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麻醉诱导与维护

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麻醉诱导和维护是接受任何形式的外科手术的实验动物的兽医护理的一个组成部分。麻醉的目的是充分地固定动物和减轻所有的疼痛感觉。除了感应外, 还需要精确和恒定的监测, 以便在整个过程中安全地保持正确的麻醉深度.

在本视频中, 我们将首先简要讨论啮齿类动物麻醉的水平, 以及一个应该达到的阶段。接下来, 我们将审查不同的归纳和维护方法, 各种方法, 以确保动物总是在理想的麻醉阶段, 最后一些现实世界的实验, 涉及使用不同的麻醉剂, 为各种目的.

让与 #39; s 从讨论级别开始。有四阶段的麻醉和四架飞机在三阶段或手术阶段.

在第一阶段, 动物就会迷失方向。第二阶段是以不规则的呼吸速率和失扶正反射为标志。在三阶段的第一个平面上, 眼睑和吞咽反应是缺席的。在第二个平面中, 喉和角膜反射失去了。直到这一点, 麻醉剂并没有导致健忘或镇痛.

在平面三中, 健忘症和镇痛的进展从部分到完整, 动物完全麻醉为外科手术。平面三也是由肋间肌肉麻痹的标志, 这导致膈呼吸是浅呼吸。在飞机四, 该动物已经过量, 并可以迅速进入四阶段, 那里有完全瘫痪的肋间肌肉和隔膜, 这可能导致呼吸骤停, 并最终导致死亡.

麻醉剂可作为吸入或注射剂, 兽医必须决定使用什么程序才能执行。这个选择是基于许多方面, 包括: 程序的范围和持续时间, 物种和应变, 年龄和动物的生理状况.

通常使用的吸入麻醉剂类包括异氟醚、七氟醚和地氟醚等化合物。这些化合物可以方便地控制麻醉深度。在设备上有几个选项可以选择来管理吸入麻醉剂.

其中一个选择是响铃罐子, 应该使用在敞篷之下-和不在长凳-避免人员接触到麻醉剂气体。用陶瓷或塑料穿孔平台组装罐子, 在罐子的底部和平台之间创造一个空间。接着, 戴上防渗手套, 用麻醉剂浸透棉球, 放在平台下, 使其停留在罐子的底部。然后立即保护盖子, 以防止麻醉蒸气逃逸。将动物放在一边, 将盖子滑向一侧, 介绍动物并立即将其固定。随后, 观察活动和呼吸, 以确定麻醉深度, 并将动物暴露于吸入 效果 。请注意, 该平台作为屏障, 防止动物与液体麻醉剂直接接触.

响铃罐的另一种替代方法是与与氧气罐连接的精密汽化器机一起使用的感应室。第一步是确保汽化器充满适量的液体麻醉剂。下一步, 检查废气净化系统。如果它是通常使用的被动系统, 然后称量罐, 以确定它是否仍然有效。一般来说, 增加五十克以上的起始重量是一个点, 在这个容器的花费。下一步是组装感应室。确保输入是从蒸发器和输出的废气清除系统.

启动时, 将动物放入感应室并固定盖子。一旦动物是在会议厅, 首先开始的氧气流量以每分钟1公升的速度, 然后调整精确度汽化器设置到感应水平 3-4% 的异氟醚。象响铃罐子, 暴露动物到麻醉剂 起作用. 一旦动物完全麻醉, 将异氟醚关闭, 在轻轻地移除动物之前, 用氧气冲洗房间。这是为了防止人员接触麻醉剂气体.

麻醉诱导的另一种方法是通过鼻锥或口罩也连接到精密汽化器。然而, 因为麻醉气体有难闻的气味, 动物可能反对被掩没为归纳。此外, 由于抓得太紧, 还有导致窒息的危险。因此, 首选的方法是使用感应箱或钟罩来诱导麻醉, 然后用鼻锥进行维护。通常情况下, 装配是这样的, 锥和感应室都是连接到同一个蒸发器与一个开关之间的麻醉蒸汽传递从感应室到鼻锥, 反之亦然。麻醉后, 在房间里的动物, 安全它的脸在锥, 并切换到油管的开关, 以重定向气体流到鼻子锥。监测呼吸和确认动物放松后, 将麻醉剂降低到维持 0.5-1.5% 的水平。同时, 将眼部软膏应用于眼部, 防止角膜干燥.

