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Administración de compuestos

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Administración compuesto suele ser un componente integral de un estudio en animales, y muchos factores deben evaluarse para asegurar que el compuesto sea entregado correctamente y de manera humana. Las dos vías de administración principales son enterales-través de la zona digestiva y parenteral fuera del tracto digestivo. La principal diferencia es, si el compuesto se administra por vía enteral se somete a metabolismo hepático antes de entrar en el torrente sanguíneo. Considerando que, por cualquier vía parenteral, intravenosa o intramuscular, la sustancia pasa este primer paso por el hígado, generalmente dando por resultado una biodisponibilidad más alta.

En este primer video de la serie de administración compuesta, a empezar por discutir los factores que afectan la elección de la vía de administración en general. Y luego Repasamos las inyecciones parenterales más comunes métodos, incluyendo subcutáneo abreviados como SC o SubQ, intraperitoneal o IP, intramuscular o IM y IV también conocido como intravenoso.

empecemos por revisar algunas cosas que uno debe tener en cuenta antes de preforma cualquier tipo de procedimiento de la administración compuesto. El primer paso es preparar la solución o suspensión que se inyecta, y la primera consideración fundamental para la preparación de la sustancia es esterilidad. Para evitar la introducción de patógenos en el animal, es importante que el material de inyección, así como las agujas y jeringas a utilizar estériles.

La segunda consideración es fisiológico compatiBility. Una solución de dosificación, si administrados por vía enteral o parenteral, debe ser fisiológicamente tamponada a pH adecuado para el compuesto para ser absorbido correctamente y para evitar la lesión del tejido. El tercer factor es la viscosidad del artículo de inyección, que juega un papel fundamental en la selección de la aguja. Generalmente, se utilizan agujas de calibre 20 a 30 en los procedimientos de administración parenteral para ratones y ratas. Los centros de estas agujas generalmente son color cifrado para la facilidad de identificación.

La solución debe tener la suficiente fluidez para pasar a través de al menos una de estas agujas. Si la solución puede pasar a través de más de uno, entonces, en general, la elección es el calibre más pequeño posible. El siguiente factor es volumen de administración que afecta a la jeringuilla de la selección. Similar a las agujas, la jeringa posible más pequeño necesaria para una dosificación exacta con graduaciones correcto, debe seleccionarse. El calibre de la aguja y el volumen de administración dependen también la ruta y las especies, tamaño y edad del animal se administra. Vea la tabla 1 a continuación para revisar los valores relacionados con las rutas que se discute en este video. La última consideración importante es la velocidad de absorción, que varía significativamente con cada vía de administración y puede jugar un papel en la selección del método más adecuado.

ahora, vamos a hablar de las características peculiares de los métodos de inyección habitualmente empleados.

SC o inyección de SubQ pone el material entre las capas de la piel y el músculo en un espacio virtual creado por elevación de la piel. Esto permite una inyección segura de grandes volúmenes, pero la velocidad de absorción es más lenta que otras rutas, proporcionando un efecto más sostenido. Durante la administración de IP, el compuesto se inyecta directamente en la cavidad peritoneal. Este es otro método común usado para entregar grandes volúmenes de solución. Aunque una inyección del IP se considera la administración parenteral, el mecanismo de absorción es más similar con la dosis oral.

Inyectable IM an entrega un compuesto directamente en los glúteos o del músculo gastrocnemio. Una sustancia que inyectada IM se absorbe rápidamente debido a la abundante cantidad de vasos dentro del tejido muscular, que podría hacer una ruta preferida en algunos casos. Inyección incorrecta o repetida en el músculo puede causar daño del nervio dando por resultado parálisis o músculo necrosis. Por último, una inyección IV en la vena de la cola de los animales es la vía más eficaz de administración, como la sustancia se introduce directamente en el sistema circulatorio. Tenga en cuenta que el compuesto debe ser inyectada en una de las venas de la cola caudal lateral ubicadas a los costados de la cola. Hay un barco que recorre la línea media ventral de la cola, que no es conveniente para propósitos de la inyección.

ahora que hemos discutido a fondo, vamos a aprender los procedimientos, a partir de las inyecciones SC. Para los ratones, escoger el animal por la cola y déjelo descansar en otro lugar seguro, como tapa de la barra de alambre. A continuación, manualmente refrenar el animal levantando la piel alrededor del cuello, formando una tienda de campaña. A continuación, establecer el animal sobre la mesa con los pies espaldos descansando en la superficie y descansar el talón de su mano sobre la mesa para evitar excesiva peso en el animal que puede comprometer la respiración.

