胆汁の木は哺乳類の肝臓の重要な部分であり、肝細胞から腸への胆汁の通過を可能にする。肝内胆管(BD)は、ノッチおよびTGFβシグナル伝達1、2を介して二電位肝芽細胞と区別する胆管状細胞によって形成される。成熟したCDへの胆管細胞とその組み立ての適切な仕様とコミットメントは、肝内胆樹の開発のために重要です。肝臓が発達中または臓器再生時に成長するにつれて、胆汁器系は適切な胆汁の排液を確保するために肝臓に沿って発達する必要がある。さらに、多くのシンドロミックおよび非シンドロミック疾患は、肝内BDs3の貧弱をもたらす。さらに、多くの急性および慢性肝疾患は、胆汁マーカーを発現するが、必ずしも胆汁細胞または形態から生じるとは限らないかなりの数の細胞の存在として定義される、肝臓のいわゆる管反応を引き起こす。特許BDs4.多系統障害アラギル症候群(ALGS)では、ノッチリガンドギザギザギザ(JAG1)のハプロインの充足は、BD形成およびコレスタ症5、6の不十分なBD形成をもたらす。我々の研究室は最近、以前に生成されたJag1ヘテロジゴウスマウスライン7がALGS8におけるBDポーシティの動物モデルであることを実証した。ALGSのこのマウスモデルでは、胆管細胞はまだ存在する。しかし、彼らは成熟した特許BDs8に組み込むことを約束することができません。したがって、BDの貧弱のモデルにおける肝臓の分析は、胆管細胞の明らかな存在または不在以上のものを必要とする。成熟したCDが肝臓に存在する程度を正確に評価することが重要です。

解剖病理学では、BDのポーシティが存在するかどうかを評価するための受け入れられた定量的方法が9である。例えば、ヒト患者におけるALGSに関する研究は、肝生検9、10当たり少なくとも10のポータル血管を分析することによって、BDからポータル静脈(PV)比を定量することが多い。特許BDの形状および全体的な有無の分析は、血清化学と組み合わせることで、マウス11、12、13におけるBD発達に関する貴重な情報を提供することができる。しかし、マウスは、血清ビリルビンレベル8のわずかな増加でかなりの数のBDを失う可能性があります。したがって、PV当たりの存在するBDの数を評価する定量的方法は、マウスにおけるBDのポーシティの程度をより直接的に測定することができる。最近の報告では、我々はすべての肝葉全体のPVあたりのBDの数を定量化し、Jag1+/–動物8のBD対PV比の有意な減少を報告した。 我々の分析の過程で、炎症反応および管反応の程度に有意な変動があるにもかかわらず、BD対PV比は大きな変動性8を示さない。さらに、BDとPV比の定量化により、Jag1+/でグリコシルトランスフェラーゼ遺伝子Poglut1のコピーを1部除去することで、動物のBDの貧弱性を有意に改善できることを実証することができました。 Jag1+/+の背景では、血管平滑筋細胞におけるPoglut1の条件付き損失は、BD数の漸進的な増加をもたらす(20-30%)P7で、大人8で顕著になります.繰り返しますが、この技術は、P7でも、これらの動物のBD密度の増加が統計的に有意であることを示すことを可能にした。なお、生後4ヶ月のこの遺伝子型におけるBD密度の増加は、樹脂鋳造解析を通じて検証された。8これらの観測値および異なるALGSマウスモデル14、15におけるBD密度を測定した他の報告は、様々な変異体の胆汁欠損を分析するための全体的な戦略にこの方法を組み込むことを促したトランスジェニックマウス。

ここでは、肝疾患のマウスモデルにおけるBD罹患率を調べるために使用できる簡単な手法を詳述する(図1)。この方法では、コランゴサイトマーカーサイトケラチン(CK)8およびCK19(以下、広スペクトルCK、wsCK)との共染色を用いて、マウス肝臓におけるBDsおよび非組み込み胆管細胞を可視化する。α平滑筋アクチン(αSMA)に対する抗体を標識容器に染色する。すべての肝葉をカバーするセクションにおけるBDとPV比の系統的分析は、各遺伝子型について多数のPVが分析されることを保証する。我々の方法は、2D画像におけるBDとPVの定量化に依存しているため、胆樹の3D構造や小さな胆管の完全性に対する特定の変異の影響を調べたりするのに適していません。それにもかかわらず、それはマウスの胆道の発達を評価するために研究者のための簡単で客観的な戦略を提供する。

このプロトコルは、研究者が肝臓病のマウスモデルにおける胆管の発達を定量化することを可能にする。また、胆管の開発に対する遺伝的修飾剤の影響を評価することを可能にする。この技術の利点は、胆管の開発の直接評価のための簡単で、敏感で、定量的な方法であるということです。

まず、皮膚を鉗子で張り付けて、小さなはさみを使って、安楽死させたマウスの肋骨ケージの約1インチ下に横断切開を行います。肝臓の腹側表面全体を露出させます。小さいはさみを使用して、肝臓と腹部の他の器官をつなぐ靭帯を慎重に切断します。

次いで、共通の胆管を切断し、肝臓を腸から切り離す。胆嚢につかまって、慎重に肝臓を取り除きます.すぐに4%パラホルムアルデヒドで充填50ミリリットルチューブを4分の3に入れます。

肝臓組織を固定するには、4%PFAを摂氏4度で48時間インキュベートする。一連のエタノール洗浄後、クリア剤で肝臓を室温で30分間3回洗浄します。埋め込みを開始するには、組織カセットを組織モールドで3回30分間、摂氏60度に予熱したパラフィンワックスで洗浄します。

その後、パラフィンワックスで組織モールドを4分の3の高さに充填し、摂氏60度の加熱ブロックに保管します。腹側を上に向けて、肝臓を型に入れます。慎重に加熱ブロックから金型を取り外した後、カセットの上部を金型の上に置きます。

熱い液体パラフィンを上にして、一晩室温まで冷却させます。肝臓ブロックを型から取り出した後、ミクロトームを使用して肝臓の表面的な後側を切り離し、5マイクロメートルの切片を作ります。解剖顕微鏡の下の表面的なセクションをチェックして、セクションがせせられたり折り畳まれたりしていないことを確認してください。

免疫検査用のスライドを処理するには、分析する遺伝子型ごとに1つのスライドを選択し、キシレン、100%エタノール、95%エタノール、そして最後に70%エタノールで15分間洗浄します。スライドをイオン化水に洗浄した後、トリスベースの高pH抗原検索溶液に浸漬する。その後、圧力鍋で圧力を受けて1平方インチあたり10ポンドで3分間加熱します。

スライドを室温まで冷やした後、PAP ペンを使用してスライドのセクションの概要を説明します。PBS Tweenで洗浄した後、セクションあたり100マイクロリットルのブロッキング溶液を加えて組織切片をブロックし、摂氏4度で1時間覆われたインキュベートを行います。3つの一次抗体すべてを含む希釈抗体溶液の100マイクロリットルを各セクションに塗布し、一晩摂氏4度でインキュベートします。

スライドを洗浄した後、二次抗体を含む2次抗体溶液の100マイクロリットルを加え、室温で1時間インキュベートする。最後に、取り付け媒体とカバースリップをスライドに適用します。蛍光顕微鏡を使用して、各セクションの1倍ズームで20倍の画像を撮影