Détection et isolement des cellules de souris viables T IL-17-sécrétrices

Biology
 

Summary

Cette procédure décrit la détection et l'isolement des leucocytes TH17 souris qui sécrètent activement l'IL-17 après stimulation.

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Foerster, A., Assenmacher, M., Niemoeller, M., Rankin, E., Mohaupt, M., Richter, A. Detection and Isolation of Viable Mouse IL-17-Secreting T Cells. J. Vis. Exp. (22), e1037, doi:10.3791/1037 (2008).

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Abstract

La cytokine MACS sécrétion de technologie de dosage permet la détection des cytokines sécrétées au niveau de la cellule unique et isolée sensible de viabilité des cellules sécrétant des cytokines. Afin de marquer l'IL-17 cellules sécrétrices, une suspension cellulaire unique de splénocytes de souris est préparé et stimulé à 37 ° C avec PMA / ionomycine pour induire la sécrétion de cytokines. Pour arrêter la sécrétion des cellules sont ensuite placés sur la glace et sont exposées à l'IL-17 Réactif Catch un anticorps bi-spécifique qui se lie à CD45 sur la surface des cellules de leucocytes et de l'IL-17 comme il est sécrétée et pris près de la surface cellulaire. La sécrétion est alors relancée par l'augmentation de la température à 37 ° C et de l'IL-17 est piégé par le réactif de capture. La sécrétion est ensuite arrêté de nouveau, en plaçant les cellules sur la glace. Pour détecter l'IL-17 pris au piège, les cellules sont incubées avec un IL-17-second anticorps spécifiques conjugué à la biotine et un anticorps anti-biotine-PE. Les cellules peuvent désormais être directement analysées par cytométrie en flux ou préparés pour l'isolement et l'enrichissement par étiquetage ultérieur avec anti-PE microbilles conjuguées.

Protocol

Préparation des réactifs

  1. Faire un tampon contenant du PBS avec BSA (0,5%), et 2 mM d'EDTA. Parce que les bulles d'air peuvent bloquer les colonnes de séparation MACS, le tampon doit être dégazée et stocké à 2-8 ° C avant utilisation.
  2. Nous utilisons un milieu RPMI 1640 contenant du sérum de souris de 5%. Le milieu de culture ne doit pas contenir de BSA ou FCS, car ces composés va modifier la spécificité de la stimulation cellulaire.
  3. L'IL-17 Souris Assay sécrétion - enrichissement cellulaire et le kit de détection de Miltenyi-Biotec. Le kit contient les éléments suivants: l'IL-17 Réactif Catch, l'IL-17 anticorps de détection (biotine), l'anti-biotine-PE, et les microbilles anti-PE.

Stimuler les splénocytes

  1. Ce protocole est effectuée en présence d'un contrôle positif et négatif, comme splénocytes non stimulées et une contre-coloration des cellules T. Ce protocole est réalisé en utilisant une technique stérile.
  2. Préparer une suspension cellulaire unique de splénocytes de souris qui ont été isolés en utilisant les dissociateur gentleMACS ™. La concentration des cellules devraient être prédéterminés par le comptage des cellules. Pellet les cellules à 200 g pendant 10 minutes à température ambiante.
  3. Après la centrifugation, aspirer le surnageant hors du culot à l'aide d'une pipette. Ne pas transvaser le tube pour éviter la perte de la pastille.
  4. Maintenant, remettre en suspension les cellules dans le milieu de culture et ensuite ajouter à un puits. Ajouter moyennes suffisante pour une concentration de dix millions de cellules par ml et cinq millions de cellules par cm carré.
  5. Afin de stimuler une réponse immunitaire dans nos cellules en suspension, nous ajoutons ionomycine (1 pg / ml) et PMA (10 ng / mL) à l'échantillon et mélanger la solution par un léger pipetage de haut en bas. Puis les puits sont étiquetés en conséquence.
  6. Maintenant, nous allons incubation de nos cellules pour 3 heures à 37 ° C sans mélange de commencer la période de stimulation. Passez à l'IL-17 à 3 heures de l'analyse du début de la stimulation, afin de planifier en conséquence.
  7. Pour arrêter la sécrétion, les cellules sont placées sur la glace et nous recueillons les cellules stimulées par un léger pipetage de haut en bas avec le tampon froid. Les cellules sont ensuite transférées à partir du puits d'un tube et sont lavés une seconde fois.
  8. Afin de s'assurer que toutes les cellules sont recueillies, c'est une bonne idée de vérifier votre plat sous un microscope. Si les cellules restent encore attachés, vous pouvez collecter les cellules restantes en rinçant la vaisselle avec du tampon froid. Tout amas de cellules dans votre suspension cellulaire peut être enlevé en utilisant les filtres de pré-séparation.

