Cromatografia de afinidade lipídica mediada por vesículas com separação de células Magnetic Ativado (LIMACS): um novo método para analisar proteínas lipídios Interação

Published 4/26/2011
0 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

Para testar a interação de uma proteína com o seu alvo de lipídios foi utilizado MACS e anexina V conjugada esferas magnéticas e vesículas de lipídios sintetizados a partir de lipídios alvo e fosfatidilserina anexina V vinculativo. Proteínas vinculado à lipídica alvo são co-purificados e analisados ​​após eluição dos grânulos.

Cite this Article

Copy Citation

Bieberich, E. Lipid Vesicle-mediated Affinity Chromatography using Magnetic Activated Cell Sorting (LIMACS): a Novel Method to Analyze Protein-lipid Interaction. J. Vis. Exp. (50), e2657, doi:10.3791/2657 (2011).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

A análise de interação proteína lipídica é difícil porque os lipídios são incorporados nas membranas celulares e, portanto, inacessíveis para a maioria dos procedimentos de purificação. Como alternativa, os lipídios podem ser revestidos em superfícies planas como as usadas em lipídios ELISA e ressonância Plasmon espectroscopia. No entanto, lipídios revestimento de superfície não formam estruturas microdomínio, que pode ser importante para as propriedades de lipídios vinculativo. Além disso, estes métodos não permitem a purificação de grandes quantidades de proteínas de ligação a lipídeos seu alvo.

Para superar essas limitações dos testes de interação de proteínas lipídios e purificar proteínas de ligação de lipídios foi desenvolvido um novo método denominado de lipídios cromatografia de afinidade vesícula mediada magnética usando-activated cell sorting (LIMACS). Neste método, vesículas lipídicas são preparados com os lipídios alvo e fosfatidilserina como os lipídios âncora para anexina V MACS. Fosfatidilserina é um fosfolipídio de membrana onipresente celular que mostra alta afinidade à proteína anexina V. Usando esferas magnéticas conjugadas a anexina V vesículas lipídicas contendo fosfatidilserina-se ligará à esferas magnéticas. Quando as vesículas lipídicas são incubadas com uma célula lisado a proteína de ligação ao lipídios alvo também será obrigado a as contas e pode ser co-purificado utilizando MACS. Este método também pode ser usado para testar se proteínas recombinantes reconstituir um complexo de proteínas de ligação ao lipídios alvo.

Temos utilizado este método para mostrar a interação da PKC atípica (aPKC) com a ceramida sphingolipid e co-purificar resposta a apoptose de próstata 4 (PAR-4), uma proteína de ligação a ceramida associada aPKC. Temos também utilizado este método para a reconstituição de um complexo de ceramidas associados da aPKC recombinante com a célula de polaridade proteínas relacionadas Par6 e Cdc42. Desde vesículas lipídicas pode ser preparado com uma variedade de esfingo ou fosfolipídios, LIMACS oferece um teste versátil para lipídios proteínas de interação em um ambiente de lipídios que se assemelha de perto o da membrana celular. Complexos de proteína adicional de lipídios pode ser identificado através da análise proteômica de proteínas lipídios vinculativo co-purificada com as vesículas lipídicas.

Protocol

1. Introdução

A cromatografia de afinidade lipídica mediada por vesículas usando magnético-activated cell sorting (LIMACS) técnica foi desenvolvida em nosso laboratório para isolar complexos ceramida-proteína associada 1-3. Originalmente, as vesículas lipídicas eram feitas de ceramida e fosfatidilserina, o que permitiu a MACS usando partículas magnéticas conjugado com anexina V (altamente afim de fosfatidilserina) para isolar as vesículas e suas proteínas associadas. Temos usado a técnica para o LIMACS na reconstituição in vitro de um complexo de polaridade ceramida-associado eo isolamento de ceramida proteínas de ligação de célula lisados ​​3. LIMACS pode ser modificada usando outros parceiros de interação para o isolamento das vesículas (por exemplo, glicolipídeo-specifc lectinas ou anticorpos lipídica).

