До недавнего времени, жировой ткани был задуман как аморфный коллекции жировых клеток. За последние несколько десятилетий наше понимание выросло более сложные, с жиром, теперь признается сложный орган, содержащих различные типы адипоциты, а также Адипоцит прекурсоров, иммунных клеток, фибробластов, сосудистую и нерва прогнозы. Взаимодействие между эти клетки жировой резидентов произнесли воздействие на научные физиологии и патофизиологии1и жировой ткани. Хотя новые исследования разгадана важные молекулярные механизмы, лежащие в основе некоторых взаимодействия, более полное понимание требует надежных структурных профилирования всей ткани в трех измерениях (3D).

Наши текущие знания о морфологии жировой ткани во многом основывается на гистологический анализ тонких секций (5 мкм) с относительно высокого увеличения изображений (более чем 10 X)2,3. Однако этот подход имеет несколько существенных ограничений. Во-первых, замысловатые нитевидные структуры, такие как симпатические нервы и сосудистую, которые, как известно, играют важную роль в жировой функция4,5,6,7, трудно оценить через тонкие разделы. Во-вторых благодаря его казалось бы аморфной форме и отсутствие представителей структурных подразделений сосредоточиться на, трудно оценить жировой ткани структуры, основанные только на раздел пятнать. В-третьих жировая ткань имеет содержание очень высоким липидов, создавая проблемы в получении последовательной серийный секций, которые подходят для 3D анатомические реконструкции, традиционным методом, используется для изучения морфологии весь мозг8. Учитывая эти факторы, существует большая потребность в целом гора подход, который может обеспечить 3D визуализация всего жировых депо по-прежнему достигая сотовой резолюции.

3D объемного изображения всего органа является сложной задачей вследствие сокрытия эффекта рассеивания света. Основным источником рассеяние света в биологических тканях происходит от липидов водный интерфейсов. Хотя усилия по ликвидации разброса, удалив липиды были постоянной для более века, было большое количество последних инноваций9. Один из таких недавно разработанный метод ткани очистка является immunolabeling с поддержкой 3D визуализации растворителя очищены органов (iDISCO / iDISCO +)10,11. Однако, жировой ткани представляет собой особую проблему, учитывая ее высокий уровень липидов и, следовательно, дополнительные изменения в iDISCO / iDISCO + протокола обязаны полностью извлечь липиды защищая ткани от разрушения. Измененный Протокол, которую мы разработали, теперь называется Adipo-ясно, работают на основе метанол/дихлорметан delipidation жировой ткани для достижения оптимальной транспарентности подходит для высокого разрешения объемных изображений12. Потому что delipidation шаг во многом утоляет эндогенно выразил флуоресцентные белки, например GFP и ППП, визуализации таких белков должна быть достигнута путем immunolabeling. В целом, это простой и надежный протокол могут быть применены для изучения тканевом уровне Организации клеток жировой резидент, трассировки линии Адипоцит прогениторных клеток и жировой морфогенеза во время разработки.

Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области биологии жировой ткани, например, как различные компоненты жировой ткани взаимодействуют во всей ткани. Основное преимущество этой методики заключается в том, что она полностью удаляет избыток липидов, хранящихся в жировой ткани, сохраняя при этом ее трехмерную архитектуру. В то время как этот метод может дать представление о трехмерной организации жировой ткани, он также может быть применен к другим тканям с высоким содержанием липидов, таким как железы памяти и лимфатические узлы.

Визуальная демонстрация этого метода имеет решающее значение, поскольку этапы делипидации и очистки требуют достаточного времени инкубации, которое может быть трудно определить. Начните с использования щипцов с тупым концом, чтобы препарировать интересующий вас жировой пакет от только что обработанной животной модели. Аккуратно удалите всю подушечку, не зажимая и не сдавливая ткань и не загрязняя рассеченную ткань мехом.

Поместите жировую подушку примерно в 10 миллилитров фиксирующего раствора в коническую трубку объемом 15 миллилитров и закрепите при температуре четыре градуса Цельсия на ночь. На следующий день после промывки образца PBS акку