Para inyectar, tomar la jeringa con la solución que se inyecta y dirigir el paralelo de la aguja y la espina dorsal de la cabeza para evitar la posibilidad de pinchazos en el cráneo. A continuación, inserte la aguja con el bisel hacia arriba, que permite un deslizamiento suave en la piel. Tire hacia atrás el émbolo para verificar la colocación de la aguja adecuada. Si hay contrapresión cuando el émbolo se jala hacia atrás, la aguja está en la posición correcta. Si el aire es aspirado en el émbolo, la aguja tendrá que cambiarse de lugar.

Después de confirmar que la aguja está en la posición correcta, inyecte lentamente con un movimiento constante. Pausa después de la inyección y girar la aguja ligeramente debajo de la piel para evitar la pérdida del artículo inyección. Luego, pellizcar la piel en el sitio de inyección y retire la aguja. Este mismo método puede utilizarse en ratas destetadas.

Para ratas adultas, en primer lugar el animal tiene restringida usando un dispositivo, el procedimiento que se explica en el video de "Conceptos básicos de manejo y moderación" de esta colección. Entonces, uno puede realizar la inyección SC de la misma manera como hizo en ratones.

a continuación, vamos a aprender cómo llevar a cabo una inyección de IP. En ratones, utilizan la técnica de moderación a dos manos para frenar manualmente el animal, que otra vez se describe en el video de "Conceptos básicos de manejo y moderación". Asegúrese de que su mano no dominante se coloca lo suficientemente alta en el cuello para evitar que el animal gire. Estabilizar los cuartos traseros colocando la cola entre los dedos terceros y cuarto o por fijación a la piel firmemente entre los dedos restantes y la base del pulgar.

a continuación, coloque el animal para dejar expuesto su abdomen. Incline el animal con la cabeza hacia abajo en un ángulo de 30° para permitir que los intestinos a caer hacia adelante. La señal de inyección puede esbozarse así: dibuja una línea imaginaria que se extiende horizontalmente a través del cuerpo, en la parte superior de la cadera, de flanco a flanco. Luego dibujar el borde medial o la línea media, a lo largo de la línea donde se encuentra con el pelo que crece en direcciones opuestas. Por último, imagina el borde lateral, que es una línea de la tapa las caderas en el prepucio en los machos y después los pezones en las hembras. Esto proporciona el área triangular para inyección IP segura.

el siguiente método que discutiremos es la inyección IM. Moderación en esta técnica para ratones y ratas requiere dos personas o el uso de un tubo de sujeción. Aquí, describimos el método de una persona utilizando un dispositivo que refrena.

En primer lugar, coloque el animal en el tubo y con las patas traseras hacia fuera, tire la cola a la posición del animal. A continuación, sujete la piel del flanco en la porción craneal del fémur para extender la pierna y evitar la rodilla de flexión. Luego, coloque el dispositivo de sujeción para permitir la visualización del sitio de inyección.

Para identificar la señal glútea, localizar el músculo glúteo masa posterior en el fémur. Puede ser palpated el hueso y el músculo grande se siente fácilmente. Tenga en cuenta la línea media que va desde el punto del corvejón hasta la cola. A menudo vemos la cresta donde confluyen el pelo de las superficies lateral e interiores crecen en direcciones opuestas. Por lo general, las inyecciones se realizan hacia al lateral el aspecto de la línea media. El gastrocnemio es el músculo de la pantorrilla y la inyección en este músculo también mejor se realiza desde la cara posterior.

