasla daha fazla TUNEL pozitif hücre ile apoptozda önemli bir artış gösterdi.

Explore More Videos

Hücre Ölümü Sinyali İskemik İnme Sıçan Modeli Orta Serebral Arter Nöroproteksiyon Enfarktüslü Çekirdek İskemik Penumbra Farmakolojik Yaklaşımlar İmmünofloresan Boyama Translasyonel Araştırma RUNX1 Katepsinler MCA Oklüzyonu Nöronal Hücreler

Related Videos

Endovasküler Dikiş Rat Orta Serebral Arter Tıkanıklığı Fokal Serebral İskemi Model

13:50

Endovasküler Dikiş Rat Orta Serebral Arter Tıkanıklığı Fokal Serebral İskemi Model

Related Videos

80.4K Views

Rat Lazer Doppler Flowmetri Rehberlik ile İskemik İnme için Endotelin-1 Bağlı Orta Serebral Arter Tıkanıklığı Modeli

07:26

Rat Lazer Doppler Flowmetri Rehberlik ile İskemik İnme için Endotelin-1 Bağlı Orta Serebral Arter Tıkanıklığı Modeli

Related Videos

20.3K Views

2-Gemi Tıkanıklığı / Hipotansiyon: Küresel Beyin İskemi Rat Modeli

09:29

2-Gemi Tıkanıklığı / Hipotansiyon: Küresel Beyin İskemi Rat Modeli

Related Videos

20.3K Views

Ligatable Floresan Sondalar Deneysel İnme Hücre Ölümü Fagositik Gümrükleme Değerlendirilmesi

07:14

Ligatable Floresan Sondalar Deneysel İnme Hücre Ölümü Fagositik Gümrükleme Değerlendirilmesi

Related Videos

8.3K Views

Pozitron Emisyon Tomografi ile kullanma Non-invaziv Görüntüleme ve Serebral iskemi Analizi Yaşam Sıçanlarda 18 F-FDG

10:31

Pozitron Emisyon Tomografi ile kullanma Non-invaziv Görüntüleme ve Serebral iskemi Analizi Yaşam Sıçanlarda 18 F-FDG

Related Videos

14.2K Views

Farelerde Tekrarlanan Hipoksik Önkoşullanma ve Geçici Orta Serebral Arter Tıkanıklığı ardından Nörovasküler Koruma Kantitasyonu

09:48

Farelerde Tekrarlanan Hipoksik Önkoşullanma ve Geçici Orta Serebral Arter Tıkanıklığı ardından Nörovasküler Koruma Kantitasyonu

Related Videos

14K Views

Enfarktüs Bölgesi Orta Arter Tıkanıklığı Tekniği ve Görselleştirme kullanma Fare İskemik İnme ve İskemi-reperfüzyon indüksiyon

09:08

Enfarktüs Bölgesi Orta Arter Tıkanıklığı Tekniği ve Görselleştirme kullanma Fare İskemik İnme ve İskemi-reperfüzyon indüksiyon

Related Videos

16.7K Views

Nöral Kök Hücrelerin Sıçan ve Fare Beynine İntra-Arteriyel Teslimatı: Serebral İskemiye Uygulama

14:53

Nöral Kök Hücrelerin Sıçan ve Fare Beynine İntra-Arteriyel Teslimatı: Serebral İskemiye Uygulama

Related Videos

10.7K Views

Farelerde Modelleme İnme: Fototomboz ile Fokal Kortikal Lezyonlar

06:07

Farelerde Modelleme İnme: Fototomboz ile Fokal Kortikal Lezyonlar

Related Videos

7.1K Views

Mini İnme Murin Modelinde Nöroimmün Etkileşimlerin İzolasyonu ve Flow Sitometrik Değerlendirmesi

08:22

Mini İnme Murin Modelinde Nöroimmün Etkileşimlerin İzolasyonu ve Flow Sitometrik Değerlendirmesi

Related Videos

236 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code