用于注射麻醉剂, 混合氯胺酮和其他镇静剂或肌肉剂包括嗪和/或乙酰。使用这些化合物可以制备不同的组合。请参阅下面的文本以了解常用比率。请注意, 氯胺酮是一种受控物质, 因此所使用的量必须在受控的药物记录上注明, 而混合物必须有各自的受控物质记录。根据动物的种类、年龄和健康状况, 选择麻醉药的混合物和剂量, 并腹腔或注。通常, 注射和吸入麻醉剂用于联合手术麻醉.

现在您知道如何诱导 anesthe让 & #39 了解麻醉深度评估, 这是很重要的, 每10-30 分钟监测, 以确保在程序中的动物不会受到伤害。在啮齿目动物中有几种方法.

通常使用的方法是脚趾捏。伸展动物和 #39 的腿, 把脚趾间的带子隔离开来。然后用指甲或创伤钳牢牢地捏住区域。正面反射由腿的缩回或撤退表示。另一种方法是在尾部的尖端进行的尾部捏。阳性反应表现为抽搐或尾部运动。你也可以捏耳廓的尖端, 如果有晃动的头部或向前的胡须运动, 那么动物不是在外科手术平面的麻醉.

检查麻醉深度, 也可以触摸内侧眼角或眼内眼角, 以引起眼睑反射--由眨眼表示, 以响应眼睑的接触。即使有眼睑、胡须或明显增加的呼吸, 动物也不在麻醉的手术平面上.

最后, 你可以通过用戴手套的手指或棉花尖的涂抹器触摸角膜来检查角膜反射。闪烁表示正响应.

在评估麻醉深度时, 必须在站点间交替进行。使用相同的脚趾或耳朵反复捏将敏的区域和反应将被压抑, 而不是给出一个准确的麻醉深度评估.

除了这些物理刺激的评估方法外, 还应监测生理指标, 包括心率、呼吸速率、血压、粘膜颜色和毛细血管充盈时间。虽然一般的观察可以用来检测呼吸频率的变化, 利用心率进行深度评估, 但可以使用像心电图这样的专业设备。为了测量血压, 有各种各样的设备可以安装在尾部甚至整个身体。粘膜、眼睛、耳朵、嘴巴、鼻子、肛门、爪子和尾巴的颜色也可以显示麻醉深度。这些区域应该是粉红色的, 建议足够的呼吸和心率.

检查毛细管重填时间, 按下麻醉动物的耳廓, 并计算脱皮区域返回到粉红色颜色所需的秒数。这不应该超过1到2秒。延长的再填充时间表明心脏收缩的心率或强度降低, 表明动物可能是太深麻醉和接近死亡。将动物从麻醉中取出后, 除非在住房区持续监测, 否则不应将其送回住房设施, 直到从麻醉中恢复.

现在我们和 #39; 我了解了啮齿类麻醉诱导和维护的原理和程序, 让我们看看当今生物医学研究中常用的麻醉剂的一些应用.

可能最常用的啮齿动物麻醉是在手术之前和。例如, 在这里, 研究人员希望开发一种由脑内血栓形成引起的中风模型。为了达到这一目的, 他们在小鼠体内进行麻醉, 然后钻到头盖骨上, 形成一个薄薄的窗户。当这只动物还在服用镇静剂时, 这些科学家在循环中注入了光敏染料。接着, 他们借助激光通过钻孔的颅骨诱导活化, 导致颅内血管形成血块.

需要进行啮齿动物麻醉的另一个实例是进行生理分析。例如, 科学家经常在麻醉动物身上使用心电图电极来监测心脏活动。或者他们使用超声波探头来确定膈肌运动的速度, 以更准确地量化呼吸速率.

最后, 使用麻醉是强制性的, 当预生存 宫内 实验。例如, 在子宫内 电穿孔--一种方法, 其中怀孕的女性被麻醉, 一个切口, 以揭露发育中的胚胎, 和电极被用来诱导胚胎细胞摄取注射的遗传物质.

您刚刚观看了朱庇特和 #39; 关于麻醉管理和维护的视频。由于啮齿类麻醉促进了如此广泛的生物实验的执行, 因此, 每一位科学家都必须具备在整个实验中诱导和维持正确的麻醉深度的技巧。一如既往, 感谢收看!

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