2. Procedimentos experimentais

Preparação de vesículas lipídicas e Ensaios aPKCBinding

  1. Vesículas lipídicas são obtidos a partir de misturas secas de quantidades equimolares de fosfatidilserina (105 mg) e C16-ceramida (85 mcg), seguindo procedimentos modificados para a preparação de lipossomas grandes 1,4-7.
  2. As misturas de lipídios são, então, ressuspenso e sonicado por 1 h em 100 l de tampão vesícula consistindo de 50 mM Tris / HCl (pH 7,5) e 150 mM NaCl.
  3. Depois de adicionar 300 ml de tampão vesícula suplementado com 0,1 mM MnCl 2, as amostras são centrifugadas a 12.000 g por 20 min μ a 4 ° C.
  4. O pellet (vesículas lipídicas grande) é ressuspenso em 100 ul de tampão vesícula e incubadas com 1 nmol de Vybrant CM-dii por 1 hora a 37 ° C para visualizar a fração vesícula após a separação MACS. Vybrant CM-DII é um corante vermelho fluorescente especificamente incorporando em membranas lipídicas.
  5. Um detergente livres lisado celular é preparado por sonicação / homogeneização das células em 300 ml de tampão hipotônico (10 mM Tris / HCl (pH 7,0) com protease e os inibidores da fosfatase), seguida pela remoção de detritos membranosa por centrifugação. A etapa de centrifugação a 100.000 xg por 1 h deve ser adicionado para evitar a contaminação do lisado celular com membranas endógena contendo fosfatidilserina.
  6. O lisado limpo é adicionado à suspensão vesícula de lipídios, ea mistura é incubada por 2 horas a 4 ° C.
  7. A mistura de reação é complementado com 20 l de tampão 20x anexina V vinculativo e 50 ul de uma solução contendo esferas magnéticas conjugadas a anexina V seguido de incubação por 1 hora a 4 ° C.
  8. MACS é realizada de acordo com as instruções do fabricante (Miltenyi Biotec, Inc.) protocolo. A presença ea quantidade de vesículas lipídicas é determinada através do monitoramento da fluorescência CM-dii Vybrant nas frações de fluxo e eluição utilizando uma leitora de microplacas de fluorescência.
  9. A correlação linear entre a quantidade de lipídios vesicular e intensidade de fluorescência da vesícula-bound Vybrant CM-dii é verificada pela quantitativa de alto desempenho cromatografia em camada fina (HPTLC) da mistura de lipídios aplicada a anexina V-Macs.
  10. A especificidade da reação de ligação de proteínas aPKC ou outros, para as vesículas ceramida / fosfatidilserina é verificada por um ensaio de competição de anticorpos usando 1 mg de anticorpo anti-coelho PKCζ policlonais para incubar o lisado celular por 1 hora a 4 ° C antes da incubação com os lipídios vesículas.
  11. A proteína de ligação a ceramida / fosfatidilserina vesículas no eluato MACS é analisada por SDS-PAGE e immunoblotting

In vitro complexa polaridade lipídios proteínas

  1. A reconstituição in vitro de um complexo de proteína-lipídica polaridade é realizada seguindo o procedimento LIMACS como descrito na seção anterior. Em resumo, fosfatidilserina (420 mg) e C16-ceramida (107 mg) é seco a partir de solvente orgânico.
  2. Os lipídios são secas sob sonicação ressuspenso em 500 mL de tampão vesícula (50 mM Tris / HCl, pH 7,5, 150 mM NaCl).
  3. Cinco mL de 10 mM MnCl2, 1 ml de Vybrant CM-DII, e 500 ng de PKCζ (recombinante humana) é adicionada ea mistura de reação incubada undergentle agitação por 60 min a 4 ° C.
  4. Vybrant CM-dii manchada fosfatidilserina / ceramida vesículas são recuperadas por centrifugação a 12.000 xg por 60 min a 4 ° C.
  5. O pellet (rosa) é ressuspenso em 100 mL tampão Tris e suplementado com γS-GTP (100 mM), o PIB (1 mM), GST-Par6 (100 ng) ou GST-Cdc42 (500 ng) e mais incubadas por 3 h, a 4 ° C (qualquer outra combinação de proteínas recombinantes de interesse pode ser usado aqui).
  6. Anexina V-tampão (5 mL de uma solução estoque 20x) e anexina V conjugada esferas magnéticas (50 ul) são adicionados a mistura de reação e incubado sob agitação suave por mais 30 min a 4 ° C.
  7. Anexina V-MACS é realizada seguindo o protocolo do fornecedor, conforme descrito anteriormente. A fração de eluição (1 ml) é suplementado com 10 mg de ovalbumina puro como ajuda de precipitação. A proteína é concentrado por Wessel-Flügge precipitação e analisados ​​por SDS-PAGE/immunoblotting como descrito anteriormente 8.
  8. A quantidade de vesículas lipídicas eluída é quantificado pela detecção de Vybrant CM-dii (rosa) na fase orgânica (clorofórmio metanol /) da reação de precipitação Wessel Flügge. A quantidade de proteína analisado é normalizado em quantidades iguais de vesículas lipídicas.