Marquage des cellules avec le réactif Catch

  1. Il est primordial de noter que ce test fonctionne de manière optimale si moins de 2% de l'IL-17-cellules sécrétrices sont présents.
  2. Si la concentration de cellules sécrétant de l'IL-17 devrait être supérieure à 2% des volumes d'ajuster en conséquence.
    Figure 8
  3. Un écueil potentiel de cette procédure est la contamination croisée des réactifs Catch, qui peuvent survenir lors de l'étiquetage lorsque l'anticorps bi-spécifique se lie à une cellule T non sécrétant et des pièges de l'IL-17 sécrétée par un lymphocyte voisins, générant ainsi des faux positifs.
  4. Afin de contourner ce problème, il est essentiel de cellules refroidir avant de l'étiquetage et à travailler avec tampon froid pour ralentir la diffusion de l'IL-17 et d'éviter cette contamination croisée. En plus de maintenir les cellules froides, ils doivent être maintenus à une concentration définie.
  5. Pour commencer la procédure de labellisation, nous utilisons dix millions de cellules dans un tube de 15 ml refermable. Si le nombre de cellules supérieur doivent être utilisés, il suffit de l'échelle de tous les volumes en conséquence. Une fois la concentration cellulaire optimale a été obtenue, laver les cellules en ajoutant 10 ml de tampon froid.
  6. Isoler les cellules à 300 g pendant 10 minutes dans une centrifugeuse réfrigérée (2-8 ° C).
  7. Après la centrifugation, aspirer le surnageant complètement en utilisant une pipette. Ne pas transvaser le surnageant que cela mènera à la perte de cellules et les volumes imprécis. Répéter l'étape de lavage qui consiste à ajouter 10 ml de tampon froid, centrifugation, et l'aspiration.
  8. Maintenant que nous avons une pastille de pureté désirée, remettre en suspension les cellules dans 80 uL de milieu de culture froide. Pour eux, l'étiquette, nous allons maintenant ajouter 20 ul de souris IL-17 Réactif Catch.
  9. Incuber les cellules pendant 5 minutes sur la glace.
  10. Après la période d'incubation de 5 minutes sur la glace, enlever le tube et diluer les cellules dans 10 ml de 37 ° C mi-chaud. Fixez ensuite le tube sur le Tube Rotator MACSmix et incuber le tube à 37 ° C pendant 45 min sous un mouvement continu. Augmenter la température à 37 ° C redémarre sécrétion de cytokines.

Marquage des cellules avec l'anticorps de détection IL-17 (biotine) et anti-biotine-PE

