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설치류 수술에 대한 고려 사항
 
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설치류 수술에 대한 고려 사항

Overview

출처: 케이 스튜어트, RVT, RLATG, CMAR; 발레리 A. 슈뢰더, RVT, RLATG. 노틀담 대학교, IN

실험실 동물의 관리 및 사용에 대한 가이드1 설치류 생존 수술은 무균적으로 수행될 것을 지시합니다. 무균 기술은 환자 준비, 외과 의사 준비, 기기 및 기타 공급품의 살균, 깨끗하고 통제된 환경 의 사용을 포함하여 수술 부위의 오염을 최소화하는 특정 관행을 활용합니다. 수술 전 계획, 수술 중 모니터링 및 수술 후 치료는 생존 수술에서 동물의 성공적인 회복을 위해 필수적입니다.

Principles

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외과 적 절차는 생존 또는 비 생존 및 전공 또는 미성년자로 분류됩니다. 생존 수술은 마취와 절차 모두에서 완전히 회복 될 것으로 예상되는 살아있는 완전히 마취 된 동물에서 수행 되는 외과 수술입니다. 비생존 또는 말기 수술은 마취에서 회복하기 전에 동물의 안락사로 끝나는 외과 적 절차입니다. 주요 수술은 흉부 구멍 또는 복강 또는 사지절단과 같은 영구적 인 신체적 또는 생리적 장애를 일으키는 수술 - 신체 공동의 노출 또는 침투를 포함한다. 경미한 수술은 신체 구멍을 관통하거나 트랜스 폰더의 피하 이식과 같은 영구적 인 결핍을 일으키지 않습니다. 모든 수술은 동물이 제대로 마취되고 인간적으로 취급되어야 합니다. 2

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Procedure

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1. 외과 전 계획

지침에 따라 전담 수술 시설에서 설치류 수술을 수행할 필요는 없지만, 사용되는 영역은 제조업체의 나열된 농도 및 접촉 시간에 따라 사용해야 하는 적절한 하드 표면 소독제로 소독되어야 합니다. 이 지역은 또한 혼란에서 무료로 유지되어야하며, 초안이 동물의 저체온증에 기여할 수 있기 때문에 공급 및 배기 덕트의 직접 라인에 있지 않아야합니다. 수술이 수행될 때 방에 대한 접근이 제한되어야 합니다. 수술 준비 지역 (특히 동물의 머리카락 제거를 위한) 및 수술 후 회복 및 관리를 위해 수술실 내에 있지 않은 경우 가까운 곳에 지정해야합니다. 일반적으로 수술이 특정 지역에서 일상적으로 수행되는 경우 해당 지역은 다른 활동에 사용해서는 안됩니다.

수술 전 준비는 수술을 방해할 수 있는 근본적인 건강 상태를 확인하기 위하여 외과 환자의 신체 검사를 포함해야 합니다. 설치류는 신진 대사 비율이 높고 지방 매장량이 매우 제한적이기 때문에 수술 전에 금식해서는 안됩니다. 동물의 수분 상태는 피부 탄력 성 검사에 의해 평가되어야합니다. 어깨 위의 피부가 부드럽게 들어 올려져 있습니다. 일반적으로 수화 된 동물에서 피부는 빠르게 제자리에 다시 떨어질 것이고 탈수 된 동물에서는 피부가 즉시 정상 위치로 돌아가지 않습니다. 자세와 헤어 코트의 상태와 같은 전반적인 외관도 주목해야합니다. 구부러진 자세를 드러내거나 단정하지 않은 털털을 가진 동물은 질병을 품고 있을 수 있습니다. 시험은 마취의 행정 직전에 수행되어야 하며, 어떤 이상한 조건든동물의 차트에 주의해야 합니다. 2 마지막으로, 쥐 또는 마우스의 해부학 및 생리학에 대한 고려사항은 수술을 위해 준비할 때 이루어져야 합니다.

2. 플랫폼

두 종 은 수술 시 저체온증에 취약하게 만드는 신체 볼륨 비율에 높은 표면적을 가지고, 특히 수술이 신체 구멍을 노출 할 때. 저체온증을 방지하기 위한 노력에는 가열된 수술 플랫폼의 사용이 포함됩니다.

일반적으로 스테인레스 스틸 또는 단단한 플라스틱으로 구성된 설치류 수술에 사용되는 플랫폼은 동물의 체온이 시술 중에 빠져나가는 것을 방지하기 위해 절연 재료 또는 보충 열원으로 덮여 있어야합니다. 보조 열원은 물 순환 가열 패드, 강제 공기 온난화 담요, 열램프, 또는 수술 플랫폼을 덮고 거품 패딩의 층을 포함한다. 열원이 내장된 수술 플랫폼은 시판됩니다. 모든 플랫폼은 쉽게 소독되고 습기에 침투하지 않는 재료여야 합니다.

