減数分裂は、配偶子(卵母細胞および精子)で発生する独特の分割処理であり、それぞれ1、減数分裂Iと減数分裂IIの間に相同染色体と姉妹染色分体を分離するためにDNA合成を介在せずに2つの連続した部門が関与します。卵母細胞における減数分裂時の染色体分離におけるエラーは受精胚中に継承され異数性をもたらすことができます。特に、発展途上胚における異数性の発生率は、母体の加齢に伴って増加し、女性1,2における妊娠損失だけでなく、先天性の先天性欠損症の主な原因である、したがって、減数分裂時の異数性の分子基盤を理解するための重要な必要性を強調。

細胞分裂の間、染色体分離は反対スピンドルへの正しい取り付けのための微小管スピンドル装置と安定した染色体微小管の相互作用の確立の組み立てに決定的に依存していますポール。重要なことは、哺乳動物の卵母細胞における減数分裂紡錘体の形成は、体細胞での有糸分裂とは異なり、中心小体3,4を欠いているユニークな微小管組織化センター(MTOCs)によって規制されています。微小管の核形成と組織のために必要不可欠なタンパク質は、微小管集合を触媒するγチューブリンを含む卵母細胞MTOCs、に局在します。また、MTOCs 5でバインド必須の足場タンパク質として機能し、アンカーγチューブリン、ならびにその他の要因ペリセントリン。注目すべきことに、我々の研究は、キーMTOC関連タンパク質の枯渇が減数分裂紡錘体の組織を破壊し、完全に紡錘体チェックポイント(SAC)6,7によって解決されていない卵母細胞における染色体分離のエラーにつながることを示しています。したがって、減数分裂の停止を誘発しないスピンドル安定性の欠陥は、異数性に貢献において重要なリスクをもたらします。スピンドルアセンブリと組織内での重要な役割、卵母細胞MTOC protのにもかかわらず、EIN組成と機能が十分に理解されたままになります。

細胞が減数分裂まもなく8,9の再開前に、転写的に静止してしまうなどの哺乳動物の卵母細胞に特異的な標的タンパク質の機能をテストすることは、困難です。したがって、排卵前の卵母細胞が減数分裂を再開し、受精10,11の後に減数分裂と同様に最初の切断部門をサポートするために母性mRNAの店に依存しています。哺乳動物の卵母細胞中のmRNA転写物のRNA干渉(RNAi)介在性分解の有効性は、十分に確立され、減数分裂成熟の間の翻訳のために募集母性RNAは、siRNAが12-14を標的に特に適しています。したがって、卵母細胞への短い干渉RNA(siRNA)のマイクロインジェクションは、機能テストのために標的mRNAを枯渇させる貴重なアプローチを提供します。

ここでは、マウス卵母細胞及び特定transcriのsiRNA媒介枯渇を単離するための方法を記載PTSはペリセントリン、本質的​​なMTOC関連タンパク質の機能をテストします。加えて、我々は、卵母細胞における減数分裂紡錘体形成を評価するために免疫蛍光分析条件を記述する。

本手順の全体的な目的は、perrinなどの主要なMTOC関連タンパク質をirnaによって枯渇させた後の、Cytesにおける紡錘体の形成と組織化を評価することです。この手法は、染色体分離を調節するメカニズムや、あらゆる部位で異数性を引き起こす潜在的な分断など、生殖生物学分野における重要な疑問への回答に役立ちます。この技術の主な利点は、個々のcytesに対して効率的な転写物ノックダウンおよび特異的な免疫蛍光分析が可能になることです。

この手順は、ほぼあらゆる標的タンパク質の研究に適応させることが可能です。卵子採取日の48時間前に、採取に使用する雌マウスに5 international unitsのPMSGを腹腔内注射します。標準的な手法で卵巣を採取した後、BSAとmil reoneを添加し、あらかじめ加温して平衡化したMEM培地を入れたディッシュに移し、解剖顕微鏡下で卵子を分離する準備をします。27ゲージの針を用いて卵巣を培養皿の底に固定し、別の針で卵胞腔を穿刺して、卵子吸引または標準的なマウスピペッティング法により、卵丘細胞・卵子複合体(COC)を回収します。

2層以上の緻密なキュムルス細胞に囲まれた卵母細胞を回収します。これらのCOCをM-E-M-B-S-A mild reoneを入れた新しいディッシュに移し、37 °Cで1時間インキュベートします。その後、標準的な方法に従って卵母細胞の除細胞(denuding)を行います。

3 mLのM2培地に1 µg/mLのmiloneを加えたものを注入用培養皿に準備します。また、洗浄用および培養用の皿にMEM BSA miloneを準備します。次に、1 mMのINA溶液 5 µLを注入針に充填し、マイクロインジェクションの準備を整えます。

次に、3 cmディッシュの蓋の上にM2培地を100 µL滴下します。そこに卵母細胞を1個導入し、ホールディングピペットの位置を調整します。陰圧を用いて卵母細胞をホールディングピペットに吸着させ、OAS部位を固定します。

次に、注入針の位置を卵母細胞の最も直径が大きい部分に合わせます。位置が決まったら、核を避けて卵母細胞の細胞質に約10 picolitersの溶液を注入します。実体顕微鏡のステージに蓋を戻し、100 microlitersの新鮮なM two培地を加えます。

約10個の卵細胞を培地に置きます。その後、マイクロインジェクションステージにて、マイクロインジェクションを行います。ホールディングピペットで各卵細胞を固定し、注入針を細胞質にゆっくりと挿入します。

S irna溶液を注入し、注入用ピペットを慎重に回収します。注入に成功した細胞を液滴の一端へ、注入に失敗した細胞を反対側の端へと移動させます。細胞の生存率を維持するため、10個の細胞への注入を数分以内に完了させることが重要です。

蓋を実体