  1. Après la période de sécrétion de 45 minutes à 37 ° C, placer le tube immédiatement sur la glace. Cela va arrêter la sécrétion de cytokines. A partir de là il est essentiel de garder les cellules sur la glace.Travailler avec le tampon froid va éviter la contamination croisée du réactif de capture.
  2. Remplir le tube avec tampon froid et centrifuger à 300xg à 2-8 ° C pendant 10 min. Aspirer le surnageant complètement. Répéter l'étape de lavage une fois de plus.
  3. Le culot cellulaire est remis en suspension dans 80 ul de tampon froid et le tube est mis sur la glace.
  4. Afin d'éviter une liaison non spécifique de l'anticorps, nous recommandons l'ajout de réactif FcR 10 ul de blocage et incuber sur glace pendant 5 min. Puis nous ajoutons 20 ul de souris IL-17 anticorps de détection (biotine) qui est conjugué à la biotine et incuber pendant 10 minutes sur la glace.
  5. Encore une fois, se laver les cellules que nous avons fait avant en ajoutant 10 ml de tampon froid et centrifuger à 300xg à 2-8 ° C pendant 10 min.
  6. Maintenant aspirer le surnageant et remettre le culot cellulaire dans 80 ul de tampon froid.
  7. Ajouter 20 uL de nos anticorps secondaire, anti-biotine-PE.
  8. Mélanger les cellules et une solution d'anticorps secondaire, et à nouveau incuber le tube pendant 10 minutes sur la glace.
  9. Une fois cette seconde incubation est terminée, laver les cellules avec 10 ml de tampon froid et centrifuger.
  10. Le culot peut désormais être remis en suspension dans 500 ul de tampon froid.
  11. Si les cellules doivent être séparées pour l'analyse plus loin en aval, elles peuvent être marquées magnétiquement avec l'Anti-PE-microbilles et séparés manuellement ou automatisées à l'aide de colonnes MACS et séparateurs MACS.
  12. Nous avons maintenant terminé l'étiquetage des splénocytes et sont prêtes pour l'analyse.

Analyse par FACS

  1. Pour notre analyse, nous allons comparer les splénocytes stimulés et non stimulés par cytométrie en flux.
  2. Avant l'analyse par cytométrie en flux, les cellules sont colorées avec de l'iodure de propidium à 0,5 pg / mL à la porte des cellules mortes. L'analyseur de MACSQuant ™ a été chargé avec 200 000 cellules pour chaque échantillon et nous sommes maintenant allons regarder les diagrammes de dispersion de la réactivité des anticorps par rapport dans les échantillons. Deux considérations importantes pour l'analyse de cellules rares - comme l'IL-17 cellules positives - par cytométrie en flux sont:
    • la fixation d'un porte sur les lymphocytes dans la diffusion vers l'avant par rapport nuage de côté
    • et gating sur les cellules mortes (colorées à l'iodure de propidium) et des cellules B (qui peut causer des taches de fond non spécifique) pour améliorer encore la sensibilité de détection
  3. Nous avons utilisé CD4-APC anticorps pour détecter les cellules T et l'anticorps pour détecter CD45R/B220-PerCP les cellules B. Nous voyons les propriétés de diffusion vers l'avant et latérales des échantillons et d'appliquer une grille sur la population de lymphocytes.
  4. Une deuxième porte a été appliquée pour voir les cellules colorées et les cellules mortes B teinté (axe Y). Ces cellules sont exclus de l'analyse des cellules T.
  5. Dans cet exemple, qui est essentiellement de notre contrôle négatif, nous pouvons voir qu'il ya très peu d'IL-17 CD4 sécrétant positifs dans les échantillons de cellules T non stimulées - environ 0,003% (figure 4). En regardant la population des cellules T stimulées, on peut voir un nombre important de cellules CD4 positives des cellules T qui sécrètent l'IL-17 - environ 0,367% (figure 5A) avant la séparation et 60,76% après la séparation magnétique avec la technologie MACS (figure 5B).

Discussion

Cellules TH17 jouent un rôle essentiel dans l'immunité adaptative et la réponse inflammatoire et sont un élément clé dans la conduite inflammation auto-immune.

Ce document vidéo comment utiliser la souris Miltenyi de l'IL-17 Assay sécrétion - enrichissement cellulaire et le kit de détection (PE). Lorsque vous effectuez cette procédure, il est important d'avoir une estimation de la fréquence de l'IL-17-cellules sécrétant dans votre préparation de cellules de départ. La concentration cellulaire appropriée pendant la période de l'étiquetage et la sécrétion de cytokine empêche la contamination croisée par d'autres cellules de votre suspension et assure des résultats fiables.