저체온증을 방지하는 그밖 방법은 질량 절연체의 사용을, 동물과 외과 단자 사이 절연 물자를 배치하고, 외부 열원을 사용하는 것을 포함합니다. 3 질량 절연체는 섬유 매트릭스 내에서 공기를 트랩하여 동물을 둘러싸고 있는 "스틸 에어"를 생성합니다. 순환 하는 뜨거운 물 담요 환자 아래 사용할 수 있습니다. 이 장비는 설치류에서 말까지 다양한 크기로 제공되며, 내장 된 온도 조절기로 정밀한 열 지원을 할 수 있습니다.

화학적으로 활성화된 발열원은 일회성 사용또는 재사용이 가능합니다. 한 가지 유형은 화학 용액으로 채워진 플라스틱 파우치와 금속 디스크로 구성되어 있으며, 누르면 외열 반응을 일으킵니다. 이로 인해 액체가 고화되고 열을 방출합니다. 일반적으로 열량이 제한되어 있으며 짧은 절차에만 적합합니다. 다른 화학 가열 원은 실온에서 고체로 사용할 수 있지만 가열하면 액체가됩니다. 동물이 패드에 놓이면 액체가 열을 방출하고 패드 내용이 식으면 고체됩니다. 이 것들은 훨씬 더 긴 기간 동안 열을 방출 할 수 있습니다. 이점을 얻으려면 활성화 온도(~39°C)를 초과할 수 없으므로 온도 조절장치가 필요하지 않습니다.

물 팩은 스토퍼가있는 고무 또는 실리콘 가방으로 구성된 온수 병으로 사용할 수 있습니다. 팩은 뜨거운 물로 채워져 외부 표면에 열을 방출합니다. 물이 식으면 팩은 점차 열을 잃게됩니다. 보다 현대적인 버전은 상단에 수투성 패브릭이 부착된 플라스틱 시트로 구성되어 있습니다. 사이의 공간은 물과 팽창을 흡수하는 친수성 분말로 채워져 있습니다. 열원또는 냉각원으로 사용할 수 있습니다. 재료의 품질에 따라 전자 레인지에서 재사용 및 재가열하거나 뜨거운 물에 담글 수 있습니다.

외부 열원을 사용할 때는 주의해야 합니다. 상온은 직장 탐사선이나 열원에 동물 옆에 온도계를 배치하여 모니터링해야 합니다. 모든 외부 열원은 사용하기 전에 결함을 확인해야 합니다.

3. 머리 제거

수술 부위는 절개 오염을 최소화하기 위해 준비해야 합니다. 모발은 모낭에서 모발을 녹이는 화학 적 분모 크림으로 밀접하게 잘라내거나 제거해야합니다. 2,3 모발 클리핑은 수동 구속을 가진 의식적인 동물에서 수행 될 수 있지만, 탈모 크림의 적용은 제품의 섭취, 눈 손상 및 과도한 모발의 제거를 방지하기 위해 마취 된 동물에서만 수행되어야합니다. 면도기로 면도하는 것은 대안이 없는 경우 옵션입니다. 이 방법은 피부에 열상을 방지하기 위해 기술적 인 기술, 여분의 시간 및 인내심이 필요합니다. 수술장은 수술 상처에 모피를 포함하지 않고 절개와 봉합을 허용하기에 충분히 크어야하지만 저체온증의 악화를 피하기 위해 가능한 한 작아야합니다.

  1. 클리핑
    1. 모발은 외과 용 A40 블레이드와 함께 유선 전기 또는 배터리 작동 클리퍼를 사용하여 잘립니다. 블레이드의 너비를 고려해야 합니다. 표준 2" 블레이드는 쥐에 사용할 수 있지만 1/2-1" 블레이드는 마우스에 더 적합합니다.
    2. 머리카락은 성장의 방향에 따라 잘립니다. 설치류가 기본 근육에 피부의 느슨한 부착을 가지고 있기 때문에 피부를 안정시키기 위해 피부를 스트레칭하십시오.
    3. 피부를 크링하거나 자르는 것을 피하기 위해 주의해야 합니다. 모발을 클리핑할 때 블레이드의 평평한 끝이 피부에 놓입니다. 칼날은 피부에 수직인 치아와 함께 사용해서는 안됩니다.

Figure 1
그림 1. 면도하는 동안 헤어 클리퍼의 올바른 위치.

