2 차원 세포 배양은 암 연구에서 널리 이용 된다, 비록 제한 영양분과 산소의 동일한 농도로 단층 형태로 재배 되 고 세포 존재 합니다. 이러한 문화는 중요 한 셀 부족과 상호 작용 세포-매트릭스 네이티브 종양 microenvironment (TME)에 제시. 따라서, 이러한 모델 제대로 탈 셀 동작, 등 부자연 스러운 형태학, 불규칙 한 수용 체 조직, 막 분극, 다른 비정상적인 유전자 발현의 결과로 생리 조건 정리 조건1,2,,34. 다른 한편으로, 3 차원 세포 배양, 어디 집계, spheroids, 또는 organoids로 체적 공간에서 세포를 확장 수 더 정확한 생체 외에서 근본적인 세포 생물학과 생리학을 공부 하는 대안 기술을 제공 합니다. 3D 세포 배양 모델 수 또한 네이티브 TME 생체 외에서1,,45의 중요 한 생리 적 특성은 세포-ECM 상호 작용을 격려 한다. 신흥 3D bioprinting 기술은 이기종 TME를 모방 하는 모델을 만들 가능성을 제공 합니다.

3D bioprinting 신속한 프로토 타입에서 파생 되 고 생활의 복잡 한의 일부를 흉내 낸 수 있는 3 차원 마이크로 구조 제조 조직 샘플6,7. 현재 bioprinting 방법 등 잉크젯, 압출 성형, 레이저를 이용한 인쇄8. 그 중, 압출 메서드는 정확 하 게 다른 초기 위치에서 다른 유형의 자료를 배치 하 여 인쇄 된 매트릭스 내에서 제어 하려면이 수 있습니다. 따라서, 모델 유형이 다른 시험관에 관련 된 여러 종류의 셀 이나 행렬 조작 하 가장 좋은 접근 이다. 압출 bioprinting는 성공적으로 구축 하는 귀의 모양된 건설 기계9, 혈관 구조10,,1112, 및 조직13, 높은 인쇄 충실도 셀에 결과 피부 사용 되었습니다. 생존 능력입니다. 기술 또한 다양 한 소재 선택, 알려진된 밀도와 높은 재현성14,,1516,17 포함 하는 셀 자료를 예금 하는 능력을 갖추고 . 천연 및 합성 hydrogels 자주 그들의 생체 적합성, bioactivity, 및 그들의 친수성 네트워크 ECM7,18 를 구조적으로 설계 될 수 있다 3D bioprinting bioinks로 사용 된다 19,20,21,,2223. 이후 그들은 셀, 구조 요소, 영양소 및 가스, 침투성 접착 사이트를 포함할 수 있습니다 및 장려 하기 위해 적절 한 기계적 속성 셀 개발24Hydrogels 유리한도 있습니다. 예를 들어, 콜라겐 hydrogels 세포를 연결 하는 데 사용할 수 있는 앵커리지 사이트 integrin를 제공 합니다. 젤라틴, 변성된 콜라겐, 유사한 세포 접착 사이트를 유지합니다. 반면, alginate bioinert 이지만 divalent 이온25,26,,2728와 crosslinks를 형성 하 여 기계적 무결성을 제공 합니다.

이 작품에서는, 우리는 bioink, alginate과 젤라틴, 네이티브 종양 stroma의 미세한 구조 유사성으로 이루어진 복합 하이드로 겔 개발. 유방암 세포 및 섬유 아 세포는 hydrogels에 포함 했다 그리고 vivo에서 microenvironment을 모방 하는 3D 모델을 만드는 입체 기반 bioprinter 통해 인쇄. 설계 된 3D 환경 세포 배양 (> 30 일)의 오랜 기간 동안 높은 생존 능력으로 다세포 종양 spheroids (MCTS)를 암 세포 수 있습니다. 이 프로토콜에서는 복합 hydrogels 합성, 재료의 미세 및 전이성, bioprinting 세포 유형이 다른 모델, 특성화 고 MCTS 형성 관찰의 방법론을 보여 줍니다. 이러한 방법론은 약물 검사, 셀 마이그레이션 분석 실험, 및 기본적인 셀에 집중 하는 연구에서 잠재적인 응용 프로그램 뿐만 아니라 다른 유형의 조직 모델의 다른 디자인으로 압출 bioprinting에 다른 bioinks에 적용 될 수 있습니다. 생리 적 기능입니다.

이 방법은 종양 형성, 세포 이동 추적, 암 및 건강한 세포 신호와 같은 암 생물학 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 가장 큰 장점은 섬유아세포와 같은 기질 세포와 함께 3D 환경에서 저비용과 높은 재현성으로 종양 형성을 연구할 수 있다는 것입니다. 재료가 생물 인쇄가 가능하고 생체 기능적인지 확인하는 것이 중요하며, 이를 위해서는 유변학적 특성과 세포 호환성에 대한 정량적 연구가 필요합니다.

하이드로겔 준비 및 셀 하이드로겔 혼합 단계는 기포 형성이 인쇄된 모델의 충실도를 방해하기 때문에 배우기 어렵기 때문에 이 방법을 시각적으로 시연하는 것이 중요합니다. 생물 안전 캐비닛에서 250ml 비커에 알긴산 3g과 젤라틴 분말 7g을 섞습니다. 자석 교반기와 100ml의 DPBS를 추가합니다.

오염을 방지하기 위해 비커를 멸균 파라핀 필름과 알루미늄 호일로 밀봉하십시오. 그런 다음 참가자에게 근전도 또는 EMG 패턴에 해당하는 독특하고 구체적인 극성 플롯을 보여줍니다. 그 후, 실온에서 2 시간 동안 교반을 계속하십시오.

겔이 액체 상태로 상전이를 거칠 때까지 용액을 섭씨 37도에서 가열합니다. 그런 다음 용액을 멸균 50ml 원추형 원심분리기 튜브에 옮기고 밀봉합니다. 가스 기포를 제거하기 위해 834회 g에서 5분 동안 튜브를 원심분리하십시오.

다음으로, 하이드로겔 전구체를 10ml 주사기로 흡인합니다. 캡과 파라핀 필름으로 주사기를 밀봉합니다. 사용할 준비가 될 때까지 섭씨 4도에서 보관하십시오.

테스트를 시작할 준비가 되면 준비된 하이드로겔 전구체의 주사기를 섭씨 37도의 수조에 1시간 동안 놓습니다. 주사기가 예열되는 동안 레오미터를 켜고 초기화합니다. 한 시간 후 수조에서 주사기를 제거합니다.

약 0.5 ml의 프리케이터를 레오미터 플랫폼으로 압출합니다. 제어판에서 아래쪽 삼각형 버튼을 클릭합니다. 측정 도구가 트리밍 위치로 내려갈 때까지 기다립니다.

주걱을 사용하여 측정 도구의 가장자리에서 벗어난 과도한 전구체를 제거하고 불필요한 물질을 버립니다. 그런 다음 측정 도구의 가장자리에 미네랄 오일을 피펫으로 넣습니다. 오일이 경계를 완전히 밀봉할 때까지 기다립니다.

제어판에서 Continue(계속)를 클릭합니다. 그런 다음 시작 버튼을 클릭합니다. 테스트가 완료되면 측정 도구에서 손을 떼고 위쪽 삼각형 버튼을 클릭합니다.

측정 도구를 제거하십시오. 측정 도구와 플랫폼을 모두 70% 에탄올로