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Administration composée III

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Parfois, les différentes approches expérimentales nécessitent l’utilisation des itinéraires moins fréquemment employés d’administration composée chez les rongeurs. Intracrânienne, intradermique et par voie nasale sont trois de ces routes alternatives que les chercheurs biomédicaux utilisent dans les laboratoires aujourd'hui.

Comme leur nom l’indique, intradermique est livrer composés dans les couches supérieures du derme. Intranasale met la solution dans les narines de l’animal. Et intracrânienne consiste à insérer l’aiguille directement dans le cerveau du rongeur.

Une formation spécialisée est indispensable pour effectuer ces procédures avec succès. Ici, nous allons illustrer tout d’abord les considérations pour chacune de ces méthodes, et puis nous allons démontrer les techniques qui vous aideront à apprennent les procédures tout en assurant la sécurité de l’animal et la réussite de l’expérience.

Commençons par la discussion lorsque ces routes sont habituellement employées et de choses, il faut garder à l’esprit avant de commencer à exécuter ces techniques spécialisés de l’administration.

Les injections intradermiques sont utilisées pour fournir un article dans l’espace entre l’épiderme et le derme, que cet itinéraire est habituellement réservé pour l’évaluation de l’inflammation, diagnostics de débit sanguin cutané ou des réactions allergiques à un antigène. Semblable à d’autres routes, la solution intradermique doit être prêt à l’aide de la technique de stérilisation. Et il doit être physiologiquement tamponné pour avoir un pH neutre afin d’éviter la nécrose au site d’injection. Un système de moyeu moins avec une aiguille de calibre 25-30 est souvent utilisé pour cette injection. Ce système aide à préserver le volume de l’administration, qui est de l’ordre de 50-100 microlitres par site d’injection.

Avec ces informations de contexte à l’esprit, nous allons plonger dans les procédures de ces méthodes d’injection. Première place est la technique d’administration intradermique. Cette procédure doit être effectuée chez des animaux anesthésiés. Examiner une autre vidéo de cette collection pour comprendre les procédures pour l’induction de l’anesthésie et l’entretien.

Une fois que l’animal est anesthésié, se raser le site d’injection à l’aide d’un rasoir électrique ou une crème dépilatoire. Avec de la gaze imbibé d’eau, complètement éliminer les cheveux persistante sur le site. Puis, avec un autre tampon de gaze, appliquer une solution antiseptique topique sur la zone rasée. Pour l’administration, tout d’abord stabiliser la peau au point d’injection en l’étirant entre votre pouce et votre index.

Maintenant, placez le biseau de l’aiguille vers le haut sur la peau et l’insérer doucement juste au-delà du biseau afin que l’ouverture se situe entre l’épiderme et les couches du derme. Ensuite, injecter lentement et Notez qu’elle crée une cloque dans la peau. Si l’aiguille est insérée trop profondément puis aucune cloque ne se formera. Après l’injection, une pause pour permettre à la peau de s’étirer et ajuster et puis retirer l’aiguille lentement. Ne tirez pas revenir sur le piston à tout moment, comme vous dresser les tissus et causer un traumatisme au site d’injection. En outre, ne pas essuyer ou éponger le site d’injection, car cela pourrait causer la substance injectée à fuir. Lorsque vous effectuez des injections multiples, veillez à espacer dehors assez large pour que les bulles ne se chevauchent pas avec un autre.

Ensuite, nous allons apprendre la procédure d’administration par voie nasale chez les animaux conscients et anesthésiés.

Pour les animaux éveillés, les restreindre en scruffing la peau au niveau de la nuque et puis maintenez l’animal en position verticale, la tête immobilisée. Veillez à ne pas comprimer la poitrine comme qui pourrait entraver la capacité de l’animal à prendre des respirations suffisamment profondes pour aspirer le liquide dans les poumons. À l’aide d’une micropipette, administrer une partie de la solution en plaçant une petite goutte de liquide lors de l’ouverture nasale. L’animal inhalera la goutte. Répétez ce processus, en alternant entre les deux narines jusqu'à ce que la totalité du volume qui sera administrée a été donné. Rappel - le volume total de l’administration ne devrait pas dépasser 24 μl et 100 μl chez les souris et les rats, respectivement.

