外部環境と内部区画の間のゲートウェイとしてのボディの行為中の細胞の障壁。これは、胃腸(GI)管および血流1-3の外部露出面を分離する上皮層の場合である。携帯の障壁はまた、血流と実質および組織や臓器の細胞成分との間のインタフェースを表す。体内でこれらの細胞障壁を横断する能力は、治療薬および診断薬の効率的な送達のために重要である1これは、血液などの肺関門、血液脳関門のような血管内皮の内側ライニングの場合である循環へと介入が必要とされる組織/器官。
治療薬または診断薬の送達を改善するために、これらの化合物は、サブミクロンナノキャリア(NCS)にロードすることができる。これらの薬物送達ビヒクルは、様々な製剤化することができる薬物の溶解性、保護、薬物動態、リリース、および代謝4,5を最適化するための化学的性質と構造。 NCはまた、治療上の処置が必要とされる2,6身体の領域への接着を容易にするために、親和性またはターゲティング部分( 例えば、抗体、ペプチド、糖、アプタマーなど )で官能基化することができる。携帯障壁の表面に発現決定にNCの標的化は、さらに2,6におよび/ またはこれらのライニングを横切る輸送を容易にすることができる。
選択的に2環境の間の物質の輸送の役割は、細胞層の中で、特定のユニークな機能を必要とします。一つのこのような特徴は、キャビティの内腔に面する頂端膜は、膜の形態および脂質、トランスポーター、および受容体2の組成物に関して、組織の間質に向かって配向基底膜まで変化することにより、細胞極性である。もう一つの特徴は、細胞間を必要とするjunctio隣接するセル間を接続NS。タイトジャンクションを形成するタンパク質の制御、特に接合部接着分子(JAM)、オクルディン、およびクローディン、選択的傍細胞輸送として知られている細胞、間の物質の輸送を可能にするかどうバリア機能を調節し、内腔から材料の許可通過に基底外側のスペース3。体内の細胞の障壁に多くの天然および合成の要素(白血球、分子、粒子、および薬物送達システム)の結合はのアクセスの危険なので、一過性で比較的無害またはより長期であってもよい細胞ジャンクションの開口を誘導することができバリア2,5,7-9全体の不要物。したがって、この経路は、アミンの電流または増加傍漏れに対する抵抗を減少することにより、経上皮電気抵抗(TEER)及び(本明細書傍漏れと呼ばれる)分子の受動傍細胞拡散を測定することによって評価することができる基底外側空間にRT化合物は、それぞれ5,10,11、細胞間結合の開放を示している。染色はすべての細胞周辺5,10,12の周囲に細胞-細胞境界に集中して表示される場所、これらの方法を補完するために、上記のタイトジャンクションタンパク質のいずれかは、それらの完全性を評価するために染色することができる。
あるいは、クラスリン被覆ピットやカベオラと呼ばフラスコ状の膜陥入に関連するものなどの特定の細胞表面決定基を標的とする薬物送達システムは、細胞内区画5への薬物送達のための道を提供し、エンドサイトーシスによって細胞に小胞の取り込みをトリガすることができる13。また、エンドサイトーシスは、側底側のリリースのために細胞体全体に小胞の人身売買にtransyctosis、または経細胞輸送14と呼ばれる現象を引き起こすことがあります。そのため、エンドサイトーシスの動態とメカニズムについての知識は、細胞内のAを活用するために用いることができる傍細胞経路に比べて納期の比較的安全かつ制御モードを提供していますND経薬物送達、。エンドサイトーシスの機構は、古典的経路の調節因子(クラスリンとカベオリン媒介エンドサイトーシス、およびマクロピノ)または(例えば、細胞接着分子(CAM)を介したエンドサイトーシスの場合のような)非古典的ルートに評価することができる5,13,15 。
細胞内輸送は、多くの場合、標準的なウェルまたはカバースリップで研究されているのに対し、基底外側コンパートメントの不在は、細胞極性と細胞層を横断する輸送を研究する能力を妨げる。この障害を克服するために、細胞単層を横切る輸送は、長いトランスウェルの上部(頂端)チャンバ、細胞が付着し、タイトな単層を形成する多孔性透過膜で構成され、10,11,16,17が挿入され、下部用いて研究されている(基底外側)室( 図1)。この構成では、輸送は、で測定することができる上部チャンバーに処置を施す細胞単層とその下の多孔質膜を通って輸送を次の、そして最終的に輸送され、材料の定量化のための下部チャンバー内の媒体を収集することにより、頂端から側底方向。側底から頂端方向への輸送は、上部チャンバー5,10,12,16から下室とその後のコレクションに最初の投与によって測定することができる。上記のように様々な技術が、TEERおよび傍細胞輸送アッセイを含む、トランスウェル上で透過障壁の形成を確認するために存在する。また、細胞が培養された通気フィルタは、さらに、細胞単層モデルの検証ならびに輸送のメカニズムとして、(蛍光、共焦点顕微鏡、電子顕微鏡法により)イメージング分析のために除去することができる。異なる孔サイズ、材料、および表面エリアで利用可能である膜型の選択は、種々のファクトに依存する例えば、輸送される物質または物体の大きさ、細胞型、及び撮像方法としてrsを16,18-20。トランスウェルインサートはまた、チャンバーおよび細胞表面領域のボリュームは既知の定数であり、哺乳動物のような複雑なシステムと比較して、輸送の制御された正確な定量化を容易にする。 in vivo送達に関与する多くの要因が、腸の粘液の存在を含む、せん断応力、消化酵素、免疫細胞などを排除しているが、 インビトロモデルでのこの小さな規模は、輸送に関する有用な予備情報を提供しています。
