双荧光原位杂交食脑切片

Neuroscience

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Summary

该协议涉及非放射性

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Jeong, J. K., Chen, Z., Tremere, L. A., Pinaud, R. Double Fluorescence in situ Hybridization in Fresh Brain Sections. J. Vis. Exp. (42), e2102, doi:10.3791/2102 (2010).

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Abstract

在这里,我们描述了一个双荧光修改后的版本

Protocol

该协议是基于标准的放射性和非放射性原位杂交方法,以前我们和其他人开发的检测在组织1-7中的一个或两个成绩单物种的发展和完善。下面所描述的协议有2或3天的总长度,这取决于由最终用户选择的程序中断的数量。下面详细的所有步骤都riboprobe杂交步骤和杂交后洗外,在室温下进行。在此方法中涉及的所有步骤所需的解决方案和缓冲区,可以发现在此协议结束。

1。组织准备和切片

  1. 斩首,并迅速提取受试者的大脑,并将其放置到一个适当大小的塑料模具。
  2. 盖脑组织TEK包埋剂,并迅速在dry-ice/alcohol浴快速冷冻的塑料模具。冰冻组织可存放于-80 ° C,直到使用。
  3. 使用低温恒温器,收集到的收费Superfrost加幻灯片幻灯片2或3%的大脑部分。部分的厚度为10-12微米。幻灯片可存放于-80 ° C,直到使用。

2。探针纯化制备葡聚糖G50列

“可以从商业来源购买葡聚糖列,但是,我们在下面提供一个低成本的替代列的一代,将探头净化。

  1. 水合物无RNase,DEPC处理过的水(例如,2克的粉末,在DEPC处理过的水100毫升),混合的解决方案简要和在室温下存储足够量的葡聚糖G50粉沉淀多余的葡聚糖G50。
  2. 去除上清液(水上层)以下葡聚糖G50降水。
  3. 重复过程中,上述3 - 5倍。
  4. 最后一次洗涤后,再暂停使用葡聚糖G50在TE缓冲液(1:1比例)的解决方案,并存储在4 ° C。
  5. 蒸压成无菌的1 ml注射器玻璃棉和压缩柱塞在底部的致密层,然后放入15毫升猎鹰管的注射器。
  6. 充分混匀,在TE溶液葡聚糖G50。该解决方案的填充注射器/列。
  7. 在1000 rpm离心30秒列。
  8. 重复此过程,直到列的几乎是完全充满葡聚糖G50珠。
  9. 将200μL洗涤液的列列,并在1000 rpm 2分钟离心。流丢弃。
  10. 将200μL封闭液列列,并在1000 rpm 2分钟旋转。重复此步骤的4-5倍,达到平衡列。列可以存放在4℃直至使用,如果用封口膜密封。

3。标记和纯化的Riboprobes

下面我们详细介绍单一riboprobe的产生和净化。 dFISH,每个探头的准备,将涉及同样的方法,除了一个探头将被标记,而其他与生物素标记的双绞线与地高辛(DIG)标记的UTP。

  1. 准备集中(> 150毫微克/微升)和纯化线性利益cDNA的解决方案,以生成感(对照组)或反义riboprobes。
  2. 在1.5 ml离心管中,加入0.5-1微克纯化的cDNA为模板,2 5X探针标记缓冲液,1μL10X辛(或生物素)标签混合,0.5μLRNasin 1μL相应的RNA聚合酶,并带来终体积10μL无RNase的水(DEPC处理)的解决方案。
  3. 在37℃水浴中孵育的解决方案° C为2小时。
  4. 加入1μL的tRNA(股票; 20微克/微升),列封闭液和39μL解决方案。
  5. 准备探针纯化的葡聚糖G50列。为此,添加50μL封闭液列,并在1000 rpm旋转10秒。
    重复此步骤2-3次,以平衡列(即,50μL应用于列离心周期后收回)。
  6. 应用葡聚糖G50列,位置在列的底部的一个新的离心管的探头解决方案,和自旋为3分钟1000转,获得纯化的50μLriboprobe解决方案。
  7. 评估标记riboprobe的质量和产量,使用一个标准的甲醛琼脂糖RNA凝胶,或分光光度计。