  1. 화학 적 분모 크림 또는 로션
    1. 수술 부위 에 제품을 적용하십시오.
    2. 10 분 후, 피부는 피부에 자극이나 화학 적 화상을 피하기 위해 탈모의 모든 흔적을 완전히 헹구고 청소해야합니다.

4. 외과 용 스크럽

사용할 외과 스크럽 솔루션은 취해야 한다: 1) 피부에 존재하는 미생물을 실질적으로 감소시키고 비자극성 항균 제제를 포함; 2) 항균 특성의 광범위한 스펙트럼을 소유; 3) 빠르게 행동할 수 있어야 한다. 및 4) 지속적이고 누적된 활동이 있습니다.

일반적으로 사용되는 클렌징 스크럽 솔루션 은 클로르헨시딘과 요오도프터입니다. 클로르헨시딘 솔루션은 유기물이 있는 경우에도 박테리아와 바이러스에 효과적입니다. 대조적으로, 요오도는 미생물 작용의 넓은 범위를 가지고 있지만, 그 효능은 유기 물질의 존재에서 감소; 잔류 활성은 클로르헨시딘보다 적습니다.

스크럽 사이에 사용되는 헹구는 것은 멸균물 또는 알코올입니다. 60-95%의 알코올을 함유한 알코올 기반 용액은 단백질의 절제를 통해 큰 항균 작용이 있습니다. 2 그러나 알코올은 강한 피부 자극제가 될 수 있습니다. 멸균 물은 지역을 헹구는 데 효과적이지만 항균 성질이 없습니다.

  1. 촉촉한 거즈 스폰지를 사용하여 머리카락과 비듬을 포함한 총 이물질을 제거하십시오.
  2. 가제 패드에 담근 살균 클렌징 용액은 절개 부위부터 피부에 도포됩니다. 소독은 절개 선을 따라 시작하여 원형 패턴으로 바깥쪽으로 확장되어야 합니다.
  3. 그런 다음 절제 부위에서 시작하여 방부제 헹구기가 적용됩니다. 피부는 절개 선에서 수술장 주변으로 나선형으로 닦아 클렌징 용액을 제거합니다.
  4. 이것은 세 번 반복됩니다.
  5. 마지막 헹구면 멸균 거즈 패드가 수술장 위에 놓입니다. 이 거즈는 알코올이나 요오드로 젖을 수 있습니다. 거즈는 동물이 수송되고 수술 플랫폼 이나 수술 테이블/벤치에 위치에 배치 되면 제거됩니다.

표준 외과 스크러빙 방법이 사용되지 않는 신체의 영역은 눈, 입 및 항문 부위를 포함한다. 스크럽 용액을 사용하면 눈표면이 손상되기 때문에, 수술 용스크는 눈에 보호 연고를 주입 한 후 눈꺼풀에만 수행됩니다. 어떤 상황에서는 생리적으로 균형 잡힌 식염수 용액이 눈을 플러시하여 총 이물질을 제거하고 수술이 발생할 수 있는 수준으로 박테리아를 희석하는 데 사용됩니다. 입은 또한 수술을 위해 충분히 청소하기 어렵다는 것을 증명합니다. 그것은 어떤 박테리아든지 희석하기 위하여 생리적으로 균형잡힌 식염수 용액으로 헹맺을 수 있습니다; 그러나 유체의 포부를 일으킬 수있는 너무 많은 식염수를 사용하지 않는 것이 중요합니다. 잇몸, 치아 및 혀는 독성이 없는 방부제로 닦을 수 있습니다. 그러나 점막에 용액을 적용하면 전신 흡수가 발생할 수 있습니다. 항문 부위의 수술, 직장 탈출의 외과 적 감소와 같은 수술은 깨끗한 수술로 간주되지 않습니다. 일부 방부제 용액의 사용은 조직 손상을 증가시키고 치유를 방지하거나 연장 할 수 있습니다. 생리적으로 균형 잡힌 식염수 용액을 사용하여 총 이물질의 깨끗한 영역을 세척하는 것이 바람직한 수술 준비 방법입니다. 2,4

5. 포지셔닝

복부 절차를 위한 참을성 있는 위치는 테이프 또는 합자로 플랫폼에 경향이 있는 동물의 사지의 확보를 관련시킵니다. 사지를 확장 하기 위해 합자를 사용 하는 경우, 주의 해야 합니다 발에 순환을 방지 하기 위해 손상 되 고, 사지에 과도 한 긴장과 관절을 손상 시킬 수 있는 사지의 극단적인 스트레칭을 방지 하기 위해, 호흡의 장애를 방지 하기 위해. 넥타이는 사지를 통해 절반 히치 루프와 빠른 릴리스해야한다. 일부 상용 플랫폼은 동물의 크기에 따라 조정할 수있는 스테인레스 스틸 와이어 또는 볼 체인의 후크 또는 루프로 구성된 팔다리 회수가 내장되어 있습니다. 테이프를 사용하는 경우, 그것은 건조 표면에 부착해야합니다.

