Alphavirus uyum Sistemi: Sivrisinek Vektörler Enfeksiyon görselleştirme için Araçlar

Immunology and Infection
 

Summary

Alphavirus uyum sistemlerini kullanarak in vitro ve erişkin sivrisinek floresan gazetecilere ifade etmek için yöntemler açıklanmıştır. Bu teknik, yerine ya da ek olarak bir muhabir ilgi herhangi bir protein ifade etmek için adapte olabilir.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Phillips, A., Mossel, E., Sanchez-Vargas, I., Foy, B., Olson, K. Alphavirus Transducing System: Tools for Visualizing Infection in Mosquito Vectors. J. Vis. Exp. (45), e2363, doi:10.3791/2363 (2010).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Alphavirus transducing sistemleri (ATSs) enfeksiyonu sırasında ilgi (GOI) genleri ifade etmek için önemli araçlardır. ATSs sivrisinek yoluyla bulaşan RNA virüsleri cDNA klonları (aile Togaviridae cinsi Alphavirus) türetilmiştir. Alphavirus cins, yaklaşık 30 farklı sivrisinek yoluyla bulaşan virüs türleri içerir. Alpha virüsleri, zarflı virüslerdir ve tek iplikli RNA genomlar (~ 11.7 Kb) içerir. Alpha virüsleri subgenomic mRNA virüsün genom ve olgunlaşması encapsidation için gerekli olan virüs yapısal proteinleri kodlayan bir yazıya. Alpha virüsleri omurgalı hücreler genellikle yüksek parçalayıcı, ama ısrarla minimal sitopatoloji duyarlı sivrisinek hücreleri enfekte. Bu nitelikleri onları sivrisinek vektörleri gen ekspresyonu için mükemmel araçlardır olun. Kullanımı en yaygın ATSs Sindbis virüsü (SINV) türetilmiştir. SINV geniş türlerin tropizm enfeksiyon, böcek, kuş ve memeli cells8 sağlar. Ancak, ATSs iyi 9,10,20 gibi diğer alpha virüsleri elde edilmiştir. Yabancı gen ekspresyonu ek bir viral subgenomic RNA başlatılması sitesi veya organizatörü yerleştirilmesi ile mümkün olmaktadır. Dışsal bir gen dizisi viral yapısal genlerin 5 'yerleştirilmiş olduğu ATSs böcekler istikrarlı protein ifade için kullanılır. Bir gen dizisi yapısal genler 3 'yerleştirilmiş olduğu ATSs, RNAi ve sessizlik böcek bu genin ifade tetiklemek için kullanılır.

ATSs vektör-patojen etkileşimleri, viral replikasyon moleküler ayrıntıları ve bakım bulaşıcı döngüleri 3,4,11,19,21 anlamak için değerli bir araç olduğu kanıtlanmıştır . Özellikle, floresan ve bioluminescent gazetecilere ifadesi, vektör ve virüs iletim 5,14-16,18 viral enfeksiyon izleme etkili olmuştur . Ayrıca, vektör bağışıklık yanıtı SINV GFP 2,9 ifade etmek için tasarlanmış iki suşları kullanılarak tarif edilmiştir.

Burada, cDNA bulaşıcı klon floresan muhabiri (GFP) içeren SINV üretimi için bir yöntem mevcut. Lineerleştirilmiş cDNA klonu Enfeksiyon, tam uzunlukta RNA transkripsiyonu. Enfeksiyon RNA elektroporasyon izin hedef hücrelerin içine tanıtıldı. Transfekte hücreler GOI ifade bulaşıcı bir virüs parçacıkları üretir. Burada açıklandığı gibi sivrisinek, ya da diğer ev sahibi türleri (burada gösterilmemiştir) Hasat virüs bulaştırmak için kullanılır. Vektör yetki midgut dışında floresan tespit ederek veya izleme virüs iletim 7 değerlendirilir. GOI bir hücre kültürü boyunca, enfeksiyon, yaygınlaştırma sivrisinek maruz kalan sivrisinek, virüs iletim hızı tespiti için, virüsün yayılmasını rahat tahmin sağlar ve hızlı bir vektör yetkinlik göstergesi sağlar floresan muhabiri kullanın.

