全球范围内,湿地估计含有529 Pg的碳(C),主要以有机碳的形式埋藏于泥炭沉积物中1目前,这类泥炭地作为净碳汇,每年封存29 Tg C-1 仅在北美地区1然而,环境扰动(如排水、火灾、干旱和温度升高)会通过加速有机质分解,导致碳损失增加,从而抵消这一碳汇效应。 通过 温室气体(二氧化碳 [CO2] 和甲烷 [CH4]) 的生成1,2气候变化可能导致碳流失,如果温度升高或气候变干会促进微生物对碳的分解速率。或者,温度升高和大气CO₂浓度增加可能通过增强植物生长而增加碳输入,从而部分抵消碳分解的增加。2 浓度可能促进初级生产,从而固定更多的CO2 为有机碳(OC)。该有机碳被分解为CO的程度和速率如何2 和 CH4 取决于电子供体底物、电子受体的可利用性以及介导转化过程的微生物之间的复杂相互作用。在许多情况下,这些机制尚未被充分表征,因此它们对环境扰动的响应尚不明确,气候变化对泥炭地生态系统碳平衡的最终影响仍不清楚。

天然有机质(NOM)结构复杂,使得历史上即使要鉴定其混合物中存在的有机化合物也极为困难。近年来的技术进步显著提升了我们对这些化合物的表征能力,其中许多化合物传统上被视为难降解的腐殖酸或富里酸类物质,且在一定程度上至今仍被如此归类。3,4,5我们现在了解到,这些化合物中的许多实际上可被微生物利用,如果提供了合适的末端电子受体(TEA),就可能被分解。6,7计算化合物中碳的名义氧化态(NOSC)可为预测其分解潜力及所需终端电子受体(TEA)的能量产率提供量化指标。然而,该计算需要对有机质进行分子水平的表征。7NOSC 由分子式计算得出 通过 以下方程7:NOSC = − ((−z + 4(#C) + (#H) − 3(#N) − 2(#O) + 5(#P) − 2(#S)) / (#C)) + 4,其中 z 为净电荷。NOSC 与热力学驱动力相关8,其中NOSC较高的化合物更容易降解,而NOSC较低的化合物则需要能量更高的TEA才能被还原。NOSC低于−2的化合物需要高能量产出的TEA(如O₂)才能发生还原反应。2,硝酸盐或MnIV,且无法被常见的低能量产出的电子受体(如Fe)降解III 或硫酸盐7。在湿地常见的积水缺氧环境中,这一点尤为重要2 以及其他高能量产出的终端电子受体较为稀缺9 因此,在这些条件下,较低NOSC化合物的降解在热力学上受到限制。环境扰动可通过影响O的水文变化,进而影响生态系统的热力学状态2 (能量最高的电子受体)、由初级生产所提供的有机底物和电子受体的变化,以及在较小程度上受温度的影响。湿地系统中温度效应的一个重要实例体现在同型产乙酸作用(homoacetogenesis)所发生的权衡关系中即,一氧化碳产生乙酸2 和 H2)和利用氢的产甲烷作用(即, CH4 CO 的生成2 和 H2)。在较低温度下,同型乙酸生成似乎略占优势,而较高温度则有利于CH4 生产10。这种温度效应可能对生态系统对气候变化的响应具有重要意义,因为CH4 是一种比CO更强的温室气体211 从而增加CH的生成4 以一氧化碳为代价2 在较高温度下可能会加剧气候变暖的正反馈效应。

泥炭地通过微生物对天然有机质的呼吸作用,产生具有全球重要意义的 CO2 和 CH46。有机碳底物的氧化态碳数(NOSC)决定了所产生的 CO2 与 CH4 的相对比例,这一参数至关重要,因为 CH4 的辐射强迫效应高于 CO211,同时建模研究也已将该比例确定为估算泥炭地碳通量的关键参数12。在不存在除 CO2 以外的终端电子受体的情况下,通过电子平衡可以证明:NOSC > 0 的有机碳底物将产生 CO2:CH4 > 1 的比例;NOSC = 0 的有机碳产生等摩尔的 CO2 和 CH4;而 NOSC < 1 的有机碳则产生 CO2:CH4 < 1 的比例13。自然生态系统中有机碳(OC)的分解由微生物介导,因此即使特定化合物的降解在热力学上是可行的,其反应速率仍受微生物酶活性的动力学限制,并且在缺氧条件下还受到热力学驱动力(即,NOSC)的制约7。迄今为止,全面表征有机质仍具挑战性,因为其中所含化合物的多样性需要多种互补的技术手段进行分析。近期的技术进展已弥补了这一空白;通过一系列分析技术,我们能够对广泛的有机化合物进行分子水平的表征,某些情况下还可实现定量分析,涵盖从葡萄糖等小分子初级代谢物到分子量达 800 Da 的多杂环化合物。过去,此类大而复杂的分子通常仅被笼统归类为“类木质素”或“类单宁”,并假定其难以降解。然而,分子水平的表征使得即使对这些大分子复杂化合物也能计算其 NOSC 值。这些 NOSC 值与热力学驱动力呈线性相关,从而可用于评估可供分解利用的有机质质量,结果表明在许多情况下,即使在湿地普遍存在的缺氧条件下,这些复杂分子实际上仍可能被微生物降解。

