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复合管理 I

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复合管理通常是动物研究的一个不可分割的组成部分, 需要对许多因素进行评估, 以确保该化合物以人道的方式正确交付。两个主要的管理路线是肠内-通过消化道, 肠外-消化道。主要的区别是, 如果该化合物是通过肠道途径, 它经历了肝脏代谢前进入血液流。然而, 通过任何胃肠道, 如静脉注射或肌肉注射, 该物质跳过这第一次通过肝脏, 通常导致较高的生物利用度。

在 "复合管理" 系列的第一个视频中, 我们将首先讨论影响一般管理路径选择的因素。然后, 我们将审查最常见的肠外注射方法, 包括皮下缩写为 SC 或 SubQ, 腹腔或 IP, 肌肉或 IM, 和静脉 AKA IV。

首先回顾一下在预任何类型的复合管理过程之前应牢记的几件事情。第一步是准备要注射的溶液或悬浮液, 而对物质准备的第一个基本考虑是不育。为了防止将病原体引入动物, 重要的是注射材料以及使用的针头和注射器都是不育的.

第二个考虑因素是生理 compati能力.一个剂量的解决方案, 无论是管理肠或肠, 必须在生理学缓冲, 以适当的 pH 值的化合物被适当地吸收, 并防止组织损伤。第三个因素是注射剂的粘度, 在针选中起着关键作用。通常, 20 到30口径的针头用于小鼠和大鼠的肠外管理程序。这些针头的轮毂通常是彩色编码, 便于识别.

该解决方案应该有足够的流动性来通过至少一针。如果解决方案可以通过超过一个, 那么, 一般情况下, 选择最小的量规是可行的。下一个因素是影响注射器选择的管理量。与针相似, 最小的可能的注射器需要为准确药量与正确的毕业, 应该被选择。针规和管理量也取决于路线, 以及所管理的动物的种类、大小和年龄。请参阅下面的表 1, 以查看与本视频中讨论的路由相关的值。最后一个重要的考虑因素是吸收率, 这在不同的管理路线上有很大的差异, 在选择适合方法时可能起到一定的作用.

现在, 让我们来谈谈常规使用的注入方法的特殊特性.

SC 或 SubQ 注射液将材料放置在皮肤层和肌肉之间的一个虚拟空间, 通过提升皮肤。这样可以安全地注入较大的体积, 但吸收率比其他路线慢, 提供了更持久的效果。在 IP 管理过程中, 该化合物直接注入腹腔。这是用于提供大量解决方案的另一种常用方法。虽然一个 IP 注射被认为是肠外管理, 吸收机制实际上更类似于口服剂量。

IM 注射液直接将复合物送到臀肌或腓肠肌。在某些情况下, 由于肌肉组织中的血管数量众多, 注入 IM 的物质被迅速吸收, 这可能使它成为首选的途径。不当或反复注射肌肉会导致神经损伤, 导致瘫痪或肌肉坏死。最后, 静脉注射到动物尾静脉是最有效的管理途径, 因为物质直接引入循环系统。请注意, 该化合物应被注入到一侧尾侧静脉位于尾巴两侧。有一艘船沿尾巴的腹中线运行, 这是不适合注射的目的.

现在我们已经讨论了背景, 让我们学习一下程序, 从 SC 注入开始。对老鼠来说, 把它的尾巴捡起来, 让它在另一条安全的表面上休息, 就像线棒盖一样。然后, 用手把脖子上的皮肤抬起, 用手来控制动物, 形成一个帐篷。接下来, 将动物放在桌子上, 背部的脚搁在桌面上, 把你的手的脚跟放在桌子上, 以避免对可能危及呼吸的动物造成过重的体重。

要注射, 拿起注射器与解决方案注射, 并直接针平行于脊柱和远离头部, 以避免可能穿刺的头骨。然后, 插入针与斜面向上, 这允许一个温和的滑翔到皮肤。拉回活塞, 以检查正确的针放置。如果有反压, 当活塞拉回, 那么针是在正确的位置。如果空气被抽入柱塞, 那么针头就需要重新定位。

确认针的位置正确后, 以稳定的运动缓慢注入。暂停注射后, 在皮肤下轻轻旋转针, 以防止注射物品丢失。然后, 捏在注射部位的皮肤, 并撤回针。这种方法可用于断奶大鼠。

对于成年大鼠, 首先必须使用一个设备来限制动物, 在这个集合的 "处理和克制的基础" 视频中讨论了这个过程。然后, 你可以执行 SC 注射液与小鼠一样的方式进行。