6화 드레이핑

동물이 수술 플랫폼에 준비되고 배치되면 외과 커튼은 봉합사의 오염을 방지하고 수술 부위에서 멸균 장을 유지하는 데 사용됩니다. 커튼은 재사용 가능한 천 재료, 종이 일회용 재료 또는 일회용 플라스틱 접착제 재료일 수 있습니다.

일회용 종이 커튼에는 절단 가장자리의 찢어지거나 마모되지 않고 회향을 자르거나 커튼의 개구부를 포함하여 모든 모양이나 크기로 절단할 수 있는 강도를 위한 직조 섬유 매트릭스가 있습니다. 그들은 또한 수분 구충제입니다. 일회용 커튼은 다양한 크기와 모양으로 미리 포장되고 미리 살균할 수 있습니다. 천 커튼은 회합을 만들기 위해 외과 의사에 의해 절단하도록 설계되지 않았습니다. 그들은 프리컷과 바운드 가장자리 회합으로 구입합니다. 천 커튼은 세탁 및 살균이 필요합니다. 잘 돌볼 때, 천 커튼은 몇 년 동안 지속될 수 있어 경제적인 투자입니다.

종이와 천 커튼은 모두 동물의 피부를 통해 수건 클램프가 있는 곳에 보관되어 있으며, 성인 쥐와 같은 더 큰 설치류인 경우. 작은 설치류의 경우 커튼은 피부에 부착되지 않으며, 외과 의사는 동물에 배치되면 드레이프를 빼거나 이동하지 않도록 경계와 관리가 필요합니다.

접착제 드레이프는 명확하거나 불투명합니다. 명확한 커튼은 동물의 직접 시각화를 허용하기 때문에 설치류 수술에 선호됩니다. 일부 플라스틱 커튼은 플라스틱과 종이의 조합이며 플라스틱 영역은 동물과 확장 된 멸균 필드를 정의하는 종이 영역 위에 직접 있습니다. 외과 절개 부위 위에 직접 있는 드레이프의 부분은 절개 부위를 준수하도록 설계되었습니다. 외과 의사는 피부 절개를 할 때 플라스틱을 직접 절단 할 수 있습니다. 살균 플라스틱 랩은 설치류 수술을위한 비용 효율적이고 유용한 재료로 받아 들여졌습니다. 랩이 환자 주위에 배치 될 때 호흡을위한 움직임의 수축을 피하기 위해주의를 기울여야합니다. 랩은 체온을 보존하고, 환자의 시각화를 허용하며, 멸균 장과 동물 사이의 수분 장벽을 제공합니다. 그것은 또한 사지 고정 대신 수술에 대 한 동물의 위치 및 유지에 도움이 될 수 있습니다.

모든 유형의 커튼은 비살균 지역, 장비 및 인력과의 접촉을 피하기 위해 신중하게 전개되어야합니다. 그들은 흔들거나 흔들면 결코 펼쳐져서는 안됩니다.

  1. 종이 커튼: 단일 드레이프 방법에서 커튼이 펼쳐져 서식하지 않으면 회합을 절단할 수 있습니다.
    1. 외과 의사는 환자를 만지지 않습니다 드레이프의 측면에 손을 유지하는 동물 위에 커튼을 배치합니다.
    2. 커튼은 수술장이 회향을 통해 볼 수 있도록 조정됩니다.
    3. 커튼은 더 큰 쥐의 경우 동물의 피부를 통해 수건 클램프로 제자리에 개최됩니다.
  2. 접착제 창이 있는 용지 또는 플라스틱
    1. 접착제 창이 있는 커튼은 접착제 영역이 수술 장에 충실할 수 있도록 종이 부위의 박리가 필요합니다.
    2. 멸균 드레이프를 펼칠 때 접착제 부위는 일반적으로 가장 위쪽 영역이며 외과 의사가 쉽게 접근 할 수 있습니다.
    3. 접착제가 발견되면 커튼이 조심스럽게 펼쳐져 끈적끈적한 면이 동물을 마주보고 있도록 돌보아 놓습니다.
    4. 접착제가 동물에게 닿으면 조정할 수 없는 커튼을 올바르게 배치해야 합니다.
    5. 외과 의사는 부드럽게 피부와 물개를 만들기 위해 수술 필드에 접착제를 눌러야한다.
  3. 천 커튼
    1. 펜네스트 천 커튼은 절단되지 않으므로 수술 부위를 적절하게 노출할 수 있을 정도로 큰 개구부가 있는 커튼을 선택하는 것은 외과 의사의 책임이지만 면도되지 않고 준비되지 않은 신체 표면을 노출할 수 있도록 그렇게 크지는 않습니다.
    2. 드레이프는 신중하게 번아 번져 회합을 드러냅니다.
    3. 외과 의사는 동물을 건드리지 않을 커튼 의 측면에 손을 유지하면서 동물 위에 커튼을 배치합니다.
    4. 커튼은 수술장이 회향을 통해 볼 수 있도록 조정됩니다.

