9,260 Views
•
09:15 min
•
July 26, 2019
DOI:
Мультиплексная флуоресцентная иммуногистохимия определяет несколько типов клеток и их расположение в нетронутой формалин-фиксированной парафин-встроенной ткани, что позволяет не только для идентификации клеток, но и клетки к клетке пространственного анализа. Основным преимуществом этой ручной техники является использование нескольких антител одного и того же вида без перекрестной реактивности. Этот метод позволяет углубленного просмотра взаимодействия иммунных и раковых клеток в микрооквидеоне опухоли.
При попытке этого метода в первый раз, позволяют примерно три-четыре дня окрашивания и отслеживать каждый шаг полностью во время процесса. Более слабый метод процесса окрашивания и мультиплексной конструкции имеет решающее значение для уменьшения распространенных и ожидаемых ловушек. Начните с депарафинизации и регидратации слайдов.
Положите их в духовку гибридизации с тканью вверх и выпекать их при температуре 60 градусов по Цельсию в течение часа. Возьмите слайды из духовки и дайте им остыть в течение пяти-десяти минут в вертикальной стойке слайда. Затем используйте слайд окрашивания набор для лечения слайдов три раза с ксиленом и один раз со 100% этанола, 95% этанола, и 70% этанола в течение 10 минут каждый.
Вымойте стойку горок с деионизированной водой, а затем исправить слайды, погружая их в нейтральный буферный формалин в течение 30 минут. Вымойте горки водой в течение двух минут и приступить к поиску антигена. Поместите стойку слайдов в жаростойкую коробку, наполненную рН 6.0 или рН 9.0 буфером поиска антигена.
Накройте коробку полиэтиленовой пленкой и закретите резинкой. Поместите коробку в микроволновую печь, оборудованную инвертором, на краю вращающейся пластины и нагревают горки в течение 45 секунд при 100%-ной мощности, а затем 15 минут при 20%мощности. Дайте слайдам остыть в течение 15-20 минут после микроволновой проема.
Между тем, подготовить рабочие решения антител и флюорофоров. Подготовка первичного разбомбления антител путем растворения 0,5 грамма гранул сыворотки крупного рогатого скота в 50 миллилитров TBST или 1X PBS. Разбавить каждое первичное антитело рабочим раствором до ранее установленной оптимизированной концентрации.
Разбавить каждый фторфор в разбавлении флюорофора при концентрации от одного до 100. В последний день окрашивания подготовьте рабочее решение DAPI, добавив три капли DAPI к одному миллилитру TBST. Как только горки остынет, удалите их из микроволновой печи и снимите полиэтиленовую пленку.
Вымойте их деионизированной водой в течение двух минут, а затем две минуты мыть с TBST. После мытья, высушить слайд вокруг ткани с деликатной задачей протрите и проследить вокруг внешней части ткани с гидрофобной пера барьер, заботясь, чтобы не прикасаться к ткани или дайте ему высохнуть. Поместите каждый слайд в камеру увлажнителя и добавьте в ткань около четырех капель блокирующего раствора.
Затем инкубировать слайды в течение 10 минут при комнатной температуре и приступить к первичному применению антител. Удалите блокирующий раствор с каждого слайда, нажав на сторону слайда на стопке бумажных полотенец и используйте деликатную протрите задачу, чтобы удалить оставшееся решение. Поместите слайд обратно в увлажненной камере, добавить около 200 микролитров работающих первичных антител, и инкубировать в течение часа.
После инкубации, мыть горки три раза, погружая их в TBST в течение двух минут за стирку. Dab от остальных TBST от каждого слайда и применять примерно три-четыре капли вторичного антитела. Инкубировать горки во влажной камере в течение 10 минут.
Вымойте слайды снова с TBST и применить около 100 микролитров фторфора рабочего решения. Верните горки во влажную камеру и инкубировать в течение 10 минут. Повторите TBST мыть, а затем микроволновой слайды в соответствии с рукописными направлениями, чтобы удалить антитела.
Важно помнить, во время этого многодневного процесса окрашивания останавливается после микроволновой ткани шаг и оставив слайды в буфер поиска антигена на ночь, обеспечивая ткань и пятно целостности. Удалить последнее применение антитела с антигеном поиска раствора и мыть горки с деионизированной водой следуют TBST в течение двух минут за стирку. Повторите окрашивание шаги для остальной части антитела флюрофор пары, а затем приступить к применению DAPI.
Нанесите на каждый слайд около 150 микролитров работающего раствора DAPI и инкубировать их во влажной камере в течение 10 минут. После инкубации, мыть слайды с TBST в течение примерно 30 секунд и смонтировать крышку скользит. После того, как монтажные средства массовой информации высохли, применять четкие ногти польский на четырех углах крышки скольжения, чтобы обеспечить его.