Protocol

Aşağıdaki protokol Sindbis virüs MRE16 dayalı bir ATS üretimi ve kullanımı için yazılmıştır. ATS, sivrisinek vektörü Aedes aegypti GFP ifade etmek için tasarlanmıştır . alpha virüsleri bir dizi (Sindbis virüs, Chikungunya virüsü, O'nyong nyong virüs, Batı at ensefaliti virüsü) Enfeksiyon cDNA klonları ATS (Tablo 1) olarak tasarlanmış olduğunu şu anda mevcuttur. En iyi sonuç için plazmid DNA istenmeyen rekombinasyon ve viral cDNA kaybı önlemek için EMİN yetkili bakteri (Stratagene / Agilent Technologies) gibi bakteri yükseltilir. Tüm bulaşıcı klon plazmid, ikinci tur transkripsiyon için sonunda tam uzunlukta genomik RNA transkripsiyonu ve 3 eşsiz bir kısıtlama endonükleaz viral cDNA sonu acil 5 bakteriyofaj T7 veya SP6 promoter var. Her bir şebeke için, kullanıcıların uygun bakteriyofaj DNA bağımlı RNA polimeraz ve viral RNA genomu in vitro transkripsiyon için benzersiz kısıtlama endonükleaz kullanmanız gerekir .

1. CDNA Aynısını Enfeksiyon RNA nesil.

  1. 20 adet 100 mcL reaksiyon XhoI restriksiyon enzimi ile (p5'dsMRE16 / GFP) plazmid bulaşıcı bir klon 5μg Linearize. 2-3h inkübe 37 ° C
  2. 50 mcL RNaz içermeyen su kullanarak spin kolon DNA salınımlı Qiagen QIAprep Spin Miniprep Kit alternatif arıtma protokolü kullanarak Lineerleştirilmiş DNA arındırın. Plazmid konsantrasyonu yaklaşık 1.0 mg / ml olmalıdır.
  3. RNaz-free 0,2 ml PCR tüpü, set-up protokol başına Ambion MAXIscript Takımı kullanarak 50 mcL transkripsiyon reaksiyon aşağıdaki gibidir.
    • 22.5 mcL RNaz ücretsiz dH 2 O
      • 5.0 mcL Doğrusallaştırılmış DNA örneğinin (1.0 mikrogram / ml)
      • 2.5 mcL 10mM ATP
      • 2.5 mcL 10mM CTP
      • 2.5 mcL 10mM UTP
      • 2.5 mcL 1mm GTP
      • 2.5 mcL 10mM kap analog (m 7 G (5 ') ppp (5) G)
      • 5.0 mcL 10X transkripsiyon tampon
      • 5.0 mcL T7 veya SP6 polimeraz karışımı
    • 50.0 mcL Toplam
  4. 37 1 saat için transkripsiyon reaksiyonu inkübe ° C. Inkübasyondan sonra, BHK-21 hücre reaksiyonu elektroporasyon için hemen kullanılabilir olmalıdır. Elektroporasyon BHK-21 hücrelerinin hazırlanması inkübasyon transkripsiyon reaksiyonu sırasında başlamalıdır.