Disclosures

Tous les protocoles et fiches techniques sont disponibles à www.miltenyibiotec.com.

Avertissements
Les réactifs contiennent de l'azide de sodium. Dans des conditions acides azide de sodium, produit l'acide, ce qui est extrêmement toxique. Azides doivent être dilués avec de l'eau courante avant de les jeter. Ces précautions sont recommandées pour éviter les dépôts dans les canalisations des conditions explosives peuvent se développer.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Mouse IL-17 Secretion Assay Cell Enrichment and Detection Kit (PE) Reagent Miltenyi Biotec 130-094-213 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_98_1005_Mouse_IL_17_Secretion_Assay_Cell_Enrichment_and_Detection_Kit.aspx
RPMI 1640 Medium Miltenyi Biotec 130-091-440 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_243_293_RPMI_1640.aspx
CD4-APC Reagent Miltenyi Biotec 130-091-611 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_599_327_CD4.aspx
CD8a-FITC Reagent Miltenyi Biotec 130-091-605 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_599_328_CD8a.aspx
Propidium Iodide Solution Reagent Miltenyi Biotec 130-093-233 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_337_744_Propidium_Iodide_Solution.aspx
FcR Blocking reagent, mouse Reagent Miltenyi Biotec 130-092-575 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_601_435_FcR_Blocking_Reagent_mouse_.aspx
Dead Cell Removal Kit Reagent Miltenyi Biotec 130-090-101
MACSmix Tube Rotator Instrument Miltenyi Biotec 130-090-753 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_34_251_MACSmix_Tube_Rotator.aspx
gentleMACS™ Dissociator Instrument Miltenyi Biotec 130-093-235 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_709_763_gentleMACS_Dissociator.aspx
autoMACS Pro Starting Kit Instrument Miltenyi Biotec 130-092-545 http://www.miltenyibiotec.com/en/PG_651_679_autoMACS_Pro_Starting_Kit.aspx
MACS Columns Tool Miltenyi Biotec http://www.miltenyibiotec.com/en/NN_115_Columns_at_a_glance.aspx
MACS Separator Tool Miltenyi Biotec

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Comments

2 Comments

  1. Hello, do you know if cells isolated by this method are still viable in vivo? I would like to do transfer experiments using IFNg or IL-17 secreting cells after PMA + Ionomycin stimulation...
    thanks
    Chantal

    Reply
    Posted by: Anonymous
    October 19, 2011 - 5:09 AM
  2. Dear Chantal,

    Thank you for your interest in our products.

    The cells isolated with any of our Cytokine Secretion Assays are viable and can be used for expanding these cells, transfer them, do molecular biology on them or whatever you may choose to.
    Please be aware that using the IFNg-Cytokine Secretion Assay we recommend using a less strong stimulation than PMA/Ionomycine, i.e. when working with human samples please use CytoStim ( http://www.miltenyibiotec.com/download/datasheets_en/618/MiltenyiBiotec_DataSheet_CytoStim,-human_130-09²-17².pdf ), when working with mouse samples please use SEB (Staphylococcal Enterotoxin B) as recommended in the data sheet ( http://www.miltenyibiotec.com/download/datasheets_en/161/MiltenyiBiotec_DataSheet_Mouse-IFN-%ce%b3-Secretion-Assay-%e²%80%93-Cell-Enrichment-and-Detection-Kit-%²8PE%²9_130-090-517.pdf ).

    I hope this will be helpful.
    For any further questions are comments you can of course contact us directly any time:
    macstec@miltenyibiotec.de

    Best
    Peter

    Dr. Peter M. Burger
    -Technical Support-
    Miltenyi Biotec GmbH

    Reply
    Posted by: Anonymous
    October 19, 2011 - 8:18 AM

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