携帯障壁10,11,16,17間でのNCの輸送を研究するため、これらの方法の適応を説明するための例として、ここでは消化管上皮を通過するのNC輸送の可能性は、モデル薬物送達の通過を評価することによりモデル化した場合について説明ヒト上皮結腸直腸腺癌(のCaco-2)細胞の単層を介してシステム。この目的のためにあり、cのエルは透明であり、顕微鏡イメージングのために使用することができる0.8μmの細孔ポリエチレンテレフタレート(PET)フィルター(6.4ミリメートル直径)上で、トランスウェルインサートで培養した。透過障壁の状態がTEER、コントロール物質、アルブミン、タイトジャンクションの元素の蛍光顕微鏡可視化、オクルディンタンパク質の頂端から側底輸送を測定することによって検証される。標的ポリマーNCのモデルを100nm、非生分解性ポリスチレンナノ粒子からなる、使用される。 NCは、表面だけでは標的とする抗体との吸着または標的とする抗体の組み合わせの成分のいずれかが放射性同位元素のトレースのための125 Iで標識することができる治療貨物によってコーティングされている。選択された例では、抗体は、細胞間接着分子-1(ICAM-1)を認識し、タンパク質が細胞内および経細胞輸送oをを促進することが示されているGI上皮(および他の)細胞の表面上に発現 F薬物担体とその貨物21。カーゴは、α-ガラクトシダーゼ(α-ガラクトシダーゼ)、ファブリー病、遺伝リソソーム貯蔵障害22の治療のために使用治療用酵素である。
サイズが約200nmのコーティングされたNCのは、上のNC 125 Iは、細胞単層に関連するおよび/ または検出することができ、その後、細胞単層上に先端チャンバーに添加し、そして様々な時間にわたって37℃でインキュベートし細胞下の側底室に搬送される。無料の125 Iの追加の決定は、コーティングされたNC輸送の劣化した分と推定の減算を可能にする。経細胞輸送は、エンドサイトーシスおよびトランスサイトーシスの経路を調節する際の輸送の変化を調べることによって決定される輸送の機構はさらに、上述のパラメータを介して、傍細胞経路に関連する透過障壁の変化を調べることにより評価される。
ontent ">これらの方法は、完全に細胞の障壁を横切る薬物送達のための潜在性の評価を可能にする、貴重なセルラバリア·モデルに関する情報、薬物送達システムの輸送の程度と速度、およびそのような輸送の機構を提供する。この手順の全体的な目的は、薬物輸送システムまたは治療剤の輸送能を評価することです。これは、経口薬物輸送に関連する胃腸上皮モデルなどの細胞バリアを通過して行われます。まず、Transwellインサート上でCaco-2細胞を培養し、細胞の分化と細胞単層の形成を促すことでこれを達成します。
第2段階では、経上皮電気抵抗の測定、細胞接合部の免疫染色、および検出可能なトレーサー分子の受動的透過性の評価を行い、このモデルが透過性バリアを形成していることを検証します。次の段階では、薬物輸送システムを調製します。本例では、標的性ポリマーナノキャリアを使用しています。キャリアに薬物を封入してもしなくても構いませんが、非標的性キャリアや遊離薬物などのコントロールを含める必要があります。
これらの成分は、検出を可能にするために放射性同位体で標識されています。インキュベーション後、キャリアを細胞単層上のアピカルチャンバーに添加します。異なるタイムポイントにおいて、アピカルチャンバー、バゾラテラルチャンバー、および細胞単層からキャリアを回収し、標識成分の分解の有無を試験します。
最後に、輸送メカニズムを調査するために、細胞単層を通過するナノキャリアの輸送量を算出します。同様の実験を、細胞を横切るトランスサイトーシス(細胞透過輸送)の薬理学的阻害剤の存在下で、あるいは細胞間のパラセルラー輸送(細胞間隙輸送)のレポーターを用いて実施する必要があります。ここで述べる手法は、体内の細胞バリアを模した培養細胞単層における、薬剤および薬剤ナノキャリアの輸送速度とメカニズムを評価するために用いられる、確立された手法を応用したものです。
ここでは、標的化ポリマーナノ粒子の胃腸上皮モデルを介した輸送の検証に焦点を当てましたが、同様の手法を、これらの細胞単層や、血流と組織・器官の間のバリアを通常形成する血管内皮細胞などの異なる細胞単層を通過する、さまざまなドラッグデリバリーシステムの検討に適用することも可能です。例えば、血液脳関門の場合などが挙げられます。一般的に、この手法に不慣れな方は、特に細胞を介して少量が輸送される場合に、ドラッグデリバリーシステムを適切に追跡するためのラベル選択に苦労することがあります。
この点に関しては、研究において薬剤輸送システムの標識に放射性同位体を用いますが、もう一つの重要な懸念事項は、モデル細胞バリアの完全性を検証し、実験を通じて適切なコントロールを用いてこれを検証することです。この手順は、バイオセーフティレベル2の滅菌済み細胞培養フード内で行い、フードに入れるすべての材料はエタノールで滅菌する必要があります。統計的に有意な結果を得るため、ピンセットを用いて0.8 µmのポリエチレンテレフタレート製トランスウェルインサートを24ウェルプレートに配置します。
各実験条件につき、最低4