Figure 2
그림 2. 올바르게 배치 된 드레이프의 회합을 통해 볼 수있는 외과 필드.

  1. 접착제 커튼: 설치류 수술을 위한 비용 효율적이고 유용한 재료. 5
    1. 사용 중인 섹션이 멸균 상태로 유지되도록 하기 위해 롤에서 드레이프를 가져와야 합니다.
    2. 수술 도우미는 상자를 열고 랩의 길이를 당겨 상자 또는 다른 표면에 닿지 않도록주의하십시오.
    3. 외과 의사는 양쪽에 랩을 잡고, 조수는 멀리 잡고있는 끝을 잘라 (약 3-4 인치).
    4. 절단 가장자리를 삭제한 후 도우미는 롤의 나머지 부분에서 섹션을 잘라냅니다.
    5. 외과 의사는 랩의 한쪽을 잡고 동물 위에 놓습니다.
    6. 랩의 특성을 통해 모든 서피스를 부착할 수 있습니다.
    7. 외과 의사는 동물을 필름을 누르고 멸균 필드를 만듭니다.
    8. 수건 클램프를 사용하거나 커튼이 변할 까봐 걱정할 필요가 없습니다.
    9. 호흡을 위한 운동의 수축을 피하기 위하여 주의해야 합니다. 랩은 체온을 보존하고, 환자의 시각화를 허용하며, 멸균 장과 동물 사이의 수분 장벽을 제공합니다.

7. 수술 중 모니터링

마취 된 환자는 완전히 회복 될 때까지 체온, 호흡 및 심박수를 모니터링해야합니다.

체온은 직간접적으로 모니터링할 수 있습니다. 직접 모니터링을 위해 설치류를 위해 특별히 설계된 직장 프로브를 사용해야 합니다. 수은 또는 디지털의 작은 동물 직장 온도계는 항문 괄약근과 직장 조직에 손상없이 쥐와 쥐에 사용하기에는 너무 큽니다. 취약한 균주에서, 그들의 사용은 직장 탈출을 침전시킬 수 있습니다. 간접 모니터링에는 온도계를 동물 옆에 배치하거나 외부 가열 원에 체내에 배치하는 것이 포함됩니다. 이것은 정확한 체온을 제공하지 않지만, 그것은 열원의 효과를 표시하고 조정이 감소또는 필요에 따라 열을 증가 할 수 있습니다.

심박수를 증분하고 특수 장비없이 작은 설치류의 호흡을 계산하는 것은 어렵습니다.

대부분의 모니터링은 시각적이며 가슴이나 복부 호흡의 존재 또는 부재만 나타냅니다. 심박수는 흉벽의 미세한 움직임의 심Pation 또는 시각적 관찰에 의해 현재 또는 결석으로 평가됩니다. 이것은 동물의 감속 및 작은 크기 때문에 수술 도중 가능하지 않을 수 있습니다.

추가 모니터링은 심전도 (ECG) 및 맥박 산소계의 사용을 통해 수행 될 수있다. 심전도는 마취 와 수술 중 설치류의 심장 상태를 평가합니다. 맥박 산소계는 동맥 혈액에 있는 산소를 측정하기 위하여 적색및 적외선 굴절을 이용합니다. 이 기술은 꼬리 또는 발을 사용하여 설치류에 사용하기 위해 조정되었습니다. 환자의 활력 징후의 비침습적 지속적인 측정의 두 가지 유형은 수술 장의 최소한의 중단으로 쉽게 액세스 할 수 있습니다.

