对福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)肿瘤组织样本进行免疫谱型分析已成为肿瘤免疫学研究中的关键组成部分,尤其在临床试验背景下,用于发现和验证癌症免疫治疗的新型预测性生物标志物1,2。使用化学显色剂(如二氨基联苯胺)的显色免疫组化(IHC)仍是病理诊断中对活检组织进行免疫标记的标准技术3。标准IHC也可用于癌症组织的免疫谱型分析,包括定量分析肿瘤相关淋巴细胞亚群以及评估免疫检查点分子(如程序性细胞死亡配体1(PD-L1))的表达水平4,5。然而,标准IHC存在局限性,即每张组织切片只能标记一种抗原。由于免疫谱型研究通常需要分析多个标志物的联合表达情况,若使用标准IHC,则需对多张组织切片分别染色,每张切片仅染一种标志物,因此在分析核心针活检等小组织样本时会受到显著限制。此外,标准IHC方法在评估由不同细胞群体共表达的标志物时也存在局限,例如PD-L1等免疫检查点标志物常在肿瘤相关巨噬细胞和癌细胞中均有表达。这一局限性已在病理学家使用标准单重IHC对多种细胞类型表达的IHC标志物进行定量分析时被报道6。开发在同一组织切片上使用多种颜色显色剂的多重显色免疫组化技术,是对传统单重IHC方法的重要改进7,但其仍受限于仅能标记少数几个标志物,并且在准确评估同一细胞群体中相同亚细胞区域表达的标志物时面临重要的技术挑战。
上述关于临床样本中组织可获得性的注意事项,以及多重显色免疫组化(IHC)技术的局限性,促使人们需要开发更先进的多重检测方法,以用于基于荧光标记并结合成像系统的肿瘤免疫学研究,该系统能够有效分离同一张切片上多种荧光染料的信号。其中一种技术基于酪胺信号放大法(tyramide signal amplification, TSA),结合多光谱显微成像,实现高效的颜色分离8。一种市售的基于TSA的试剂盒采用了专为多光谱成像优化的荧光染料8(见材料表)。该系统的一个关键优势在于,其可兼容那些已用于常规显色IHC并经过验证和优化的未标记一抗9,10,11。这不仅加快了优化过程,还为引入新靶点的方案优化和抗体组合调整提供了灵活性。此外,多重免疫荧光(mIF)TSA方法可适配市售的自动化IHC染色系统,从而实现从单重显色IHC向mIF的顺利过渡。
本文介绍了一种基于自动化多重免疫荧光TSA染色并结合多光谱扫描仪成像的免疫肿瘤学研究用多重免疫荧光(mIF)检测方案。任何具备文中所述仪器设备和试剂的实验室用户均可对该方案进行适配与修改。该方案包含六种针对癌瘤免疫谱型分析的一抗组合:PD-L1、PD-1、CD68(泛巨噬细胞标记物)、CD8(细胞毒性T细胞)、Ki-67以及AE1/AE3(泛细胞角蛋白,作为上皮标记物用于识别癌瘤细胞)。近期一项研究报道了通过以显色免疫组化(IHC)作为标准参照,对人工操作的TSA多重免疫荧光方案进行优化的过程12. 本文介绍的改进方法采用了一种市售的七色TSA试剂盒,并在自动化染色仪中进行了优化,将染色时间从3–5天显著缩短至14小时,同时提高了染色结果的一致性。除本文提供的详细主实验方案外,还包含 补充材料 部分包括 "液滴控制" 方法,一种用于评估新mIF panel的附加质量控制流程,以及针对优化、故障排除和开发新多重panel的技术说明,以帮助实验室用户建立并优化定制mIF panel的mIF TSA方法。
该方案具有重要意义,因为多重免疫荧光方案的开发、优化与转移过程复杂且具有挑战性。对于许多实验室而言,获得一个经过优化的实验方案是极为宝贵的。多光谱免疫荧光技术使我们能够评估肿瘤内部及周围多种细胞类型的定位及其身份特征。
这是肿瘤免疫学研究中一种强大的信息组合。多重免疫荧光最具说服力的应用领域就是肿瘤免疫学。但在原位同时检测多种免疫细胞类型的能力,也可广泛应用于所有自身免疫性和炎症性疾病的治疗研究中。
了解免疫细胞在实体细胞内部及其周围的位置和表型,对于预测肿瘤特异性免疫治疗的预后和治疗反应具有重要意义。方案的优化与验证是关键步骤,不应仓促进行。新使用者应熟悉与多光谱成像相关的新型人工假象。
为了找到基础的多重染色方案,请先将其加载到自动染色仪上。在方案界面中,将筛选条件设置为显示“全部”而非“首选”。在进行修改前,先保存原始方案,然后点击“方案”标签页,右键单击 Opal 6 Multiplex 并选择“复制”。
在新窗口中将名称更改为“7 多重检测方案 1”,并选择与正确设备关联的选项卡。参照补充表 S1 中的方案,点击“添加试剂”以加入一个持续十分钟的过氧化物酶抑制步骤,并选择过氧化物酶抑制剂作为试剂。确认封闭步骤使用的是蛋白激酶抑制剂封闭缓冲液,每一步一抗对应正确的试剂,二抗步骤使用辣根过氧化物酶聚合物,且使用多光谱自动化试剂盒中提供的光谱DAPI。
确保该实验方案包含过氧化物酶抑制剂,随后进行六轮连续染色,每轮依次包含蛋白封闭步骤、一抗、二抗、酪胺信号放大(Tyramide)染色,然后进行抗原修复以去除抗体。为添加滴加对照,复制“7重多重染色方案1”的名称,并将其更改为“7重多重染色方案1 CD68滴加对照”。将CD68抗体试剂更改为小鼠IgG,然后保存该方案。
然后,再创建六个新的实验方案,分别为每个滴定对照以及完整的同型对照,创建方法与上述相同。针对每个靶标,均按照此处演示的方法建立滴定对照方案。为准备多重检测研究试剂盒,请将标记为1X Tris缓冲盐水的30毫升敞口容器中装入1X Tris缓冲盐水,并将该容器放置于多重研究试剂盒1中距离手柄最远的位置。
取两个30毫升的敞口容器,分别标记为“多光谱封闭液”和“多光谱二抗”,从多光谱染色试剂盒中取30毫升封闭缓冲液抗体稀释液加入多光谱封闭液容器中。从多光谱染色试剂盒中取30毫升抗小鼠抗兔二抗聚合物加入多光谱二抗容器中,并向十个7毫升的敞口容器中各加入600微升抗体稀释液。接着,根据表格中指示的体积,将浓缩的一抗加入相应的试管中,并通过轻柔吹打混匀。
向一个7毫升的敞口容器中加入3毫升双蒸水和12滴光谱级DAPI,向另一个7毫升的敞口容器中加入3毫升过氧化物酶阻断液。用75微升二甲基亚砜重悬每种冻干粉,并通过移液混匀。然后,将酪胺信号放大(Tyramide signal amplification)储备液储存于4摄