서 부 럽 일반적으로 감지 단백질 표정, 조직 homogenates 또는 추출 물 등을 계량 하는 데 사용 되는 기술입니다. 년 동안,이 기술을 주도하 고 있다 기본 및 임상 연구에 많은 발전을 그것은 사용할 수 있는 진단 도구로 질병1,2의 존재를 확인 하. 서 부 럽 처음에 설명 되었다 1979 니트로 시트 polyacrylamide 젤에서 단백질을 전송 후 했다 방사성으로 분류 하거나 fluorescein에 활용 된 이차 항 체를 사용 하 여 단백질을 시각화 하는 방법으로 또는 과산화 효소3. 상용 장비 및 장비 개발을 통해 서쪽 더 럽 히 방법은 점점 표준화 하 고 되었습니다 년간 단순화. 실제로, 기술은 다양 한 배경과 경험의 수준의 과학자 들에 의해 쉽게 수행 이제 됩니다. 그러나, 많은 유사한 실험 기법, 것과 같이 서쪽 오 점 분석의 결과 쉽게 영향을 설계 및 실험의 실행에서 만든 선택. 그것은 중요 한, 그러므로, 표준화 된 서쪽 더 럽 히 메서드의 액세스 가능성 모호한 실험 계획에 대 한 필요성 및 디자인 하지 않습니다. 실험적인 고려 사항 포함, 하지만 제한, 샘플 준비 및 처리, 선택 및 단백질 검출을 위한 항 체의 유효성 검사 및 특히 소형 또는 대형의 젤 막 전송 효율 (< 10 또는 > 140 kDa) 단백질4,,56,7,,89. 원래 샘플의 단백질 품질 후속 서쪽 오 점 분석의 결과 결정에 중요 한 역할을 한다. 단백질 샘플 및 세포, 조직, 동물 모델에서 사후 인간의 조직, 등의 다양 한에서 추출 될 수로 처리 및 처리에 일관성 재현성 결과를 얻이 필요 합니다. 예를 들어 단백질 추출에 대 한 샘플의 장기 보관이 필요한 경우 그것은, 단백질은-80 ° C에 일반적으로 안정, 추출 된 단백질 및-80 ° C에서 그대로 조직 단백질 안정성에 차이 되었다는 것을 실현 하는 것이 중요 보고 된10. 또한, 단백질 양의 재현할 수 견적을 얻으려면, 샘플의 일관 된 균질 결정적 이다. 다른 세포의 용 해 버퍼 및 균질 화 방법 (예를 들어, 수동 균질 자동된 방법에 비해)을 최적화 하는 것은 대규모 양적 실험을 시작 하기 전에 필요할 수 있습니다.

단백질 로드와 부 량 변화에 대 한 해결 하기 위해 정규화 전략 단백질 식의 강력 하 고, 양적 결과 얻기 위해 필수적입니다. 단백질 β-말라 등 내부 관리, α-tubulin, β-tubulin, 및 glyceraldehyde-3-인산 효소 (GAPDH) 전통적으로 사용 되어 왔습니다 정량화에 대 한 단백질 수준을 정상화 하. 그러나, 정량화 목적을 위해 특정 가사 단백질 정규화 점점 받아왔다 지난 몇 년 동안11,12이상. 예를 들어 가사 단백질의 표현 같은 동물4, 그리고 다양 한 질병 조건4,15 아래 조직에 걸쳐 서로 다른 발달 단계13,14를 변경할 수 있습니다. ,,1617. 따라서, 특정 가사 단백질의 사용 다른 조직, 다른 timepoints와 다양 한 실험 조건 아래에서 단백질 표정 사이 더 복잡 한 비교를 만들기의 가능성을 제한 합니다. 로드 변형 단백질에 대 한 제어를 가사 단백질 대신 총 단백질 얼룩 (TPS)를 사용 하 여 해당 레이블 이며 샘플에 존재 하는 모든 단백질을 시각화. TPS 신호 정규화 총 단백질 부하에 따라 수 보다는 특정 한 단백질의 수준 및 그러므로 TPS 신호의 정량화 해야 한다 비교 실험 조건, 샘플 형식 또는 발달 timepoint에 재현 . 총 단백질 얼룩 포함 됩니다 Ponceau S, 얼룩-무료 젤, Coomassie R-350, Sypro-루비, Epicocconone, Amydo 블랙와 Cy5 (참고 18에서 검토). 이러한 각 메서드는 특정 이점 및 제한 하 고 메서드 선택 실험 설치4,18뿐만 아니라 시간 및 사용할 수 있는 도구에 따라 달라 집니다.