8. 수술 후 모니터링

하나는 복구 케이지 수술 후 에서 가열 패드를 사용하는 것이 좋습니다. 또한, 선제적 및 수술 후 진통제는 가능하면 제공되어야 합니다. 진통 조항은 고통스러운 사건 이전에 주어진 때 고통스러운 자극의 강도를 감소시키기에서 가장 효과적입니다. 진통제의 선제적 사용의 장점은 고통스러운 자극의 강도의 감소, 동물의 안락 수준 수술 의 개선, 수술 비행기를 유지하는 데 필요한 마취의 양 감소, 절차가 끝나면 마취에서 더 원활한 회복을 포함한다. 일반적으로 사용되는 선제적 및 수술 후 약물은 표 1에 표시됩니다. 6

약물 클래스 이름 복용량 빈도
비 스테로이드 성 항 염증 약물 (비 조절 물질) 케토프로펜 2-5 mg/kg SC 마우스
5 mg/kg SC 쥐
매 12-24시간
매 12-24시간
비 스테로이드 성 항 염증 약물 (비 조절 물질) 플루니신 메글루민 2.5 mg/kg SC 마우스 매 12-24시간
비 스테로이드 성 항 염증 약물 (비 조절 물질) 멜록시캠 5-10 mg/kg PO 마우스 또는 1-2 mg/kg SC 마우스
5-10 mg/kg PO 또는 1-2 mg/kg SC 또는 PO 쥐
매 12-24시간
매 24시간
매 12-24시간
매 24시간
비 스테로이드 성 항 염증 약물 (비 조절 물질) 아세트아미노펜 50 mg/kg SC/IP 또는 100 mg/kg PO 쥐 8-12시간마다
오피오이드 (규제 물질) 부타솔 0.5-3.0 mg/kg SC 또는 0.2-2 mg/kg IP 마우스
2.0 mg/kg SC
0.2-2 mg/kg IP 쥐
4시간마다
매 2-4 시간
4시간마다
매 2-4 시간
오피오이드 (규제 물질) 부프레노르핀 0.05-2.5 mg/kg SC 또는 IP 마우스
0.01 – 0.5 mg/kg SC 쥐
매 6-12시간
8-12시간마다
오피오이드 (규제 물질) 옥시모폰 0.2-0.5 mg/kg SC 마우스
0.2-0.5 mg/kg SC 쥐
매 6-12시간
매 6-12시간

표 1. 일반적으로 선제 및 수술 후 약물을 사용.

실험실 동물의 치료 및 사용에 대한 지침은 설치류 생존 수술이 무균및 인도적 방식으로 수행될 것을 지시합니다. 이것은 동물에게 최소한의 외상이 있는지 확인하기 위한 것입니다. 외과 적 절차 자체로 인해 감염이 없습니다. 저체온증을 예방하기 위해; 침습적 단계에 의해 유도된 고통과 불편함을 감소시키기 위해.

이 비디오는 수술 전 계획, 수술 중 모니터링 및 수술 후 치료에 대한 일반적인 고려 사항을 검토합니다. 이것은 오늘 생물 의학 연구에서 수행 된 수술의 몇 가지 유형의 데모 다음에 있을 것입니다.

먼저, 설치류 수술 전에 과학자가 수행해야 하는 준비 단계를 검토해 보겠습니다. 수술이 수행 될 영역은 혼란이 없어야하며 적절한 단단한 표면 소독제로 소독해야합니다. 초안이 환자의 저체온증에 기여할 수 있기 때문에 이 지역은 환기와 직접 일치해서는 안됩니다. 저체온증을 더 방지하기 위해 수술 플랫폼은 추가 열원으로 절연되어야합니다.

수술 기구는 손 전에 살균해야합니다. 개별적으로 자동 분리 가능한 파우치로 감싸고 오토클레이브 내부에 텐트 구성에 배치하여 완전한 증기 침투를 허용합니다. 연쇄 수술이 수행되면 비드 멸균기로 각 동물 사이의 기기를 10-15 초 동안 멸균하십시오. 다음 동물에서 사용하기 전에 기기를 식히십시오.

수술 며칠 전에 동물을 관찰하여 신체 상태, 식욕, 수취량 및 소변 및 대변 출력을 평가하십시오. 또한, 몸의 자세와 헤어 코트의 상태를 주의하십시오. 구부러진 자세나 단정한 헤어 코트를 보이는 동물은 질병을 품고 있을 수 있으며 수술에 좋은 후보가 아닐 수도 있습니다.

설치류는 신진 대사 비율이 높고 지방 매장량이 매우 제한되어 있기 때문에 수술 전에 금식해서는 안됩니다. 피부 탄력 성 테스트를 수행하여 동물의 수분 상태를 평가합니다. 이렇게 하려면 어깨 위로 피부를 부드럽게 들어 올립니다. 일반적으로 수화 된 동물에서 피부는 빠르게 제자리에 다시 떨어질 것이고, 탈수 된 동물에서는 피부가 즉시 정상 위치로 돌아가지 않습니다.

수술 부위를 설정하고 동물이 건강상태가 양호한지 확인한 후, 동물을 수술 준비를 시작할 수 있습니다. 첫 번째 단계는 마취입니다. 마취를 유도하고 유지하는 방법을 이해하기 위해이 컬렉션의 다른 비디오를 참조합니다. 동물이 진정된 후 챔버에서 분리하여 면도 패드에 놓습니다. 면도는 오염을 방지하기 위해 수술 플랫폼에서 멀리 떨어진 지역에서 수행되어야합니다. 윤활유 눈 연고를 적용하여 눈의 건조를 방지하십시오.