Para el músculo glúteo, en el monumento situado, inserte la aguja a una profundidad de unos 5 mm. Evite colocar de nuevo la jeringa durante la inyección para prevenir el daño muscular. A continuación, aspirar para asegurar que la colocación es en el músculo, no de un vaso sanguíneo. Y por último, inyectar el material de manera lenta y constante, ya que la inyección rápida puede causar trauma tisular. Retire la aguja de forma perpendicular siguiendo la misma ruta que la de la inserción. Músculo gastrocnemio, inserte la aguja a una profundidad de 3 mm y realizar la inyección de la misma manera que el músculo glúteo.

por último, vamos a aprender a realizar una inyección IV en las venas de la cola de los roedores. El mismo método es apArá para ratones y ratas.

Coloque el animal en un tubo de sujeción cilíndrico y calentar todo el cuerpo del animal mediante el uso de una almohadilla de calefacción eléctrica establece en medio durante unos 2-5 minutos. Seguirá caliente del animal, hasta que se dilatan los vasos sanguíneos, que es perceptiblemente más grande. Recuerde, las venas laterales cola caudal se encuentran en los lados de la cola. La arteria que está en la línea media ventral no es adecuada para propósitos de la inyección. Gire el dispositivo de sujeción y colocar la cola que las venas laterales de la cola son hacia arriba y bajo tensión. No aplique una tensión excesiva o el recipiente puede ser estirado y el flujo de sangre disminuido.

Coloque la aguja bisel-para arriba directamente sobre el vaso sanguíneo distal como sea posible y aplique una ligera presión para deslizar la aguja hasta el paralelo de cola a la columna vertebral. Inyectar el material en un movimiento lento, fluido y notar que el buque palidece como sangre es empujada hacia fuera por el material de inyección. Si la aguja no está colocada correctamente en el recipiente, habrá fuerte resistencia al inyectar y si se inyecta con fuerza el material llenará el espacio subcutáneo y la cola se globo. Detener inmediatamente el material - que está diseñado para ser inyectado por vía intravenosa - sea cáustico para los tejidos circundantes. Retire la aguja e intentar otra inyección más cranially en la cola. Después de la inyección acertada, retire la aguja y aplique presión en el sitio de la inyección para asegurar buena hemostasia antes de regresar el animal a la jaula.

ahora que está familiarizado con los métodos de inyección común, vamos a ver algunas aplicaciones de estas vías de administración, que no sea el suministro de medicamentos.

En varios experimentos, los ratones se inyectan con un patógeno específico para el estudio de la infección. Aquí, los investigadores utilizaron la vía subcutánea para introducir las bacterias resistentes a los antibióticos que causa las lesiones, y el tamaño de estas lesiones sirvió como una lectura para la virulencia del patógeno. Varios científicos están interesados en estudiar la distribución y la supervivencia de las células madre después de la entrega sistémica. En este estudio, los investigadores realizaron cola inyección en la vena de etiquetado genéticamente las células madre neurales en un modelo animal de esclerosis múltiple y encuentra la distribución de las células inyectadas a la médula espinal y regiones del cerebro.

En otro experimento, los investigadores inyectados fluorescencia etiquetada mioblastos por vía intramuscular en un modelo animal de la distrofia muscular. A continuación, bioluminiscencia fue realizado para analizar el éxito de la implantación de las células madre. Por último, las inyecciones también pueden utilizarse para generar modelos animales. Estos científicos realizan inyección intraperitoneal de Dimetilnitrosamina - una potente toxina hepática - en ratas Wistar macho para generar un modelo animal de fibrosis hepática, que era entonces utilizar para estudiar el desarrollo de la enfermedad del higado.

sólo ha visto primera entrega de JoVE en administración compuesta discutiendo las inyecciones parenterales comúnmente empleadas. Recuerde, la ruta de entrega óptima se basa en varios factores, incluyendo el pH, el volumen y la viscosidad de la solución inyectada. Y cada técnica tiene ventajas y desventajas, que deben ser consideradas en relación con las necesidades experimentales. ¡Como siempre, gracias por ver!

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