2. Enfeksiyon RNA Virüs Üretimi

  1. Konfluent 150 cm 2 (T-150) ATS ortalama balon BHK-21 hücreleri iki% 70-80 Trypsinize.
  2. Tüm hücreleri 15 mL konik santrifüj tüpüne aktarın.
  3. Pelet 2000 rpm'de santrifüj hücreleri, 10 dk, 4 ° C geleneksel bir masaüstü santrifüj.
  4. Olmadan steril PBS yeniden süspanse hücreleri Mg + + ve Ca + +. Hücreler PBS ile üç defa yıkanır kadar 2.3 ve 2.4 adımları tekrarlayın.
  5. % 10 FBS içeren pelet hücreleri 0.5 ml MEM tekrar
  6. 10 mcL hücrelerin% 10 FBS 90 mcL MEM ile seyreltilir ve bir hemasitometre güvenebilirsiniz. Eğer gerekli MEM% 10 FBS içeren 2,5-12,5 x 10 7 hücre / mL seyreltik hücreleri.
  7. Buz gibi 0.2 cm elektroporasyon küvet, 400 mcL hücre süspansiyonu ve 20 mcL transkripsiyon reaksiyonu ekleyin. Küvet gelen yoğuşma silin.
  8. 450V, 1200Ω, 150 μF: iki kez küvet Darbe. Biz Electro Hücre Manipulator, Harvard Apparatus Model ECM630 kullanın.
  9. Küvet tüm içeriğini% 10 FBS ile 5 ml MEM içeren bir 25 cm 2 doku kültürü şişesi içine yerleştirin.
  10. % 5 CO 2 ile 37 ° C'de inkübe balonuna (ler).
  11. Dalgaboyu 460-490 nm, emisyon dalga boyu 510-550 nm veya filtre dsRed: uygun filtre seti (örneğin GFP filtre ters bir floresan mikroskop kullanılarak günlük enfeksiyon Monitör dalgaboyu 460-560 nm, emisyon dalga boyu => 590 nm).
  12. Floresan enfeksiyon belirsiz ve / veya CPE şişesi boyunca görülebilir önerdiğinde, -80 gerekli ve mağaza olarak, kısım, balonun içeriği toplamak% 30 FBS eklemek ° C Eğer istenirse hücre lizatları (2000 rpm, 10 dakika, 4 ° C) FBS ek olarak önce santrifüj yoluyla temizlenir.
  13. Passage sonraki kan beslenme deneyleri için virüs titresi artırmak için yeni bir balon hücreleri ile en az bir kere virüs.

Sivrisinekler 3 başına os Enfeksiyon

  1. Kan (genellikle de fibrinated koyun kanı satın) ve adım 2.13 hücre kültürü elde virüs süspansiyonu birlikte karıştırın. Kan öğünde Final virüs titresi genellikle ~ 1x10 7 plak oluşturan birim (pfu) sivrisinek verimli midgut enfeksiyon / mL olmalıdır. Tıkamak, 5'-trifosfat (ATP) adenozin sivrisinek teşvik etmek 0.02M bir final konsantrasyon eklenebilir.
  2. Sivrisinekler olabiliryapay bir besleyici verimli kan beslemek için onları teşvik etmek için enfeksiyondan önce su ve şeker yoksun bırakılamaz. Mortaliteyi en aza indirmek için mahrumiyet süresi daha önce tesis edilmelidir. Times, sivrisinek türleri, bir başlangıç ​​noktası olarak insectary vb nem bağlıdır, şeker 24 yem ve su 12 saat önce kaldıracaktır. Bu protokol, 37 ° C su ile dolaşımdaki su ceketli cam feeders17 kullanır. Domuz bağırsak zarı (yani en bakkalları iyice kasa sosis yıkanmış), besleyici ve yemek odasının pipetlenir ağız üzerine yerleştirilir. Farklı vektör türleri için çeşitli tasarımlar, membranlar ve protokolleri mevcuttur.
  3. Sivrisinekler kan ile tıkanmış sivrisinek seçmek için sıralanır. Engorged sivrisinek üstüne organze ile bir karton transfer ve sivrisinek 28 inkübe ° C,% 75-80 bağıl nem, GFP ifade için işlenmiş kadar.

4. Sivrisinekler, intratorasik Aşılama

Intratorasik aşılama eklembacaklıların bulaşmasını için alternatif bir yöntemdir. Midgut yoluyla yayılması gerekli değildir bu yöntem kullanılır. (Yöntem aşağıda açıklanan ancak bu görsel deney tekniği değildir).