Чтобы проанализировать моноплекс, изображение слайдов на микроскопе с 250 миллисекундной экспозиции с использованием DAPI сосредоточиться. Оцените каждый моноплексный слайд, глядя на интенсивность флуоресценции окрашенного маркера и сравните эту интенсивность с фоном. Используйте положение слайда в окончательном мультиплексе, если интенсивность окрашенных маркеров по крайней мере в пять раз выше фона.
При окрашивание мультиплекса, выбрать подходящий порядок для каждого антитела и назначить каждый флюорофор антитела. Продолжить окрашивание мультиплекса, как описано ранее, и подготовить пустой слайд, который получает разбомжение антител, флюорофор разбомол, и TBST вместо первичных антител, фторфор, или DAPI. Когда вы будете готовы к изображению мультиплекса на микроскопе, установите экспозицию до 250 миллисекунд для всех каналов и захватите каждое изображение с помощью DAPI для фокусировки.
Затем используйте программное обеспечение для анализа для оценки каждого мультиплекса по флуоресцентным ложным цветом и по патологии зрения, которое подтвердит специфику каждого маркера. Чтобы обеспечить успех мультиплексного анализа, моноплексный анализ должен быть выполнен, чтобы определить порядок каждого антитела. Например, когда Foxp3 находится в третьей позиции массива, демонстрируется специфическое и надежное окрашивание и колокализация с помощью CD3.
В отличие от этого, когда Foxp3 находится на первой позиции, неспецифическое окрашивание Foxp3 происходит. Зернистые и эффузные области красного цвета присутствуют на большинстве слайдов, а флуоресцентная интенсивность этих областей низкая. Другим важным шагом в этом анализе является борьба с DEPI, которая является основой для идентификации клеток и дальнейшего анализа.
Между изображениями с рабочим и неработающим DAPI виден четкий контраст. Для мультиплексного анализа красивые композитные изображения не всегда отражают точное пятно. В то время как CD3 визуализируется и показывает специфическое окрашивание, патология яркого поля зрения CD163 доказывает, что антитела неспецифические.
Оптимальное мультиплексное изображение демонстрирует специфическое окрашивание в композитном изображении, а специфичность CD3 и CD163 подтверждается патологическим видом яркого поля. После этой процедуры могут быть выполнены расчеты самофэнотипирования и пространственного анализа для дальнейшего анализа взаимодействий клеток и клеток. Этот метод проложил путь для исследователей, чтобы исследовать пространственное узор клеток и нетронутых тканей, что еще больше наше понимание микроокрении опухоли иммунной.
Multiplex флуоресцентной иммуногистохимии является новой технологией, которая позволяет визуализации нескольких типов клеток в нетронутой формалин фиксированной, парафин встроенных (FFPE) ткани. Представлены руководящие принципы для обеспечения успешного 7-цветного мультиплекса с инструкциями по оптимизации антител и реагентов, подготовке слайдов, дизайна и советов для избежания общих проблем.
10:49
Automated Multiplex Immunofluorescence Panel for Immuno-oncology Studies on Formalin-fixed Carcinoma Tissue Specimens
Related Videos
20407 Views
06:05
Multiplex Immunofluorescence Combined with Spatial Image Analysis for the Clinical and Biological Assessment of the Tumor Microenvironment
Related Videos
6967 Views
06:32
Multiplex Immunohistochemical Analysis of the Spatial Immune Cell Landscape of the Tumor Microenvironment
Related Videos
1786 Views
05:00
Multiplex Immunohistochemistry Staining for Paraffin-embedded Lung Cancer Tissue
Related Videos
1567 Views
04:21
Multiplex Cyclic Fluorescent Immunohistochemistry
Related Videos
615 Views
07:52
Multiplexed Fluorescent Immunohistochemical Staining, Imaging, and Analysis in Histological Samples of Lymphoma
Related Videos
19636 Views
11:00
Visualization, Quantification, and Mapping of Immune Cell Populations in the Tumor Microenvironment
Related Videos
16907 Views
07:50
A Rapid Method for Multispectral Fluorescence Imaging of Frozen Tissue Sections
Related Videos
7705 Views
08:40
Quantitation of Protein Expression and Co-localization Using Multiplexed Immuno-histochemical Staining and Multispectral Imaging
Related Videos
12699 Views
05:16
Multiplexed Fluorescent Immunohistochemical Staining of Four Endometrial Immune Cell Types in Recurrent Miscarriage
Related Videos
3236 Views
Read Article
Cite this Article
Lazarus, J., Akiska, Y., Perusina Lanfranca, M., Delrosario, L., Sun, L., Long, D., Shi, J., Crawford, H., Di Magliano, M. P., Zou, W., Frankel, T. Optimization, Design and Avoiding Pitfalls in Manual Multiplex Fluorescent Immunohistochemistry. J. Vis. Exp. (149), e59915, doi:10.3791/59915 (2019).
Copy