接下来, 我们将学习如何执行 IP 注入。在小鼠, 使用 two-handed 约束技术, 手动抑制动物, 再次描述在 "基础的处理和克制" 视频。确保你的非手放在脖子上足够高的位置, 以防止动物转动。通过把尾巴放在第三个和第四指之间, 或者把皮肤牢牢地固定在剩余的手指和拇指的底座之间, 来稳定后腿。

下一步, 将该动物置于其腹部。倾斜的动物与头部指向向下的 30 ° 角度, 让肠道下降向前。注射地标可以这样描述: 画一条假想的线, 横跨身体, 在臀部的顶端, 从侧面延伸到侧面。然后绘制内侧的边界, 或中线, 沿着线的头发生长在相反的方向相遇。最后, 想象一下侧边, 这是一条从臀部到顶部到雄性的包皮和雌性的奶头。这为安全 IP 注入提供了三角形区域。

我们将讨论的下一个方法是 IM 注入。这项技术对小鼠和大鼠的限制需要两个人或使用一个约束管。在这里, 我们将描述使用一个限制装置的 one-person 方法.

首先, 把动物放在试管里, 用后腿伸出来, 把尾巴拉到动物的位置。其次, 抓住股骨颅骨侧面的皮肤, 延长腿部, 防止窒息的弯曲。然后, 定位约束装置, 使注射现场可视化。

以确定臀骨的标志, 定位臀肌肿块后的股骨。骨可以触, 大肌肉很容易感觉到。注意从典当点到尾部的中线。你经常可以看到脊, 从侧面和内表面的毛发聚集在一起, 在相反的方向生长。通常情况下, 注射在中线外侧向侧面进行。腓肠肌是小腿肌肉和注射到这个肌肉也是最好的表现从后方面。

对于臀肌, 位于地标位置, 将针插入最大深度约5毫米. 避免在注射过程中重新定位注射器以防止肌肉损伤。其次, 吸气以确保放置在肌肉内, 而不是血管。最后, 以缓慢和稳定的方式注入材料, 因为快速注射会导致组织损伤。按照与插入相同的路径, 以垂直方式移除针。对于腓肠肌, 将针插入最大深度为 3 mm, 并以与臀肌相同的方式进行注射.

最后, 让我们学习如何在啮齿类动物的尾部静脉中进行静脉注射。相同的方法是 applicable 鼠和鼠。

将该动物置于圆柱形约束管中, 并将该动物的整个身体用电热垫设置为介质, 约2-5 分钟。继续温暖的动物, 直到血管扩张, 这是明显较大。请记住, 侧尾尾静脉位于尾巴两侧。在腹中线的动脉是不适合注射的目的。旋转约束装置并定位尾部, 使侧尾静脉朝向并保持在张力下。不要使用过度紧张或容器可以被舒展和血液流动减少了.

将针 bevel-up 直接放在血管上方, 并施加轻微的压力, 将针头滑入与脊柱平行的尾部。在缓慢的流体运动中注入材料, 并注意到该容器 blanches 为血液被注射材料挤出。如果针在血管中没有正确定位, 注射时会有很强的阻力, 如果你用强力注射, 材料会填满皮下的空间, 尾部会出现气球状。立即停止, 因为被设计为静脉注射的材料可能会腐蚀周围的组织。撤回针头, 并尝试另一注射更多的 cranially 在尾巴上。成功注射后, 取出针头并按压注射部位, 以确保良好的止血, 然后将动物送回笼子.

现在您已经熟悉了常用的注入方法, 让我们来看看这些管理途径的一些应用, 而不是药物传递.

在一些实验中, 小鼠被注射了特定的病原体来研究感染。在这里, 研究人员使用皮下路线引入引起病变的耐药性细菌, 而这些病变的大小则作为病原体毒性的读数。许多科学家对研究干细胞在系统分娩后的分布和存活有兴趣。在这项研究中, 研究者在多发性硬化动物模型中对基因标记的神经干细胞进行尾静脉注射, 并将注入的细胞分布到脊髓和脑区。

在另一项实验中, 研究人员在一种肌肉萎缩症动物模型中注射了荧光标记成肌细胞注。随后, 生物荧光进行了分析成功植入干细胞。最后, 注射也可以用来生成动物模型。这些科学家 perfomed 腹腔注射硝-一个强有力的肝脏 toxin-in 雄性大鼠产生肝纤维化的动物模型, 然后被用来研究肝脏疾病的发展.

您刚刚观看了朱庇特的第一期复合管理, 讨论常用的肠外注射。请记住, 最佳的交货路线是基于几个因素, 包括 pH 值, 体积, 和粘度的注入溶液。每种技术都有其优缺点, 必须根据实验需要加以考虑。一如既往, 感谢收看!

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