  1. Sivrisinek az sayıda (5-10), plastik tüp içine taşıyan holding kafeslerden aspire edilir. 15 dakika sivrisinekler soğuk ° C kapalı tutarak tüpler 4 alınacaktır.
  2. 2 5 sivrisinek tüpten buz üzerinde duran bir cam petri üzerine dökülen olacaktır. Kullanımda değil veya sivrisinek hareket etmeye başlar Petri kabı kapağı yerleştirin. Sivrisinek taşınması sırasında, bakım değiştirilmekte olan sivrisineklerin sayıda parça sayısı ve tutmak için alınmalıdır. Sivrisinekler soğuk masaya dökülen, toplam sayısı bir laboratuar karşı kaydedilecektir.
  3. Iğne Nanoject özel cam ve bir iğne çektirmenin kullanılarak kılcal boru eriterek hazırlanmıştır.
  4. 69 nL inokulum teslimat için üreticinin talimatlarına göre Nanoject II mikroenjektör Kur. Iğne iğne hasarlı olup olmadığını böylece inokulum çizerken dikkatli olmak gerekir.
  5. Diseksiyon mikroskop kullanarak, sivrisinek toraks içine iğne takın ve aşılama için Nanoject etkinleştirmek. Iğne sivrisinek tamamen nüfuz ve sivrisinek sonraki ölümle sonuçlanan, diğer tarafta çıkmak değildir, böylece sivrisinek aşılama zaman dikkatli olmak gerekir. Inokulum iğneden çıkarmadan önce girdiğinizden emin olmak için her sivrisinek kontrol edin.
  6. Sivrisinek hala iğne kazığa ise aşılama sonra, pamuk veya diğer tüm zamanlarda bir tıpa ile takılı yan tarafındaki küçük bir delikten bir kağıt tutarak karton yerleştirin.
  7. Sivrisinek dikkatle karton (yaklaşık 50 kadar karton başına), bant sivrisinek yanlışlıkla serbest bırakılmasını önlemek için mantar inoküle ve yer var. 28 ° C ve% 80 bağıl nem insectary daha inkübasyon önce güvenli bir holding bin karton yerleştirin.

5. Sivrisinekler, İzleme Enfeksiyon

  1. 4 ° C'de yaklaşık 15 dakika boyunca sivrisinek hareketsiz tutarak karton kağıt yerleştirin.
  2. Sivrisinek az sayıda (bir seferde 5-10), floresan mikroskop kullanmak için uyarlanmış bir ürperti tabloya aktarın.
  3. Floresan varlığı ya da yokluğu dayalı sivrisinek inceleyin ve sıralama. Ayrıca, floresan yoğunluğu bir proxy kantitatif ölçümü gibi enfeksiyon olabilir. Midguts, tükürük bezleri gibi Sivrisinek doku, yağ vücut floresan disseke ve izlenir olabilir.
  4. Eğer uygunsa, enfekte olmuş sivrisinek inkübasyon devam seçilen sivrisinek kağıt karton geri dönün.

6. İletim Assay (Virüs İletim sergilemek için Zorla Sekresyon)

  1. Önce 24 saat beslemek için şeker kaynağı sivrisinek mahrum.
  2. Bacaklarını ve kanatlarını çıkartın
  3. Bir ucunda, ısıtmalı çekti ve snipped olmuştur 50 mcL kılcal tüp, Cargille B Tipi immersiyon ya da% 10 serum sakaroz çözeltisini 3-5 mcL ekleyin.
  4. Burnumun tüp içine yerleştirin. Yağ kullanıyorsanız, tükürük damlacıkları burnumun terlemek görülecektir. PBS içinde% 1 pilocarbine çözüm ve% 0.1 Tween 80 mcL uyarmak için toraks uygulanabilir.
  5. 60-90 dakika sonra, sivrisinek kaldırmak ve gerekirse virüs izolasyonu için mağaza.
  6. 100 mcL% 20 FBS-PBS içeren bir tüp santrifüj tüpten çözüm çıkarın.
  7. Sonra steril filtre 0.2 mikron şırınga filtresi aracılığıyla inokulum ve kültür hücreleri enfekte etmek için filtrelenmiş inokulum kullanın.