내 막 로드와 부 량 변화에 대 한 수정 하는 TPS를 사용 하 여, 그것을 다른 세포 막, 대규모 단백질 표정 분석을 수행 하는 경우에 특히 사이 샘플을 비교할 필요할 수 있습니다. 그러나, 항 체 바인딩 효율성과 총 단백질 얼룩 강도 같은 요인에서 변화를 소개 추가 별도 젤에 분석 단백질 견본 및 막 사이 변화 합니다. 이 상황에서 강력한 정량화에 대 한 그것은 멤브레인 사이 가변성을 더 정규화 단계를 소개 하는 데 필요한 따라서. 이 실험에서 일정 하 게 유지는 별도로 분석 된 막의 각각에 내부 로드 표준 포함 하 여 달성 될 수 있다. 이 표준은 모든 단백질을 실험에 포함 하는 모든 세포 막에 걸쳐 사용 될 충분 한 수량에 얻어질 수 있다 lysate의 형태를 걸릴 수 있습니다. 여기, 우리 두뇌는 즉시 무 균 하 고 높은 농도에 단백질의 상당한 금액을 포함 하는 취득된 단백질 lysate lysate 쥐의 뇌 (5 일 오래 된 컨트롤 마우스에서 얻은)의 사용 합니다. 3 중에는 내부 표준 로드 정상화 하 고 직접 비교를 별도 세포 막에 샘플 수 있습니다.

여기, 우리는 우리가 다른 조직, (를 포함 하 여 질병 모델), 마우스 모델 및 발달 timepoints19단백질 식 변화의 복잡 한 비교를 수행 하기 위해 수 있도록 개발 하는 상세한 프로토콜을 설명 합니다. 결합 하 여 형광 TPS는 내부 로드 표준의 사용과, 우리 수 샘플 및 단일 실험에서 비교 될 수 있는 실험 조건에서에서 기존의 한계를 극복할 수 있었다. 이 방법은 전통적인 서쪽 오 점 기법, 수 있도록 더 나은 다른 조직 및 샘플 단백질 식이 탐구 하는 연구자의 사용을 확장 합니다.

이 프로토콜은 다른 조직 및 시간 점에 걸쳐 단백질 발현을 보고 근본적인 임상 연구에서 중요한 질문을 해결하는 데 사용할 수 있습니다. 신뢰할 수 있는 정량적 서양 얼룩을 수행하기 위해 형광 총 단백질 얼룩과 내부 적재 제어를 결합합니다. 이것은 실험 조건에 걸쳐 각종 조직을 비교할 때 생기는 한계를 극복합니다.

스냅 냉동 세포 또는 조직 샘플에서 단백질을 추출하려면 표에 따라 샘플을 적절하게 세척하기 전에 얼음에 마이너스-80도 샘플을 해동하십시오. 폴리프로필렌 유봉이 있는 핸드헬드 전기 균질화제를 사용하여 세척된 샘플을 균질화하고, 이중 증류수로 유봉을 헹구고, 샘플 사이에 깨끗한 조직으로 건조시. 샘플을 얼음 위에 10분 간 두고 원심분리가 뒤따릅니다.

그런 다음, 펠릿을 방해하지 않고 얼음에 새로운 튜브에 단백질 샘플 함유 슈퍼상체를 전송. 단백질 농도의 정량화를 위해, 트리플리케이트의 농도증가에 소 혈청 알부민 기준을 설정하고, 각 단백질 샘플의 마이크로리터 1개를 96웰 광학 플레이트의 적절한 우물에 중복하여 첨가한다. 단백질 농도가 낮을 것으로 예상되는 경우 60도 섭씨 열 블록에 단백질을 10분 이상 배양하고 플레이트 판독기에서 560 나노미터에서 흡수를 측정합니다.

플레이트 판독기 측정을 내보내고 각 샘플의 평균 흡광도 값을 단백질 표준을 사용하여 얻은 표준 곡선과 비교하여 단백질 농도를 계산합니다. 단백질의 양을 정상화하기 위해, 샘플 버퍼및 초순수수에서 단백질 샘플의 희석을 준비하고 10분 동안 70도 섭씨 열 블록에서 시료를 배양한다. 그런 다음 샘플을 얼음 위에 놓고 소용돌이를 가하고 잠시 원심분리합니다.

전기 포거의 경우, 젤 전기 전광 챔버 시스템에 4 ~ 12 %의 비스 트리스 그라데이션 젤을 설정하고 단백질 표준의 3.5 마이크로 리터를 우물에 로드합니다. 멤브레인 정상화를 위해 내부 표준을 사용하는 경우 단백질 사다리 옆에 있는 처음 세 개의 우물에 다른 샘플과 동일한 양을 적재하고 각 샘플의 30 마이크로그램을 나머지 우물에 적재합니다. 이어서, 스태킹 젤을 통해 샘플을 10분 동안 80볼트로 실행하고 45~60분 동안 150볼트를 추가로 실행한다.

전기포광의 끝에서, 전달 스택을 조립하기 위해, 단백질 젤을 폴리비닐리덴 디플루오라이드 멤브레인을 포함하는 바닥 스택에 놓는 다음 필터 종이를 한다. 블로팅 롤러를 사용하여 기포를 제거하고 필터 용지 상단에 상단 스택을 놓은 다음 스택을 다