면도는 일반적으로 외과 A40 블레이드와 함께 전기 클리퍼를 사용하여 수행됩니다. 표준 2인치 블레이드는 쥐에 사용할 수 있는 반면 반-1인치 블레이드는 마우스에 더 적합합니다. 닉과 컷을 피하려면 먼저 피부를 스트레칭하여 안정화하십시오. 그런 다음 칼날의 평평한 부분을 피부에 놓고 모발 성장 방향에 반하여 움직입니다. 면도 수술장은 수술 상처에 모피를 포함하지 않고 절개와 봉합을 허용하기에 충분히 크어야하지만, 저체온증의 악화를 피하기 위해 가능한 한 작아야합니다. 또는, 모낭에서 머리를 녹이는 탈모 크림을 사용하여 모발을 제거할 수 있습니다. 먼저 면봉을 사용하여 수술 부위 부위에 제품을적용한다. 약 3분 후, 자극이나 화학적 화상을 피하기 위해 크림의 모든 흔적을 제거하기 위해 멸균물로 피부를 헹구고 청소하십시오.

제모 후, 모이스텐 거즈 스폰지를 사용하여 머리카락과 비듬을 포함한 이물질을 제거하십시오. 그런 다음, 살균 또는 클렌징 용액에 미리 담근 거즈 패드를 사용하여 절개 부위에서 시작하여 원형 패턴으로 바깥쪽으로 확장하는 영역을 스크럽합니다. 다음으로 절개 선에서 수술장 주변으로 나선형으로 나선형으로 헹구는 액체를 동일한 원형 패턴으로 적용합니다. 클렌징 과 헹도 주기를 적어도 세 번 반복합니다. 마지막 헹구기 후에는 알코올이나 요오드로 젖은 멸균 거즈 패드를 수술장에 놓습니다. 거즈는 동물이 수송되고 수술 플랫폼에 배치하는 동안 제자리에 유지됩니다.

다음 단계는 동물을 배치하는 것입니다. 등대 절차의 경우 동물을 경향이 있는 위치에 놓습니다. 합자 나 테이프를 사용하여 플랫폼에 팔다리를 고정합니다. 주의하지 말아야한다 : 발에 순환을 타협, 사지에 과도한 긴장을 일으킬, 스트레칭을 통해 관절을 손상, 또는 동물의 호흡을 방해. 동물이 수술 플랫폼에 준비되고 배치되면 절개 부위를 덮고있는 거즈를 제거하고 이제 동물이 드레이핑 할 준비가되어 있습니다.

드레이핑은 무균 기술이므로 외과 의사는 멸균 장갑, 푹신한 모자, 수술 용 마스크, 깨끗한 실험실 코트 또는 멸균 수술 가운을 착용해야합니다. 커튼은 재사용 가능한 천 또는 일회용 종이 또는 플라스틱 접착제 재료로 만들 수 있습니다. 어떤 종류의 커튼은 결코 흔들리거나 흔들어서는 안됩니다. 비멸 지역, 장비 및 인력과의 접촉을 피하기 위해 신중하게 열어야 합니다. 드레이프가 미리 절단되지 않은 경우, 수술 부위를 적절하게 노출할 수 있을 만큼 충분히 크지만 면도되지 않고 준비되지 않은 신체 표면의 노출을 허용하기에는 그렇게 크지 않은 멸균 가위를 사용하여 개구부를 만들 수 있도록 충분히 전개됩니다.

다음으로, 드레이프를 동물 위에 놓고 환자를 만지지 않는 커튼의 측면에 손을 놓습니다. 그리고 마지막으로, 수술장이 개구부를 통해 볼 수 있도록 조정합니다. 이것은 1개의 외과 사이트에 전체 절차를 위한 멸균 필드를 유지할 수 있습니다. 접착제 창이 있는 종이 커튼을 사용하는 경우 먼저 접착제 영역에서 용지를 벗깁니다. 그런 다음, 커튼을 조심스럽게 펼치고 끈적 끈적한 면이 동물을 마주하고 있도록 돌려 수술 부위위에 놓습니다. 그런 다음 접착제를 외과 필드에 부드럽게 눌러 피부로 씰을 만듭니다.

준비 후, 다음 단계는 수술입니다. 그래서 외과 의사가 수술 후 염두에 두어야 할 몇 가지를 살펴 보자. 마취 하에 있는 동안, 동물은 완전히 복구될 때까지 체온, 호흡 및 심박수를 위해 감시되어야 합니다.