3. Resultados

LIMACS purificação de PKCζ-EGFP e do domínio de ligação de ceramida C20ζ-EGFP

A lisado detergente livres de células MDCK expressar comprimento total PKCζ C-terminal ligada à proteína verde fluorescente (EGFP-FLζ) ou um domínio de ligação de ceramida no C-terminal de PKCζ (C20ζ-EGFP) foi incubada com fosfatidilserina / vesículas ceramida como descrito em procedimentos experimentais. Após eluição da coluna de MACS, proteína foi analisada através immunoblotting e anticorpos contra PKCζ e EGFP para detecção da proteína eluída 2.

Figura 1
Figura 1. LIMACS de EGFP-rotulados PKCζ e seu fragmento C-terminal C20ζ usando fosfatidilserina / ceramida vesículas.

Detergente livres de lisados ​​de células MDCK expressando EGFP (como um controle não vinculativo), comprimento total PKCζ-EGFP, ou a ligação de ceramida, C-terminal de fragmento C20ζ-EGFP foram incubadas com fosfatidilserina / vesículas ceramida tal como descrito na seção de procedimentos experimentais . Depois de usar LIMACS, a proteína foi eluída com tampão de amostra SDS e analisadas por SDS-PAGE e immunoblotting. O painel esquerdo mostra que EGFP não se ligam às vesículas retidos com o V-linked anexina esferas magnéticas. O painel do meio e da direita mostra que o comprimento total PKCζ-EGFP e C20ζ-EGFP foram retidos devido à ligação de ceramida.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Para testar a interação específica entre um lipídio e sua proteína de ligação é prejudicada pela incorporação de lipídios na membrana da célula. A membrana celular consiste de uma mistura de lipídios e proteínas diversas e é organizado em microdomínios lipídicos ou jangadas. Portanto, o co-purificação de proteínas microdomínios e não pode distinguir claramente se uma proteína diretamente liga-se a um lipídio ou só é enriquecido em uma estrutura microdomínio. Outros métodos usando lipídios definido revestido em superfícies como ELISAs lipídios ou ressonância Plasmon espectroscopia pode detectar a interação de um lipídio específico com a sua ligação às proteínas .. No entanto, para determinar essa interação em um ambiente de membrana fisiologicamente relevantes, a superfície (por exemplo, por espectroscopia de ressonância Plasmon) tem de ser revestido com vesículas lipídicas ou lipossomas.

Nós desenvolvemos um romance ensaio de vesícula de lipídios de ligação como uma alternativa a estes métodos anteriores. A novidade vem da incorporação de um lipídio âncora (fosfatidilserina) em vesículas, que permite o isolamento de vesículas lipídicas com anexina V conjugada esferas magnéticas. Portanto, denominado neste ensaio de lipídios cromatografia de afinidade vesícula mediada usando separação de células magnético ativado (LIMACS). LIMACS pode ser realizada para as proteínas endógenas, proteínas expressas nas células ou proteínas recombinantes reconstituído em um complexo de proteínas lipídios 1-3.

A proteína ligada ao vesículas lipídicas pode ser recuperado, basta tomar a coluna MACS do suporte magnético e eluição com um tampão apropriado. Este pode ser um tampão da enzima compatível para medir a atividade enzimática no eluato ou tampão de amostra SDS para realizar análise de proteínas utilizando SDS-PAGE e immunoblotting. Se usar tampão de amostra SDS coluna MACS não tem de ser removido do suporte magnético, que permite a retenção do esferas magnéticas no stand.