BİYOGÜVENLİK NOT: Bu protokol açıklarenfekte sivrisinek üreten belirlenmesi ve izlenmesi için bir yöntem. Fasiliteler (yani bir ürperti tablosu, çevreleme tesis, vb) ve IBC onayına dayanarak, sadece kaçmasını önlemek için kanatlarını ve bacaklarını ayıkladıktan sonra onları inceleyerek sınırlı olabilir. SINV-tabanlı ATS oluşturulur ve BSL2 bir ortamda kullanılabilir. ATS Chikungunya virüs ya da Batı at ensefaliti virüsler gibi diğer alpha virüsleri dayalı BSL3 tesisleri gerekecektir.

7. Temsilcisi Sonuçlar

ATS 5'dsMRE16 / GFP kullanarak bir marker gen (GFP) ifadesi bir bakış Şekil 1'de gösterilmiştir. BHK-21 ve C6/36 (Aedes albopictus) hücreleri GFP ekspresyonu enfeksiyon sonrası enfeksiyon 0.01 çokluğu 5'dsMRE16 / GFP virüs hücreleri belirli zamanlarda Şekil 2'de gösterilmiştir. Şekil 3, virüs, bir enfektif kan yemek boyunca teslim sivrisinek alphavirus ve ATS virüs enfeksiyonu genel bir bakış. Şekil 4 Aedes aegypti ağız enfeksiyonu takiben ATS virüs ~ 10 7 pfu / ml kan yemek hazırlama gösterir. Tüm vücut görünümü Epifloresans bir mikroskop kullanılarak (Şekil 5) Enfekte sivrisineğin ve 10 gün sonrası enfeksiyonu seçilen vücut parçaları. GFP Algılama ve her floresan işaretleyici gen (Şekil 6) ifade ATS 5'dsMRE16 virüsü ile enfeksiyonu takiben enfekte sivrisinek midguts içinde dsRED. İletim tahlil 5'dsMRE16 / GFP ATS virüsü (Şekil 7) ile enfekte sivrisinek kullanarak.

Tablo 1: ATS henüz sivrisinek gen ekspresyonu için tasarlanmıştır.

 
Alphavirus
ATS Sivrisinek Referans
Sindbis Virüs TE / 3'2J ve TE / 5'2J Aedes aegypti 12
Ochlerotatus triseriatus 13
3'dsMRE16 ve
5'dsMRE16
A. aegypti 5
Culex tritaeniorhynchus 5
5'dsTR339 A. AEG ypti 2
Chikungunya virüsü 3'dsCHIKV ve
5'dsCHIKV
A. aegypti / A albopictus 20
O'nyong nyong virüsü 5'dsONNV Anofel gambiae 1,9
Batı at ensefaliti virüsü 5'dsWEEV. McMillan Culex tarsalis Stauft ve ark. Yayınlanmamış

Tablo 2 sivrisinek gen ekspresyonu için ATS kullanmanın avantajları / dezavantajları.

Avantajları:
Yüksek titrede virüs hızlı bir şekilde üretim
Geniş ev sahibi aralığı (SINV)
Yüksek RNA replikasyon oranı
Yüksek transgen ekspresyon düzeyleri
Manipüle genlerin göreceli kolaylığı
Böceklerde istikrarlı, kalıcı gen ekspresyonu
Minimal patoloji böceklerde
Dezavantajları:
Kısa vadeli omurgalı hücrelerinde ifade modu
Omurgalı hücreler üzerinde güçlü sitopatik etkileri
Gen boyutu kısıtlamaları (<1 kB'lık, ideal)
Bazı alpha virüsleri BSL3 çevreleme

Şekil 1
Şekil 1: p5'dsMRE / GFP SINV ifade GFP kullanarak BHK-21 hücre ATS virüs üretim Genel Bakış. In vitro transkripsiyon ardından, genomik ATS RNA virüsü kurtarılır BHK-21 hücre içine electroporated. ATS Virüs daha sonra sivrisinek enfekte için kullanılabilir. SGP = subgenomic organizatörü. Üç ATS RNA türlerinin cel transkripsiyonuls, genomik, subgenomic 1 ve 2 RNA'lar subgenomic. C (kapsid), E2 ve E1 glikoproteinler, bulaşıcı bir virüs ATS genomu üretmek için ile monte edilir.

