Cancer Research
This content is Open Access.
The JoVE video player is compatible with HTML5 and Adobe Flash. Older browsers that do not support HTML5 and the H.264 video codec will still use a Flash-based video player. We recommend downloading the newest version of Flash here, but we support all versions 10 and above.
If that doesn't help, please let us know.
Isolering og karakterisering af tumor initierende celler fra sarkom patient afledte Xenografts
Chapters
Summary June 13th, 2019
Please note that all translations are automatically generated.
Click here for the English version.
Vi beskriver en detaljeret protokol for isolering af tumor initierende celler fra humane sarkom patient-afledte xenografter ved fluorescens-aktiveret celle sortering, ved hjælp af humant leukocytantigen-1 (HLA-1) som en negativ markør, og for yderligere validering og karakterisering af disse HLA-1-negative tumor-initierende celler.
Transcript
Vi opdagede, at HLA-I er epigenetisk ned reguleret i en delpopulation af kræftceller, der udviser stamcelleegenskaber og tumor-initierende kapacitet. HLA-I downregulation er direkte relateret til immun flugt, giver overlevelse fordele for kræft stamceller, hvilket gør HLA-I negativitet en nøjagtig funktionel markør for disse celler. Demonstration af proceduren vil være Sudeh Izadmehr, en postdoc fra vores laboratorium.
Ved erhvervelse af prøven anbringes vævet i en 100-millimeter petriskål i et steriliseret biosikkerhedsskab, og der tilsættes 500 mikroliter steril PBS til skålen. Brug en steril skalpel til mekanisk triturate vævet i små stykker, indtil ingen fragment er større end 0,1 millimeter. Hele PBS' 500 mikrolitervolumen overføres gennem en porecelles si på 35 mikrometer i et konisk rør med 50 milliliter.
Tilføj yderligere 500 mikroliter af PBS til vævsfragmenterne, og hak vævene igen. Derefter filtreres supernatanten gennem cellestemnet i samme opsamlingsrør, og vævestykkerne skal fortsættes, indtil prøven er helt dissocieret. Når den sidste mængde celler er blevet indsamlet, spin ned tumorceller ved centrifugering, og re-suspendere pellet i fem milliliter hæmolyse buffer.
Efter fem minutter ved stuetemperatur indsamles cellerne med en anden centrifugering, og pellet med yderligere fem milliliter PBS. Re-suspendere pellet i en milliliter PBS, og tælle de levedygtige celler. Cellerne fortyndes til en gange 10 til de syvende celler pr. 200 mikroliter PBS-koncentration på is, og der tilsættes 200 mikroliter kældermembranmatrix til cellerne med skånsom blanding.
Derefter injicere celle suspension-kælder membran matrix subkutant ind i flanken af en NOD scid gamma mus, og kontrollere væksten af tumoren på injektionsstedet to gange om ugen. Når tumoren når en centimeter i diameter, skæres tumoren i halve, og fastsætte halvdelen af xenograft med 4% paraformaldehyd natten over for histologisk analyse. Betjen anden halvdel af tumoren som netop vist at opnå en enkelt celle suspension, og fortynde cellerne til en to gange 10 til de seks celler pr milliliter PBS suppleret med 5% FBS koncentration.
Cellerne fastholdes på is i 30 minutter, før cellesuspensionen dividere en isotypekontrol og et antistofrør. Bemærk antallet af celler i hvert rør, og bland cellerne i antistofrøret med anti-HLA-antistof og cellerne i isotypekontrolrøret med et passende antiisotypekontrolantistof i en 90-minutters inkubation på is. Ved inkubationens afslutning opsamres begge cellepopulationer ved centrifugering efterfulgt af to 10-milliliter PBS vasker ved centrifugering.
Efter den anden vask suspenderes pellets igen i 10 mikrogram pr. milliliter DAPI til en gang 10 til de syv celler pr. milliliterkoncentration. Filtrer derefter hver celle suspension gennem en 35-mikrometer pore si i individuelle 12-by-75-millimeter polystyren rør. Efter fluorescensaktiv cellesortering fortyndes HLA-I-negative og positive cellepopulationer til individuelle en gange 10 til femte cellekoncentrationer i 15 milliliter af sarcosphere vækstmedium pr. delmængde.
Serielt fortyndes cellerne til en gange 10 til den fjerde, 10 til den tredje og 10 til den anden koncentration i 15 milliliter frisk sarcosphere vækstmedium pr. fortynding, og tilsæt 100 mikroliter celler fra hver fortynding til hver brønd af en 96-brønd ultra-lav vedhæftet filcellekulturplade per fortynding. Placer pladerne i en 37-graders Celsius, 5% kuldioxid cellekultur inkubator, overvågning af sarcosphere dannelse dagligt ved lys mikroskopi og tilføje friske grundlæggende fibroblast vækstfaktor og epidermal vækstfaktor til hver brønd uden at ændre mediet hver tredje dag. Efter tre uger tælles antallet af sarcosphere-positive og sarcosphere-negative brønde for hver cellefortynding af både HLA-I-negative og HLA-I-positive celler for at muliggøre beregning af den kugledannende cellefrekvens baseret på en Poisson-sandsynlighedsfordeling.
Typisk, human patient-afledt sarkom xenografts består af to forskellige HLA-I-positive og negative populationer, med en lignende histologi til, at påvist af forældrenes primære tumor. Fluorescens-aktiveret cellesortering af sarkom patient-afledte xenograft tumor-initierende celler som påvist letter berigelsen af et stort antal HLA-I-negative celler fra forældrenes cellepopulation. HLA-I-negative celler er i stand til at danne kugler med en indledende input af så lidt som 10 celler og udviser en højere tumordannelse evne end HLA-I-positive sarkom patient ankom xenograft tumor-initierende celler.
Injektion af det samme antal HLA-I negative og positive celler subkutanely i modsatrettede flanker af samme mus viser, at HLA-I-negative celler besidder en betydeligt højere tumordannelse evne. Mens xenografts dannet af både HLA-I negative og positive delpopulationer er cellulært heterogene tumorer. Endvidere, genekspression analyse af tumor-initierende celler afslører, at HLA-I-negative celler udtrykke stamceller differentiering markører og kan induceres til at differentiere langs både lipogenic og osteogenic veje, demonstrere stærk Olie-Red-O og Alizarin-Red-S farvning og kultur.
Denne metode kan bruges til at isolere kræft stamceller i forskellige menneskelige kræftformer. Molekylær karbonisering, for eksempel ved næste generation sekventering kan afsløre fælles markører for målretning af cellerne terapeutisk. Vores opdagelse viser, at restaureringen af HLA-I er et afgørende skridt for succes en funktionel enhed immuncelleforstørrelse strategier.
Related Videos
You might already have access to this content!
Please enter your Institution or Company email below to check.
has access to
Please create a free JoVE account to get access
Login to access JoVE
Please login to your JoVE account to get access
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Please enter your email address so we may send you a link to reset your password.
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Your JoVE Unlimited Free Trial
Fill the form to request your free trial.
We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.
If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.
Thank You!
A JoVE representative will be in touch with you shortly.
Thank You!
You have already requested a trial and a JoVE representative will be in touch with you shortly. If you need immediate assistance, please email us at subscriptions@jove.com.
Thank You!
Please enjoy a free 2-hour trial. In order to begin, please login.
Thank You!
You have unlocked a 2-hour free trial now. All JoVE videos and articles can be accessed for free.
To get started, a verification email has been sent to email@institution.com. Please follow the link in the email to activate your free trial account. If you do not see the message in your inbox, please check your "Spam" folder.