由于引入 O2 可使几乎所有自然观测到的 NOSC 值的有机物发生分解,因此本文重点关注湿地(i.e.,O2 受限)系统中有机物和微生物蛋白质组学的变化,这些变化可能是驱动此类系统的主要因素。然而,我们讨论的所有技术均可应用于来自任何生态系统的有机物。通常,基于光学和荧光分析的综合测量方法已被用于评估有机物质量3,14。然而,使用此类综合测量方法时,大量分子被归入腐殖质或富里酸等泛称类别中,导致精细结构信息丢失。这些类别的定义尚不明确,实际上可能因研究而异,从而导致无法进行比较。此外,综合测量无法提供计算系统热力学所必需的分子层面细节,因此在真正评估有机物质量方面存在局限15。

傅里叶变换离子回旋共振质谱法(FTICR-MS)、核磁共振(NMR)波谱法、气相色谱-质谱联用(GC-MS)和液相色谱-质谱联用(LC-MS)等单独技术确实能够提供此类分子水平的详细信息。尽管这些技术各自存在一定的局限性,但它们也具备独特的优势,可通过整合方法加以利用,以获得从严格的热力学意义上量化有机质质量所需的精细分子信息。GC-MS 有助于鉴定可能对 CO 具有直接作用的关键小分子代谢物2 和 CH4 生产(例如,葡萄糖,乙酸盐 等等。);然而,气相色谱-质谱联用技术(GC-MS)需依赖标准品进行验证,因此仅限于数据库中已知化合物的鉴定,无法识别新化合物。此外,GC-MS是一种半定性技术,只能推断相对浓度的变化,无法提供计算吉布斯自由能等所需的绝对浓度信息。最后,GC-MS在分析前需对分子进行衍生化处理,这限制了其对分子量小于约400 Da的化合物的分辨能力,且在干燥步骤中易导致挥发性醇类损失。

一维(1D) 1液态核磁共振(1H NMR)可对小分子代谢物(包括初级小分子代谢物及挥发性物质,如乙醇、乙酸、丙酮、甲酸、丙酮酸、琥珀酸、短链脂肪酸,以及在基于质谱的方法中通常缺失或受损的一系列碳水化合物)进行高度定量的表征,其浓度数据在热力学参数计算中尤为有用。然而,与气相色谱-质谱联用(GC-MS)类似,复杂混合物的一维核磁共振(1D NMR)需依赖数据库进行标准化,因此单独使用时难以便捷地鉴定在复杂且动态变化的自然生态系统中可能大量存在的新型化合物。此外,核磁共振的灵敏度低于基于质谱的技术,因此只有使用配备氦冷却低温探头的核磁共振系统,才能实现浓度高于1 µM的定量代谢物分析。值得注意的是,部分核磁共振低温探头具有耐盐性,在使用较小直径(< 3 mm 外径样品管16然而,核磁共振(NMR)的另一个复杂因素是存在大量顺磁性金属和矿物质(例如,Fe 和 Mn 含量高于 1 - 3 wt%),这在高地土壤中可能含量较高,会导致光谱特征变宽,从而增加核磁共振(NMR)谱图解析的难度。采用固相萃取(SPE)可通过减少矿物盐含量并提高谱图质量,有助于基于NMR和质谱(MS)的代谢组学方法的解析。

直接进样FTICR-MS是一种高度敏感的技术,能够从单个样品中检测出数以万计的代谢物,但无法捕获乙酸、丙酮酸和琥珀酸等关键的小分子代谢物,且在检测糖类及其他碳水化合物方面素来具有挑战性17,也无法提供定量信息。然而,与其他技术不同,傅里叶变换离子回旋共振质谱(FTICR-MS)在鉴定新型化合物并确定其分子式方面表现卓越,因此能够识别出最多数量的化合物,提供的分子信息也超过其他所述任何技术。这一点具有重要意义,因为FTICR-MS(及其他技术)所提供的分子信息可用于计算NOSC,而NOSC与决定某些化学反应发生可能性的热力学驱动力相关。8 及其在特定条件下的速率7此外,将傅里叶变换离子回旋共振质谱(FTICR-MS)与分离技术(如液相色谱联用串联质谱)相结合,可获得定量的结构信息,从而弥补该技术的部分局限性。液相色谱-质谱(LC-MS)适用于鉴定其他方法难以表征的类脂化合物及其他代谢物。将液相色谱-傅里叶变换离子回旋共振质谱(LC-FTICR-MS)或液相色谱-质谱(LC-MS)与组分收集器联用,收集特定未知目标组分,并通过二维(2D)液态核磁共振(NMR)进行结构解析,是鉴定和定量未知化合物的理想策略。18,19然而,这一步骤非常耗时,仅在需要时才使用。单独来看,每种技术仅能提供有机质的不同侧面信息,而通过整合这些技术,我们能够获得比单独使用任一技术更全面的理解。