4。固定后,乙酰化和杂交

  1. 从-80 ° C冰箱中取出的部分,并允许为室温平衡。随后,冷,新鲜的3%为5分多聚甲醛溶液中孵育部分。
  2. 简单冲洗在P部分hosphate缓冲液(PBS)的两倍。
  3. 脱水部分通过一个标准的酒精系列(70,95,和100%; 2分钟),并让它们风干。
  4. 孵育10分钟的乙酰化解决方案的部分。
  5. 冲洗2X SSPE的第3次。
  6. 再次通过上面所述的标准酒精系列脱水部分,并允许他们风干。
  7. 准备足量的杂交液,并添加两个riboprobes的解决方案(探针浓度为1 ng /μL,每个探头)。总成交量为杂交液杂交的节(每节杂交液16μL)的基础上确定。
  8. 应用足量的杂交液,以确保没有空气泡沫覆盖组织的组织和盖玻片幻灯片。
  9. 放置在一个金属滑动支架幻灯片。在矿物油浴中浸泡持有人,在65 ° C过夜。确保盖玻片是朝上(即幻灯片持有人的侧面应与矿物油的容器底部接触)。

5。后杂交洗

  1. 翌日,小心地取出幻灯片的持有人,并从矿物油浴简单冲洗氯仿它从幻灯片中删除多余的油。
  2. 放置幻灯片在2X SSPE的解决方案,为5-10分钟。盖玻片应分离,而在溶液中的幻灯片。
  3. 转移到一个新的2X SSPE的解决方案的幻灯片,并保持在室温下1小时。
  4. 转移到含2X SSPE的加50%甲酰胺溶液中的部分。这种解决方案的温度应该在一夜之间杂交过程中使用的温度相匹配。在此解决方案保持1.5小时的幻灯片。
  5. 转让部分杂交步骤相同的温度预热到0.1X SSPE的解决方案。在这部分孵育30分钟的解决方案。重复这一步额外的30分钟。

6。检测和可视化的Riboprobes

  1. TNT的缓冲区传输幻灯片,其中0.3%的过氧化氢已经增加了10分钟,。
  2. TNT缓冲液,3次(每次10分钟)部分洗净。
  3. 使用DAKO笔,良好的周围绘制包含大脑部分区域。重要的是,应谨慎行事,以确保该路段不燥。
  4. 每张幻灯片中应用150 TNB的缓冲液,孵育在此解决方案中的部分为30分钟,在潮湿的腔。
  5. 通过倾斜的幻灯片中删除多余的TNB的解决方案。
  6. 国能在2小时湿热试验箱含有过氧化物酶标记的抗地高辛抗体,并存储幻灯片的解决方案的应用150μL。抗体浓度应分别确定为各的利益来开展dFISH前谈话。
  7. 在TNT的缓冲区部分洗净; 3次,每次10分钟。
  8. 申请150μLAlexa的594 -共轭酪胺工作的解决方案,以每张幻灯片,并储存在1小时的湿热试验箱。该解决方案应根据制造商的指示准备。
  9. 在TNT的缓冲区部分洗净; 3次,每次10分钟。
  10. 在TNT的缓冲孵育部分,已添加0.3%的过氧化氢为10 - 30分钟。
  11. 在TNT的缓冲区部分洗净; 3次,每次10分钟。
  12. 适用于150μL的每张幻灯片的TNB的缓冲区,并保持在一个30分钟的湿热试验箱。
  13. 通过倾斜的幻灯片中删除多余的TNB的解决方案。
  14. 加入150μL国能在2小时湿热试验箱含有过氧化物酶标记的抗生物素的抗体,并存储幻灯片的解决方案。
  15. 在TNT的缓冲区部分洗净; 3次,每次10分钟。
  16. 套用一个Alexa 488 - 150μL共轭酪胺的工作方案的幻灯片和1小时的孵化部分。该解决方案应根据制造商的建议准备。
  17. 在TNT的缓冲区部分洗净; 3次,每次10分钟。
  18. 加入150μL赫斯特溶液(1:1000在TNT的缓冲区)的部分,并保持在2分钟湿热试验箱。
  19. 在TNT的缓冲液清洗的部分; 3次,每次5 min。
  20. 盖玻片用荧光兼容的安装介质(例如,Vectashield或延长抗淬灭)的部分。