Pour les rats et les souris anesthésiés, placer l’animal dans une position de décubitus dorsal. Cette position est idéale pour la livraison de la CNS, car elle permet pour une meilleure absorption du composé. Tourner la tête de l’animal et la moitié du composé administrer directement dans un côté de la nasale d’ouverture, il courroie avec inhalation. Ensuite, tourner la tête de l’animal en position pour la prochaine administration. Après 2 insufflations, administrer le volume restant dans la deuxième ouverture nasale. Après l’administration complète, retourner le dos animaux à sa cage.

Ensuite, passons en revue la procédure d’administration intracrânienne néonatales souris et les rats. Avant de commencer la procédure, placez la cage avec les chiots et le barrage sur une électrique chauffage pad réglé à basse température. S’assurer qu’une partie de la cage est sur le coussin chauffant. C’est pour prévenir l’hypothermie et, en même temps, permettre au barrage de s’éloigner de la chaleur, si elle le désire. Ensuite, sélectionnez une mesure d’aiguille adaptée à l’âge de l’animal. Rappel, la mesure d’aiguille ; longueur des aiguilles, qui est utilisé pour contrôler la profondeur de l’aiguille pendant l’injection intracrânienne ; et le volume de l’administration... tous varient avec l’âge et l’espèce de l’animal.

La durée est réglée à l’aide d’un gardien. Pour préparer cet garde, mesurer l’aiguille correcte par rapport à son plafond et faire une marque. Ensuite, placez une deuxième marque sur le capuchon pour indiquer où il sera coupé. La distance entre les deux marques est la longueur des aiguilles désirée. Ensuite, coupez le chapeau avec une lame de rasoir. Ne pas utiliser de ciseaux car il peut écraser le cap et ne produira pas une coupe propre niveau. Il s’agit de la « protection de l’aiguille ». Jeter l’aiguille utilisée pour la création de la garde, car il n’est plus stérile et plutôt insérer une aiguille Neuve dans la garde et s’assurer que la bonne longueur est exposée. Ensuite, en utilisant une aiguille différente attachée à la seringue appropriée, dessinez la substance de l’injection. Une aiguille différente est utilisée pour ce faire, parce que le placement dans le bouchon s’alourdira considérablement de ces aiguilles fine jauge, qui n’est pas idéal pour l’administration intracrânienne. Ensuite, placez la seringue remplie sur l’aiguille avec la garde. Maintenant le système est prêt pour une injection.

Pour les petits plus de 10 jours d’âge, administrer l’anesthésie par inhalation. Chiots âgés de moins de 10 jours n’a pas besoin d’être anesthésiés.

Maintenant passons en revue certaines expériences menées dans les laboratoires d’aujourd'hui qui utilisent ces rares voies d’administration.

Une injection intradermique est souvent utilisée pour étudier la réaction inflammatoire de la peau. Dans cette expérience, les chercheurs ont utilisé cette méthode pour injecter un allergène dans une oreille et une substance neutre dans l’oreille opposée d’une souris présensibilisée. Ensuite, ils ont livré un colorant bleu dans le système circulatoire de l’animal pour examiner les changements dans la perméabilité vasculaire en raison de l’injection de l’allergène.

Comme mentionné précédemment, l’une des applications de l’administration par voie nasale est d’administrer des vaccins. Ici, les scientifiques ont utilisé cette route pour offrir un vaccin atténué génétiquement modifiés, vivre dans le type sauvage et la souris transgéniques et l’immunité mucosale étudiée par l’intermédiaire de la production d’un type spécifique de cellules T.

Enfin, ces recherches biomédicales utilisées administration intracrânienne d’implanter des cellules cancéreuses chez les souris immunodéprimées, afin de créer un modèle de tumeur du cerveau humain. Ensuite, l’efficacité de l’injection a été analysée à l’aide d’un appareil d’imagerie in vivo.

Vous avez la vidéo de jus regardé JoVE sur certaines des méthodes spéciales d’administration composée chez des rats et des souris de laboratoire. Vous devez maintenant comprendre lorsque ces procédures sont utiles, les considérations que vous devez garder à l’esprit avant et Pendant l’exécution de ces techniques et les étapes procédurales essentielles pour s’assurer que l’administration a un impact minime sur la santé de l’animal et sur les données expérimentales à collecter. Comme toujours, Merci pour regarder !

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