尽管热力学因素决定了系统中可能发生转化的最终限制条件,但有机质的分解过程是由微生物介导的,其酶活性控制着反应速率。因此,要充分理解有机质分解的调控机制以及最终的温室气体(CO₂2 和 CH4湿地中温室气体的产生需要采用整合组学方法来表征微生物酶活性以及代谢物。本文介绍了一种利用单一样品进行综合分析的方法,通过连续提取策略实现完全配对的分析结果。该方法在代谢物、蛋白质和脂质提取(MPLex)方案的基础上进行了拓展,将蛋白质组学与气相色谱-质谱(GC-MS)和液相色谱-质谱(LC-MS)相结合。20 通过整合定量代谢物信息来鉴定小分子代谢物、蛋白质和脂质 通过 核磁共振与较大次级代谢产物的鉴定 通过 FTICR-MS。与MPLex略有不同,本方案首先进行水相提取,随后使用极性依次降低的溶剂进行连续提取。所有提取步骤均在同一份样品上进行,这在样品体积有限或难以获取时可节约样本量,并减少因非均质样品基质中分装 aliquots 差异所引入的实验误差。例如,土壤和泥炭)或储存条件与时间的差异。

最后,通过将有机质分析与微生物群落的蛋白质组学分析相结合,我们可以构建描述有机质分解途径及其转化过程的代谢网络。这使我们能够检验关于系统扰动将如何影响最终CO₂排放的具体假设。2 和 CH4 通过改变可利用的有机底物、电子受体以及介导反应的微生物群落来调控产物生成 通过 酶催化剂的活性。

该方法的总体目标是提供一种高通量的实验流程,能够从单一样本中同时分析代谢物、脂质和微生物蛋白,从而生成完全配对的数据集,用于构建代谢网络,并有效控制分析误差。

本方案描述了一种利用质谱技术(包括代谢组学、蛋白质组学和脂质组学)以及核磁共振波谱平台,对单个样品进行全面、无偏倚的分子表征的方法。该方法的意义在于,我们可以通过鉴定多种类型的分子,对基因组下游的生物系统进行表征,从而推断出代谢和分解途径。顺序提取技术首先使用水提取生物可利用的极性化合物,随后采用MPLEx方法,从同一样品中进一步提取其他极性化合物或代谢物,以及蛋白质和脂质。

该方法的可视化演示至关重要,因为它指导科研人员在第二次提取步骤中分离三层,并将提取物分配至不同的分析仪器。整合性多组学分析有助于更有效地开展研究,并全面理解复杂的生物系统。该方法可提取多种多样的分子,适用于多种类型的样本。

按照文本方案所述,首先进行样品的采集与制备。使用经乙醇清洗过的不锈钢工具,将每种干燥样品各50毫克分装至各自的2毫升玻璃管中。向每个样品中加入1毫升蒸馏且脱气的水。

然后盖紧小瓶,在摇床上震荡两小时。将样品在15,000 ×g 条件下离心30分钟。随后让溶液在室温下静置20分钟。

将每个样品的上清液倾析并保存。对已进行水提取的残渣采用MPLEx提取法,重复上述提取步骤,但需用-20°C的氯仿-甲醇(4:3)混合液替代蒸馏脱气水。

小心分离两种形成的溶剂层,可通过仔细移除上层液体来实现视觉区分。将下层非极性层在冷冻干燥机中干燥。一旦干燥完成,若在接下来的几天内进行分析,则加入5 µL氯仿和195 µL甲醇。

为了通过直接进样方式提高傅里叶变换离子回旋共振质谱(简称 FTICR-MS)的电喷雾电离效率,将氯仿提取物用甲醇按 1:1 比例稀释,水相提取物用甲醇按 2:1 比例稀释。通过直接注入 100 微升调谐溶液对 FTICR 质谱仪进行校准,该溶液的质量范围约为 100 至 1,300 道尔顿。

将100微升苏万尼河富里酸标准品直接注入电喷雾电离源中。通过设定流速为每分钟3.0微升的注射泵与傅里叶变换离子回旋共振(FTICR)质谱仪耦合。将针头电压设置为正4.4千伏。

将质荷比设定为1至100,并将玻璃毛细管温度设为180摄氏度。使用分析软件检查所得谱图,以确认数据质量。随后,通过直接进样将每种提取物各100微升引入电喷雾电离源,经由设定流速为3.0微升每分钟的注射泵连接至FTICR质谱仪。

设置参数与之前相同。根据每个样品或每组样品中碳浓度的差异,调整离子累积时间。每个样品采集144次扫描,对扫描结果进行平均,然后使用同系的CH2系列进行内部校准。

使用浓缩仪干燥提取物,并保留剩余提取物用于后续的气相色谱-质谱、液相色谱-质谱和核磁共振波谱分析。为进行GC-MS分析,首先按照文本方案中的说明制备空白对照样品。为保护羟基,向每个样品(包括甲醇提取物、水提取物、空白样品和FAME校准样品)中加入20微升含30毫克/毫升甲氧胺盐酸盐的Paradyne溶液。

用瓶盖密封小瓶。将提取物涡旋振荡20