Há precauções a serem tomadas quando se utiliza LIMACS. Evidentemente, LIMACS não pode ser usado com um lisado detergente, porque isso irá destruir o vesículas lipídicas. Além disso, ele tem que ser testado se a proteína de ligação do alvo de lipídios também se liga a fosfatidilserina porque este lipídios é usado como uma âncora para a ligação das vesículas de anexina V conjugada esferas magnéticas. . Em alguns casos, fosfatidilserina pode prejudicar a ligação com a proteína alvo. Portanto, controles negativos e controles com diferentes quantidades de fosfatidilserina têm de ser incluídos no ensaio. Thesecontrols pode ser facilmente executada usando vesículas lipídicas contendo apenas fosfatidilserina ou uma mistura de fosfatidilserina não vinculativos lipídios. Incluindo controles negativos também é necessário para lisados ​​celulares que contêm uma quantidade significativa de fosfatidilserina endógena. Para evitar a contaminação com membranas lipídicas endógenas ou vesículas é recomendado para limpar o lisado celular através da inclusão de uma etapa ultracentrifugação a 100.000 xg por 1 h. É evidente que lipídios proteínas de ligação no sobrenadante só pode ser citosólica, que é uma limitação do procedimento LIMACS. Existe a possibilidade de estender a LIMACS lipídios outra âncora, como GM1 e subunidade B da toxina da cólera conjugado com esferas magnéticas.

Estamos atualmente explorando o uso de lipídios anticorpos específicos para LIMACS, o que tornaria o uso de lipídios âncora para a preparação das vesículas desnecessários. Um dos aspectos benéficos da LIMACS é o isolamento do complexo de proteínas lipídios que permite uma variedade de métodos de análise de proteínas que não são implementáveis ​​.. Por exemplo, temos usado LIMACS para isolar um complexo de proteínas reconstituído polaridade da Par6/Cdc42 associados ceramida-bound aPKC. Portanto, LIMACS é um novo método poderoso para a análise e isolamento de complexos lipídio-proteína associados.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Não há conflitos de interesse declarados.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo NIH concede R01NS046835 e R01AG034389, ea March of Dimes conceder 6FY08-322. Um agradecimento especial é dedicado a Sra. Eleanor Brown (Miltenyi Biotec, Auburn, CA), que ajudou tremendamente com a sua visão sobre a tecnologia MACS. Miltenyi generosamente forneceu o material utilizado para a demonstração dos experimentos, sem nenhum custo. Agradeço também ao Dr. Guanghu Wang (Medical College of Geórgia / Georgia Health Sciences University, Augusta, GA), que gerou o PKCζ expressar linhas celulares. Apoio por parte do Instituto de Medicina Molecular da Faculdade de Medicina da Geórgia / Georgia Health Sciences University (sob direção do Dr. Lin Mei) também é reconhecido.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Annexin V-conjugated magnetic beads and MACS micro and minicolumns Miltenyi Biotec
Lipids (of highest purity) Avanti Polar Lipid, Inc

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Wang, G. Direct binding to ceramide activates protein kinase Czeta before the formation of a pro-apoptotic complex with PAR-4 in differentiating stem cells. J Biol Chem. 280, 26415-26424 (2005).
  2. Wang, G., Krishnamurthy, K., Umapathy, N. S., Verin, A. D., Bieberich, E. The carboxyl-terminal domain of atypical protein kinase Czeta binds to ceramide and regulates junction formation in epithelial cells. J Biol Chem. 284, 14469-14475 (2008).
  3. Chalfant, C. E. De novo ceramide regulates the alternative splicing of caspase 9 and Bcl-x in A549 lung adenocarcinoma cells. Dependence on protein phosphatase-1. J Biol Chem. 277, 12587-12595 (2002).
  4. Simon, C. G., Holloway, P. W., Gear, A. R. Exchange of C(16)-ceramide between phospholipid vesicles. Biochemistry. 38, 14676-14682 (1999).
  5. Goni, F. M., Contreras, F. X., Montes, L. R., Sot, J., Alonso, A. Biophysics (and sociology) of ceramides. Biochem Soc Symp. 177-188 (2005).
  6. Kumagai, K. CERT mediates intermembrane transfer of various molecular species of ceramides. J Biol Chem. 280, 6488-6495 (2005).
  7. Wessel, D., Flugge, U. I. A method for the quantitative recovery of protein in dilute solution in the presence of detergents and lipids. Anal Biochem. 138, 141-143 (1984).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Video Stats