Şekil 2
Şekil 2: İfade hücreleri SINV 5'dsMRE16 / GFP virüs enfeksiyonunu takiben sivrisinek GFP (C6/36).

Şekil 3
Şekil 3: Genel Bakış virüs iletim önde gelen sivrisinek ATS virüs enfeksiyonu.

Şekil 4
Şekil 4: ATS SINV bir enfektif kan yemek sivrisinek açığa 5'dsMRE16 enfeksiyon.

Şekil 5
Şekil 5: 10 gün enfeksiyonu ATS SINV 5'dsMRE16 / GFP enfeksiyon. GFP Tüm vücut algılama bu virüs midgut kaçtı ve ikincil dokulara dağıtılmıştır gösterir. Şekil aynı zamanda yaygın bir enfeksiyon göstergesidir seçilen vücut parçaları, GFP ifade gösterir.

Şekil 6
Şekil 6: ATS SINV 5'dsMRE16 / GFP ve 5'dsMRE16 / midguts belirli zamanlarda enfeksiyon sonrası dsRED enfeksiyon. Midguts genellikle erken, daha sonraki dönemlerde enfeksiyon sonrası posterior midgut yayılır kan yemek içeren virüs yuttuktan sonra enfeksiyon farklı odaklar var.

Şekil 7
Şekil 7: 8 gün sonrası enfeksiyon gibi erken bir zamanda ATS 5'dsMRE16 / sivrisinek tükürük GFP Algılama. Testi ATS virüs ve 5'dsMRE16 / GFP virüs stably sivrisinek ekstrensek kuluçka dönemi boyunca, GFP ifade gösterir iletim göstermek için tasarlanmıştır. Sol panelinde, kılcal bir tüp içine salivating bir sivrisinek gösterir, merkez paneli, 1 gün ve sağ panel 3 gün enfeksiyonu tükürük ile enfekte C6/36 hücreleri gösterir.

Discussion

Burada sunulan yöntemleri, araştırmacılar, bir sivrisinek hücre kültürü ve yetişkin dişi sivrisinek alphavirus bulaşmasına takip etmesini sağlayacak. ATS virüsler kullanmanın avantaj ve dezavantajları Tablo 2'de özetlenmiştir. ATS bulaşıcı bir klon genetik olarak herhangi bir GOI ifade etmek için manipüle edilebilir ve tek zincir antikorlar, RNAi, bastırıcılar, endojen genlerin hedef antisens RNA'lar ve pro-apoptotik proteinler ifade etmek için kullanılmıştır. Bir muhabir değilse, o zaman bu yöntemin görüntüleme bölümü ilgili değildir. Ancak, aynı protokolleri birçok ATS kurtarma virüs, yayılma ve sivrisinek enfeksiyon için gerekli. Bir alphavirus transducing sistemi takıldığında sınırlamalar transgen maksimum boyutu vardır. Boyutu kısıtlamaları ATS oluşturmak için kullanılan ebeveyn gerginlik bağlı olarak değişir, ancak ateşböceği lusiferaz gibi büyük muhabiri genler sivrisinek kullanmak için ATS yapımında kullanılmış olmasına rağmen 1KB genellikle. Viroloji arka plan mütevazı bir miktarda araştırma laboratuarları, bu protokoller aşağıdaki ATS kullanmak gerekir. Bir dizi araştırma laboratuarlarında zaten SINV tabanlı ATS kullanarak bunu yaptık.

Disclosures

Çıkar çatışması ilan etti.