7。代表性的成果

图1
图1,我们在这里展示有代表性的dFISH,在斑马雀脑取得的成果。从caudomedial nidopallium(NCM),哺乳动物的听觉皮层的鸣禽模拟获得的显微照片。脑切片进行杂交与生物素标记的riboprobe针对白蛋白(A)的抑制性神经元亚群的标志物,掏标记核糖探头针对活动依赖的基因zenk(二),为歌曲驱动的神经元的可靠标记。 C)(A)和(B)显示的听觉体验激活的抑制性神经元的人口覆盖。箭头和箭头指示两个riboprobes专门标记的细胞,星号显示代表神经元,表达共同的利益都成绩单。比例尺= 25微米。

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Discussion

我们使用这个协议来研究脊椎动物的大脑是如何neurochemically和功能组织,并确定如何行为相关的感官刺激的影响在成人大脑 8-10元基因组机械。我们已经成功地使用这种方法在小鼠,大鼠和鸣禽脑组织,但预计此协议将很容易适应从脊椎动物物种的阵列,或许非神经组织得到的脑切片。需要获得可靠的结果和最佳的信号的关键控制已经详细广泛,本集团其他地方11,12

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Disclosures

没有利益冲突的声明。

Acknowledgements

NIH / NIDCD和施密特基金会到RP的赠款支持的工作。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
DEPC VWR international IC15090225 toxic substance
PCR purification kit Qiagen 28104
Formaldehyde VWR international BDH0506-4LP toxic substance
T3 RNA polymerase Roche Group 11031163001
T7 RNA polymerase Roche Group 10881767001
Tris-HCl (1 M, pH 7.5) VWR international IC816124
MgCl2 (1 M) Sigma-Aldrich 449172
Spermidine (1 M) Sigma-Aldrich S0266
DIG RNA labeling mix Roche Group NC9380805
Biotin RNA labeling mix Roche Group NC9440104
RNasin Promega Corp. N2111
BSA Sigma-Aldrich 05491
DTT Sigma-Aldrich D5545
Sephadex G50 VWR international 95016-772
EDTA VWR international 101384-758
SDS Sigma-Aldrich L4390
Transfer (t)RNA Invitrogen 15401011
10X MOPS VWR international 14221-398 toxic substance
Paraformaldehyde VWR international AAAL04737-36 toxic substance
Sodium phosphate monobasic Sigma-Aldrich S3139
Sodium phosphate dibasic Sigma-Aldrich S3264
NaOH VWR international SX0600-1
Triethanolamine VWR international IC15216391
Acetic anhydride VWR international MK242002 toxic substance
SSPE VWR international 82021-488
Formamide VWR international JT4028-1 toxic substance
Poly A Invitrogen POLYA.GF
Mineral oil VWR international IC15169491
Chloroform VWR international BDH1109 organic solvent
Deionized formamide Sigma-Aldrich F9037 toxic substance
Hydrogen peroxide VWR international VW36901 toxic substance
Tween 20 Sigma-Aldrich P1379
Triton X-100 JT Baker X198-05
Anti-DIG HRP Roche Group 11093274910
Anti-biotin peroxidase Vector Laboratories SP3010
TSA Alexa Fluor 594 Invitrogen T20935
TSA Alexa Fluor 488 Invitrogen T20932
H–chst VWR international 200025-538
Vectashield Vector Laboratories H-1000
embedding mold VWR international 15160-157
cryostat Leica Microsystems CM 1850
Superfrost plus slide VWR international 89033-052

Solutions

  1. Column washing buffer: 10 mM Tris-HCl, 0.15 M NaCl, 0.05 mM EDTA, 50 μg/μl tRNA, 0.1% SDS in 50 ml DEPC-treated water.
  2. Column blocking buffer: 10 mM Tris-HCl, 50 mM NaCl, 0.1 mM EDTA in 50 ml DEPC-treated water.
  3. TNT buffer: 60 ml of 1 M Tris-HCl, 18 ml of 5 M NaCl and 1.8 ml of Triton X-100 in 600 ml of DEPC-treated water.
  4. TNB buffer: 100 mM Tris-HCl, 8.3 μg/μl BSA, 0.15 M NaCl and 3% Triton X-100 in DEPC-treated water.
  5. TE buffer: 10 mM Tris-HCl, pH 7.5 plus 1 mM EDTA, pH 7.5.
  6. Acetylation solution: 2.7 ml of triethanolamine plus 0.5 ml of acetic anhydride in 200 ml of DEPC-treated water.
  7. Hybridization solution: 50% formamide, 2X SSPE, 2 μg/μl tRNA, 1 μg/μl BSA and 1 μg/μl poly A in DEPC-treated water. It needs 16 l per section.

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References

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