체온을 직접 모니터링하려면 설치류용으로 설계된 직장 프로브를 사용해야 합니다. 정상 범위는 97.5 ~ 100.4 ° F인 35.3 ~ 38 ° C입니다. 이것은 정확한 체온을 제공하지 않지만, 열원의 효과를 나타내고 필요에 따라 열을 줄이거나 증가시키는 조정을 허용할 수 있습니다.

한편, 절차 전반에 걸쳐 심박수, 호흡 및 꼬리의 색상을 시각적으로 모니터링합니다. 때때로, 추가 감시는 마취와 수술 도중 설치류의 심장 상태를 평가하는 심전도그램의 사용을 통해 행해질 수 있습니다.

수술 후, 동물은 난방 패드 위에 부분적으로 배치 복구 케이지로 반환해야하고 음식은 쉽게 접근 할 수 있도록해야한다. 열 패드의 부분 배치는 동물이 의식을 되찾은 후 열원에서 벗어날 수 있게 합니다. 또한, 선제적 및 수술 후 진통제는 가능하면 제공되어야 합니다. 권장 진통제 목록, 복용량, 경로 및 투여 빈도에 대한 표 1을 참조하십시오.

이제 고려 사항에 정통해졌으니, 생물의학 연구자들이 수행한 생존 수술 중 일부를 살펴보겠습니다.

살아있는 동물의 뇌를 조작하기 위해 과학자들은 종종 "스테레오 테틱 프레임"이라는 특수 장비를 사용하여 스테레오 탁스 수술을 수행합니다. 이 도구와 3차원 좌표 시스템을 사용하여 특정 위치를 대상으로 뇌 활동을 측정하거나 병변을 유도하거나 유전자 조작을 수행할 수 있습니다.

과학자들은 또한 인간 장애의 동물 모델을 만들기 위해 수술을 수행합니다. 여기에서, 연구원은 허혈 유도조직 손상을 연구하기 위하여 "피부 플랩" 모형을 만들었습니다. 면도된 피부에 금속 창을 이식함으로써, 조사관은 며칠 동안 살아있는 동물에서 이 지역의 미세 순환을 시각화할 수 있었습니다. 또 다른 실험에서, 연구는 쥐의 대퇴골에 접시를 드릴링하여 뼈 결함을 유도하는 수술을 수행, 다음 X 선의 도움으로 생체 뼈 치유 과정에서 공부.

설치류 수술을 하기 전, 도중, 그리고 후에 염두에 두어야 한다는 고려 사항에 대해 JoVE의 비디오를 시청했습니다. 함께, 이러한 조치는 감염과 저체온증의 확률을 감소시키고, 동물에게 통증과 불편을 개량하는 데 도움이되며, 이는 성공적인 생존 수술의 확률을 증가시킬 것입니다. 언제나처럼, 시청주셔서 감사합니다!

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무균 기술의 사용을 통해, 수술 후 감염의 발생률은 크게 축소된다. 시술 중 조직 외상을 최소화하고, 저체온증을 예방하고, 수술 후 통증과 불편함을 조절하고, 동물이 정상적으로 암습할 수 있을 때까지 영양 보충제를 사용하면 수술 과정에 대한 부정적인 대사 반응의 정도를 모두 줄이고 성공적인 생존 수술의 가능성을 증가시니다.

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References

  1. Institute for the Laboratory Animal Research. 2011. Guide for the care and use of laboratory animals, 8th ed. Washington (DC): National Academies Press.
  2. Bernal, J., Baldwin, M., Gleason, T., Kuhlman, S., Moore. G., and Talcott, M. 2009. Guidelines for Rodent Survival Surgery. Journal of Investigative Surgery. 22. 445-451
  3. Brauer, A., Perl, T., Uyanik , Z., English, M.J.M. ,Weyland, W., and Braun, U. 2004. Perioperative thermal insulation: minimal clinically important differences? British Journal of Anaesthesia 92:6. 836-840
  4. Guidelines for Survival Rodent Surgery. http://oacu.od.nih.gov/ARAC/documents/Rodent_Surgery.pdf  Accessed 11/11/15
  5. Eakin, K., Rowe, R.K., and Lifshitz, J. 2015. Modeling Fluid Percussion Injury
    Relevance to Human Traumatic Brain Injury in Neurotrauma: Molecular, Neuropsychological, and Rehabilitation Aspects. Taylor & Francis Group, LLC.
  6. Rodent Anesthesia and Analgesia. The University of British Columbia. Retrieved from https://animalcare.ubc.ca/conducting-your-research/rodent-anesthesia-and-analgesia

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