Acknowledgements

Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH R01 AI46435) ve RMRCE (NIH AI065357) tarafından destekleniyor.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
QIAprep Spin Miniprep Kit Qiagen 27104
MAXIscript Kit Ambion AB1312 Be sure to use a kit containing the appropriate polymerase for your construct.
Cap Analogue (m7G(5’)ppp(5’)G) Ambion AM8050
Nanoject II nanoliter injector Drummond Scientific 3-000-204
Electro Cell Manipulator Harvard Apparatus ECM 630

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Brault, A. C. Infection patterns of o'nyong nyong virus in the malaria-transmitting mosquito Anopheles gambiae. Insect Mol. Biol. 13, 625-625 (2004).
  2. Campbell, C. L. Aedes aegypti uses RNA interference in defense against Sindbis virus infection. BMC. Microbiol. 8, 47-47 (2008).
  3. Cirimotich, C. M. Suppression of RNA interference increases alphavirus replication and virus-associated mortality in Aedes aegypti mosquitoes. BMC. Microbiol. 9, 49-49 (2009).
  4. Capurro, deL. ara, M, Virus-expressed, recombinant single-chain antibody blocks sporozoite infection of salivary glands in Plasmodium gallinaceum-infected Aedes aegypti. Am. J. Trop. Med. Hyg. 62, 427-427 (2000).
  5. Foy, B. D. Development of a new Sindbis virus transducing system and its characterization in three Culicine mosquitoes and two lepidopteran species. Insect Mol. Biol. 13, 89-89 (2004).
  6. Foy, B. D., Olson, K. E. Alphavirus transducing systems. Adv. Exp. Med. Biol. 627, 19-19 (2008).
  7. Franz, A. W. Engineering RNA interference-based resistance to dengue virus type 2 in genetically modified Aedes aegypti. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 103, 4198-4198 (2006).
  8. Hahn, C. S. Infectious Sindbis virus transient expression vectors for studying antigen processing and presentation. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 89, 2679-2679 (1992).
  9. Keene, K. M. RNA interference acts as a natural antiviral response to O'nyong-nyong virus (Alphavirus; Togaviridae) infection of Anopheles gambiae. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 101, 17240-17240 (2004).
  10. Lundstrom, K. Expression of mammalian membrane proteins in mammalian cells using Semliki Forest virus vectors. Methods Mol. Biol. 601, 149-149 (2010).
  11. Myles, K. M. Alphavirus-derived small RNAs modulate pathogenesis in disease vector mosquitoes. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 105, 19938-19938 (1993).
  12. Olson, K. E. Genetically engineered resistance to dengue-2 virus transmission in mosquitoes. Science. 272, 884-884 (1996).
  13. Olson, K. E. The expression of chloramphenicol acetyltransferase in Aedes albopictus (C6/36) cells and Aedes triseriatus mosquitoes using a double subgenomic recombinant Sindbis virus. Insect Biochem. Mol. Biol. 24, 39-39 (1994).
  14. Olson, K. E. Development of a Sindbis virus expression system that efficiently expresses green fluorescent protein in midguts of Aedes aegypti following per os infection. Insect Mol. Biol. 9, 57-57 (2000).
  15. Parikh, G. R., Oliver, J. D., Bartholomay, L. C., C, L. A haemocyte tropism for an arbovirus. J. Gen. Virol. 90, 292-292 (2009).
  16. Pierro, D. J. Development of an orally infectious Sindbis virus transducing system that efficiently disseminates and expresses green fluorescent protein in Aedes aegypti. Insect Mol. Biol. 12, 107-107 (2003).
  17. Rutledge, L. C. W. ard, A, R., Gould, D. J. Studies on the feeding response of mosquitoes to nutritive solutions in a new membrane feeder. Mosq. News. 24, 407-407 (1964).
  18. Sanders, H. R. Sindbis virus induces transport processes and alters expression of innate immunity pathway genes in the midgut of the disease vector Aedes aegypti. Insect Biochem. Mol. Biol. 35, 1293-1293 (2005).
  19. Uhlirova, M. Use of Sindbis virus-mediated RNA interference to demonstrate a conserved role of Broad-Complex in insect metamorphosis. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 100, 15607-15607 (2003).
  20. Vanlandingham, D. L. Development and characterization of a double subgenomic chikungunya virus infectious clone to express heterologous genes in Aedes aegypti mosquitoes. Insect Biochem. Mol. Biol. 35, 1162-1162 (2005).
  21. Wang, H. Effects of inducing or inhibiting apoptosis on Sindbis virus replication in mosquito cells. J. Gen. Virol. 89, 2651-2651 (2008).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics