C57BL/6Jマウスにおける間質細胞と癌細胞の乳腺移植

Medicine

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Summary

このレポートでは、我々はマウス乳腺から分離し、培養ドナー細胞にシステムのデモンストレーションを、と同所間質分析するためにレシピエントマウスにこれらの細胞を移植:乳腺腫瘍の開発中に上皮との相互作用を。

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Cheng, N., Lambert, D. L. Mammary Transplantation of Stromal Cells and Carcinoma Cells in C57BL/6J Mice. J. Vis. Exp. (54), e2716, doi:10.3791/2716 (2011).

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Abstract

乳腺腫瘍の進行に対する線維芽細胞を含む間質細胞の影響はよくマウスの乳腺の間質細胞と上皮細胞の移植による、特に、マウスモデルを使用して文書化されています。現在の移植モデルは、しばしば間質細胞と上皮細胞の異なる遺伝的背景に起因する免疫不全マウスの使用を必要とする。細胞外マトリックスは、しばしば一貫性のある細胞間相互作用の2つの異なった種類の細胞を埋め込むために使用されるが、免疫原性基質であるマトリゲルまたはラット尾のコラーゲンの使用を必要としている。免疫不全マウスから機能的なT細胞の欠如は、医薬品開発と有効性に関する重要な意味を持つ、 生体内での乳腺腫瘍の進行に間質細胞の正確な評価を防ぎます。また、免疫不全マウスでは、特別なケアの条件を繁殖し、必要とするのは難しい、コストがかかります。これらの障害を克服するために、我々は、同所一貫性のある腫瘍の形成を誘導するために、同じ遺伝的背景からマウスに間質細胞と上皮細胞を移植する手法を開発しました。このシステムは、ドナーC57BL/6Jマウスから通常、癌関連線維芽細胞、PyVmT乳癌細胞とコラーゲンを収穫伴います。次に、細胞をコラーゲンに埋め込まれ、雌のC57BL/6Jマウスの鼠径部乳腺に移植されています。単独でPyVmT細胞の移植は、明白な腫瘍の30〜40日後に移植を形成する。 60日でのエンドポイント解析は、その線維芽細胞との共移植が単独で移植PyVmT細胞と比較して乳腺腫瘍の成長を促進することを示します。 C57BL/6Jマウス由来の細胞とマトリックスはこれらの研究で用いていたが、細胞とマトリックスと移植のアプローチの分離は、汎用性を実証するさまざまな遺伝的背景からマウスの方に適用されることがあります。要約すると、このシステムは、間質細胞と上皮細胞間の分子間相互作用を調査するために使用すること、および免疫不全マウスモデルでの重要な限界を克服しています。

Protocol

1。 C57BL/6Jマウスから分離し、ドナーのコラーゲンの抽出

  1. 承認さIACUCの方法を使用して成熟した正常な雌C57BL/6Jマウスを生け贄に捧げる。
  2. 尾を回収し、組織を滅菌するために45分間70%エタノールに浸漬。ティッシュペーパー、アルミホイルでラップと尾を乾かします。必要になるまで-20℃で尾を保管してください。
  3. そのような層流フードのような無菌環境で尾を置きます。はさみを使用して、離れて尾から尾の根と皮で皮膚を分割。尾の両端0.5〜1cmを削除し、3つまたは​​4つの部分に残りの末尾を分割する。尾から腱を摘出し、メスまたはカミソリ刃を使用して、個々の繊維に腱を分離。
  4. 滅菌コンテナに腱繊維を移し、滅菌蒸留水で洗ってください。 5月7日マウスの尾から/ mlペニシリンペニシリン、50μg/ mlのストレプトマイシン、250 ng / mlのアンホテリシン、および0.034 Nから希釈した酢酸を50単位を含む、35 mlの滅菌脱イオン水を含む50 mlコニカルチューブに移すの腱氷酢酸(17 N)のストック溶液。 4のロッカーの上に置いては° C週にコラーゲンを抽出する。
  5. 15分3000gでテーブルトップ遠心機で破片をスピンダウンします。 1時間、35,000 G(約17000 rpm)でベックマン50.2 Tiのローターとスピンに適応twoポリカーボネートチューブに上清を、約30 MLSを転送します。
  6. 上清の量は1〜2 mg / mlの濃度を達成するために縮小する必要があります。 4時15でultracel 50 Kアミコンろ過ユニットと3000rpmで、テーブルトップ遠心機でスピンして上清を移す℃に滅菌コニカルチューブにろ液を転送して保存する。ボリュームが5〜6ミリリットルになるまで遠心操作を繰り返します。
  7. タンパク質濃度を読み取る。我々は、BSA標準(バイオラッド)と未希釈サンプルを用いて、標準のBradfordアッセイ(BioRad)を使用してください。ネガティブコントロールとして、あなたのろ液からサンプルを測定します。
  8. さらに6%SDSポリアクリルアミドゲル、10レーン、1.5 mmのゲルの厚さでコラーゲンの精製サンプルを解決することで、抽出の純度を確認してください。 1.5mlのエッペンドルフチュー​​ブの63 mMトリス塩酸、10%グリセロール、2%SDS 0.0025%ブロモフェノールブルーを含む30μlの1 × SDS - PAGEローディングバッファーでサンプル20μgのを準備します。ラット尾I型コラーゲン陽性対照としてのタンパク質の相当額を準備します。加えて、2.5でのBSAの標準のセットを準備し、5、10、PBSおよび1Xローディングバッファーに希釈した20μgの。 ℃で5分間95℃で試料を沸騰。
  9. 結露をスピンダウンする(10秒間の最大速度)のサンプルは、クールと簡単に遠心してみましょう。
  10. 分子量マーカーと一緒にサンプルサンプルをロードします。例えば、万華鏡バイオラッドのタンパク質標準液5μlをロードする。約1時間または色素フロントが底に達するまで、150ボルトで電気泳動させる。
  11. ゲルを削除し、クマシーブルーバッファに染色。脱イオン水を含む千ミリリットルの合計体積でクマシーブルー2gの、75ミリリットル氷酢酸、500mlのエタノールを混合することにより、このバッファを準備します。また、クマシーブルー試薬がない点を除いてレシピを使用して脱色バッファの同じ量を用意する。クマシーブルーとロッカーでの場所のための十分な量でゲルをカバー。
  12. RTとデカント汚れで1時間穏やかに揺らし。それはダークブルーを回す脱色液を交換してください。一晩ゲルを拘留または個々のバンドをゲル上で解決されるまで。 twoコラーゲンのバンド(分子量= 90 kDaと130 kDaの)を見つけ、標準とコントロールに対するバンドの強さに注意してください。画像ゲルdocのシステムを使用してゲルを、必要に応じて。

2。正常とPyVmT C57BL/6Jマウス由来のドナー乳癌細胞と線維芽細胞の単離および培養

  1. 腫瘍が承認されたIACUCの方法を使用してPyVmTトランスジェニックマウスで明らかにし、触知である場合、生後10週間後に女性の正常またはPyVmTトランスジェニックマウスをマッチした年齢を生け贄に捧げる。
  2. 平らな面に背の上でマウスを公開し、テープの接着剤を使用して手足を固定化する。
  3. 胸部および鼠径部乳腺の乳首の間にT切開逆さまを作成し、乳腺を公開するために、背部皮膚のフラップを引き出します。乳腺組織を取り出して、手術用ハサミを使用して小片に刻む。
  4. 200mgのトリプシン、500mgのコラゲナーゼ、4mgのDNアーゼ、37℃3時間氷してから、上で一晩滅菌PBSと抗生物質のヒアルロニダーゼ10万台℃:含む酵素消化のカクテルを100 mlを調製
  5. PBSで4℃で5分間1500rpmで、テーブルトップ遠心機でそれぞれのサンプルと遠心分離、細胞ペレットに10%ウシ胎児血清(FBS)を含む10 mlの℃を追加
  6. 静かに上清を吸引し、PBS/10%FBS 5-7 mlに細胞ペレットを再懸濁します。スピンを繰り返し、さらに2回洗浄する。
  7. DMEMを含む10%FB 10ml中の細胞ペレットを再懸濁しますコラーゲンでコーティングプレートにコラーゲンタイプIでコートした10cmディッシュに50ユニット/ mlペニシリン、50μg/ mlのストレプトマイシン、250 ng / mlのアンホテリシンを含むSは、39にコラーゲンを1ml(株式は1.5 mg / mlを使用して)希釈0.02 N酢酸のmlの滅菌蒸留水またはPBSで希釈した。コラーゲンのピペットで5mlのは10cmのプレート上に溶液を取り組んでいます。 10分の最小室温でインキュベートする。過剰なコラーゲンを吸引除去する。 4℃でパラフィルム未使用の皿や店舗°週間C。
  8. 週3回 - メディア2を変更。組織の成​​功消化は紡錘状の線維芽細胞に囲まれた上皮巣の存在によって特徴付けられます。
  9. 選択tryspinizationによって線維芽細胞や上皮細胞を分離。培地を吸引除去し、PBSで1回細胞を洗浄。室温で細胞をインキュベート上に0.25パーセントtrypsin/0.54 mMのEDTAのピペットで1ミリリットル。線維芽細胞は、上皮細胞よりもゆるく付着しています。 2分後に顕微鏡下で線維芽細胞の剥離を確認してください。上皮巣がまだ表面に付着する必要がある一方、細胞は、懸濁液中に浮いたり、切り上げする必要があります。
  10. 軽く線維芽細胞を除去するために皿に血清を含む培地の線維芽細胞と静かにピペット10mlのを緩めるために料理をタップします。
  11. ピペットで、ステップ5で説明した15 mlコニカルチューブと遠心分離機で線維芽細胞を含む培地)。コラーゲンコートした10cmの皿の上にこれらの細胞をReplateと線維芽細胞や上皮細胞が完全に分離されるまで、選択的なトリプシン処理のプロセスを繰り返します。
  12. このようなCK14とCK18と、アルファ平滑筋アクチン(α- SMA)のような線維芽細胞のマーカーとしての上皮マーカーのための免疫蛍光染色によって細胞の純度を確認してください。

3。培養細胞の免疫蛍光染色

  1. さ6cm皿にガラスのカバースリップを配置。層流フードで5〜10分間紫外線照射による滅菌する。
  2. コー​​ト室温(RT)で10分間、株式のコラーゲン溶液を、作業の1〜2 mlでカバー。過剰を吸引除去する。
  3. サンプル当たり200,000上皮細胞または線維芽細胞をトリプシン処理し、プレート。完全なメディアの3-5 mlを加え24時間インキュベートする。
  4. 培地を吸引除去、PBSで細胞を洗浄し、7分まで-20℃で氷冷メタノールで固定してください。
  5. PBSで2回は、室温で1時間1%FBSを含む1〜2 mlのエタノール、およびブロックを削除するには、PBSで細胞を洗浄する。
  6. 鉗子を使用して、パラフィルムまたは他の疎水性の表面で覆われた大きな浅い容器にカバースリップと場所を削除します。
  7. 抗平滑筋アクチン(α- SMA、(基底上皮マーカー)、抗CK14、抗CK18(腔上皮マーカー):ブロッキング溶液で1:100以下の一次抗体を希釈する。
  8. 室温で1時間のための直接カバースリップ上に抗体のピペットで100μlの。ブロッキング溶液中の細胞の別々のカバースリップをインキュベートする、このサンプルでは、​​二次抗体のコントロールとして機能します。
  9. 抗体とピペットで直接洗うようにカバースリップ上に1mlのPBSを吸引除去する。吸引して3-5回繰り返す。
  10. 1:100での抗マウス-アレクサ488、1でビオチン化抗マウス::500、抗マウス-アレクサ- 568ブロッキング溶液で、次の二次抗体を希釈する。
  11. アルミホイルでカバーグラスでコンテナを包みます。ピペットで直接カバースリップ上の適切な二次抗体を100μl:抗マウス-アレクサ568、抗マウス-アレクサ488 CK 14ビオチン化抗マウスで染色し、CK18とα- SMA。可視光から試料を保護するための容器をカバー。
  12. 抗体を吸引除去し、ステップ9)のようにPBSで洗浄する。 CK14染色を除き、PBSでサンプルを残す。
  13. PBSでアレクサ568 1:500にアビジンを希釈する。暗所で室温で30分間strepatividin -アレクサ568とCK14染色サン​​プルをインキュベートする。ステップ9のようにPBSで洗浄する)
  14. PBSで500:DAPI 1希釈する。サンプルからPBSを吸引除去し、暗所で10分、RTのためにDAPIでインキュベートする。
  15. PBSでサンプルを洗浄します。ガラススライド上に抗フェード試薬を延長するのピペットで100μlを、細胞はスライドガラスに直面しているので、上のカバーを回します。優しくマウントメディアとの接触を下すために、単一の角度にカバースリップを傾け。
  16. 免疫蛍光顕微鏡を使用してサンプル画像。約2週間持続する免疫蛍光シグナルを、保護するための試料の暗所で保管してください。

4。移植のためのコラーゲンの埋め込み細胞の調製

  1. コラーゲンで細胞を埋め込むには、それは設定溶液とコラーゲンを混合することにより重合を達成するためにコラーゲンのpHを下げる必要があります。 NaHCO3水溶液の2.45グラム、1 M NaOHを7.5mlの滅菌蒸留水42.5 mlを10倍アールズ平衡塩類溶液100ml(EBSS)を混合することによって設定溶液を調製します。さらに滅菌ボトルに接続されているボトルの上部に0.22ミクロンフィルターユニットを用いて滅菌する。
  2. <LI>開始4で解決策を設定すると(ストック濃度1 mg / ml)のコラーゲンをミックス:1の割合。 one移植の場合は、エッペンドルフチュー​​ブ中の溶液を設定するの25μlとコラーゲンの100μlを混合する。軽くボルテックスまたはピサンプルを上下に徹底的にサンプルを混合する。
  3. コラーゲンまたは5〜10μlの増分で設定のソリューションを追加し、中性のpHを反映して、オレンジ色にピンクの光の混合物の変更にフェノールレッド色素になるまでよく混ぜる。濃いピンクが基本的なpHを反映しながら、黄色の色は、酸性のpHを示している。重合を防止するために氷上で混合してください。
  4. トリプシン処理によりプレートから線維芽細胞や上皮細胞を取り除きます。最初に、培地を吸引除去し、PBS 5mlで洗浄する。ピペットで0.25パーセントプレートあたりのHBSSでtrypsin/0.54 mMのEDTAを1ml。 2〜5分間室温で線維芽細胞をインキュベートする。 2から6分間37℃で上皮細胞をインキュベートする。細胞を緩めるために静かにプレートをタップします。プレート上に完全培地9mlのピペッティングしてmicroscope.Quenchをトリプシンを用いて剥離を確認し、滅菌15 mlコニカルチューブに細胞を移す。
  5. 50μlのを削除し、血球計算盤で細胞数をカウント。各チューブ内のセルの合計量(約10ml)に注意してください。
  6. 室温で5分間、1500rpmでペレットは、細胞。細胞ペレットを吸引、10万cells/100μLの濃度に細胞を懸濁します。例えば、完全なメディアの500μlの総体積で500,000個の細胞を懸濁します。
  7. 別のチューブに25万ストローマ細胞(250μl)を、10万腫瘍細胞(100μl)を混合します。マイクロ10秒1000rpmで、ピペッティングにより上清を取り除く。細胞に調整したコラーゲン溶液の50μlを追加します。上下にピペットで均一に細胞を分散させる。ピペットで円形のドロップを形成するために滅菌さ6cm組織培養プレートで50μlの。 ℃で10分間重合する37移植片をインキュベートする。
  8. ゆっくりと角度で傾斜板によって板で完全なメディアの5mlのを追加し、徐々にプレートの一方の側でメディアをピペッティングする。メディアが移植をカバーするまで、周りに板を傾けて。
  9. 37℃で24時間インキュベート℃にすぐに移植する。

5。 C57BL/6Jマウスにおけるコラーゲン埋め込まれた細胞の視能矯正の移植

  1. 移植手術のための細いガラス棒を作製。ブンゼンのバーナーを使用してガラスパスツールピペットを加熱する。鉗子を用いて、厚さ2〜3 mmまでピペットの先端を伸ばす。冷ます、および70%エタノールで滅菌。
  2. 細かい外科はさみ、鈍外科はさみ、鈍鉗子、薄い鉗子、創傷クリップ、ステイプル傷:オートクレーブと70%エタノールで以下のような手術器具の滅菌
  3. イソフルラン2〜3パーセントは、イソフルラン清掃機を使用して使用して、マウスを麻酔。使用される平均的なO 2流量は、ノーズコーンを介して1 L /分です。
  4. その背中にマウスを置くと、テープまたはその他のリムーバブル接着剤で手足を固定化する。このようなNairさんなどの化学脱毛剤で髪を取り外します。綿がターゲットのような形式で、70%エタノールとbetadineの間で交互にスワブで腹部を滅菌する。
  5. 片手で鈍鉗子を用いて乳腺が皮膚の一部を保持する。乳腺を公開するために、#9と#10の乳首または#4と#鼠径乳腺の5乳首の間にT -切開逆さまにする鈍外科はさみを使用して、もう一方の手で。
  6. 小さな外​​科春のはさみとリンパ節や乳腺動脈下のポケットの切開を行います。
  7. 鉗子を用いて組織培養皿からコラーゲンの移植片を取り外します。軽く拭くと細いガラス棒を使用してポケットに完全にコラーゲンの移植片をスライドさせ、滅菌に軽くたたくことによってコラーゲンの移植片から余分な液体を取り除く。
  8. 第2位腸吸収性縫合糸や創傷ステープルを使用して皮弁を縫合。
  9. マウスがケージにリカバリできます。
  10. 腫瘍に対する触診、最低でも週2回マウスを監視します。腫瘍が直径1cmに達すると、マウスを犠牲にする。分析のための組織を採取する。

6。代表的な結果:

C57BL/6Jマウスから分離し、コラーゲンの抽出

これらの手順は、1から採用されました。タンパク質の9ミリグラム - 5月7日のマウスの尾からのコラーゲンタンパク質の抽出は、約1〜1.5 6ミリリットル最終体積mg / mlの、または6が得られます。染色coommassieによって、90 kDaと130 kDaのに相当するバンドは、それぞれI型コラーゲンとプロコラーゲン(図1)の存在を示す、マウスの尾から抽出したサンプルをロード車線で検出されています。

正常とPyVmT C57BL/6Jマウス由来の乳癌細胞と線維芽細胞の分離および培養。

手順は2から採用されました。 PyVmT癌細胞と線維芽細胞は、特定の上皮と間葉月の細胞の形態及び発現の違いによって区別す​​ることができますKERS。 PyVmT癌細胞は、敷石の形状と共発現CK18、腔上皮マーカーとCK14、基底上皮マーカーではなく、明示α- SMA(図2)によって識別されます。乳腺線維芽細胞は、紡錘状の表現型を持つ大きな細胞であり、α- SMAの高レベルで発現がCK14またはCK 18(図2)を発現しない。これらのデータは、概略を述べた方法を使って、線維芽細胞や上皮細胞に対する95%の細胞の純度を介して示している。

C57BL/6Jマウスにおけるコラーゲン埋め込まれた細胞の視能矯正の移植

これらの手順は、3、4から採用されました。移植レシピエントマウスは、どちらの実験群における腫瘍は直径で1.0 cm、または約60日に到達したときに犠牲にされています。 30日以降に明白な腫瘍の一人でPyVmT細胞結果の移植ながら - 40日は、60日に0.335グラムの平均腫瘍塊に達し、0.630グラムの平均腫瘍塊における乳腺線維芽細胞の結果とPyVmT癌細胞の共移植は、増強を示す線維芽細胞(図3)による腫瘍増殖の。

図1
図1。コラーゲンI型マウスの尾から抽出のクマシー染色分析。BSAは(〜66 kDa)は矢印で示されます。商業ラット尾コラーゲン(20μgのタンパク質)、および精製されたマウスの尾のコラーゲン(20μgのタンパク質が)ボックス(〜130 kDaの、〜90 kDaのタンパク質)で示されます。 STD =分子量標準。

図2
図2。ドナーPyVmT乳腺癌細胞と線維芽細胞の免疫蛍光染色。パネルAおよびBは、CK14とCK18の抗体を免疫染色PyVmT乳癌のセルを表します。パネルCは、α- SMAに対する抗体で染色された線維芽細胞を表しています。画像は20倍の倍率でDAPIオーバーレイで表示。

図3
図3。線維芽細胞の存在下又は非存在下でC57BL/6Jマウスの乳腺腫瘍の開発。乳腺腫瘍は、乳腺線維芽細胞の存在下または非存在下でPyVmT癌細胞を移植したマウスから採取し、秤量した。意味+平均値の標準誤差を。 N =グループあたり6。

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Discussion

腫瘍の進行における線維芽細胞の機能的な貢献は、癌関連した線維芽細胞が増加した腫瘍の増殖と浸潤5の良性乳腺上皮細胞の結果と同じ場所に移植した、移植モデルによって実証されている。従来の移植のアプローチは、異なる遺伝的マウスの背景や異なる種からの共移植間質および上皮細胞のSCIDまたはヌードマウスの使用が関与している。免疫不全マウスでは腫瘍特異的抗原と腫瘍細胞の標的とそれに続く、阻害転移拡散6の認識を通して抗腫瘍免疫を媒介する重要な役割を果たしている機能的なT細胞を、欠けている。さらに、最近の研究は、線維芽細胞が新しいアプローチの開発が間質勉強することを示し、免疫細胞の動員7,8の重要な調節因子であることが示されている:上皮細胞の相互作用がより明確に乳腺腫瘍の進行のメカニズムを理解するために必要です。概説する手順は、信頼できる方法を示しています:隔離と文化乳腺上皮と間葉系細胞と同所乳腺腫瘍を形成するために免疫マウスでこれらの細胞を移植。説明する手順を使用して、我々はこのシステムの信頼性を実証する、97%成功した移植料金の上で異なる実験群と別のエンドポイントを使用して40マウスを介してグラフトしている。このシステムでの腫瘍増殖に対する乳腺線維芽細胞の影響は9乳腺癌細胞と線維芽細胞の移植腎皮膜下に関わる以前に発行された研究と一致している。我々は、このレポートのシステムでいくつかの懸念を発見した。結果として株式の濃度が細胞を埋め込むには低すぎる場合、一方はさらに低いボリュームにコラーゲンを集中したり、追加の尾からより多くのコラーゲンを隔離することができる。一貫性のある腫瘍の形成を確保するためには、ピペッティングによりコラーゲン全体のコラーゲンのプラグに均等に細胞を分散させ、コラーゲンのプラグ内に気泡の存在を回避することが重要です。

乳腺腫瘍の進行中の上皮との相互作用:C57BL/6Jマウス10、11の腫瘍形成の低い背景には、私たちは特定の癌遺伝子や間質における腫瘍抑制遺伝子の不活性化の機能的寄与を調べることができます。特定の癌遺伝子および腫瘍抑制遺伝子の発現は、移植に先立って、例えば、siRNAの安定した発現を介して間質細胞や上皮細胞で変更することができます。初代細胞は継代継続的に老化するので、培養細胞の遺伝子操作は、癌遺伝子12、13、14、15の自発的不死化または発現を介して、例えば、細胞が不死化している場合は簡単です。別の間質細胞型の不死化はマクロファージや内皮細胞16、17、18で達成されました。特定の間質および上皮マーカーの免疫蛍光染色は、これらの研究で単離された線維芽細胞と上皮細胞の高度に精製された集団を明らかにした。しかし、汚染の細胞集団の同定は、さらに、目的の細胞集団を精製するためにソートフローの使用を必要になる場合があります。文化の不死化と遺伝子操作の代替として、捜査官はまた、トランスジェニックマウスからのフローソーティングによって特定の細胞型を分離し、直接乳腺19、20を含むさまざまな組織、研究のためのマウスにこれらの細胞を移植した。このアプローチは、このアプローチは、生理学的に関連する主要な細胞が生成されますが、マウスの各時間の細胞の単離を必要とします。しかし、細胞集団の細胞と純度の供給は細胞の種類の豊富さで、使用可能なマウスの数に依存しています。これらの課題は、このようなアクチン- GFPマウス21などの蛍光レポーターを持つマウスの腫瘍細胞の移植で克服することができる。このシステムでは、1つは、腫瘍の進行の全体的な間質の影響を調査することができるが、特定の間質細胞の寄与を区別しません。アプローチの各々は、研究者のニーズに応じて、特定の長所と短所が付属しており、本報告書で説明されているシステムと組み合わせることができます。上皮との相互作用とその後の腫瘍の進行:さらに、記載されているシステムは、これらの異なる変数が間質をどのように影響するかを決定するために、異なる遺伝的背景、悪性腫瘍の状態の変化で別の間質細胞の種類と乳腺上皮細胞の移植で、移植に適応または修正することができます。

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Disclosures

動物実験:

動物実験は、カンザス大学医療センターのIACUC委員会によって定められたガイドラインおよび規制に準拠して行った。

Acknowledgements

このプロジェクトは、NIH / NCIの助成金番号R00 CA127357とカンザスがんセンター基金の大学を通じて資金を供給された。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
C57BL/6N mice Harlan Laboratories N/A
MMTV-PyVmT transgenic mice Jackson Laboratory 002374
Fetal Bovine Serum Fisher Scientific SH3039603PR
DMEM VWR international 10000113873
Penicillin/streptomycin Fisher Scientific MT-30-001
amphotericin Fisher Scientific BP2645-20
Amicon filtration columns ultracel 50k EMD Millipore UFC905008
Tubes for Beckman TI rotor Beckman Coulter Inc. 355618
Rat tail collagen Fisher Scientific CB 40236
10x EBSS Sigma-Aldrich E7510-100ML
Trypsin 1X, 0.25% in HBSS w/o Calcium and Magnesium Fisher Scientific MT-25-050-CI
Glacial acetic acid Fisher Scientific A491-212
Coomasie blue Fisher Scientific BP101 25
Trypsin Sigma-Aldrich T3924-100ml
Collagenase A Sigma-Aldrich
hyalronidase Sigma-Aldrich H3884
DNase Sigma-Aldrich D5025
Kaleidoscope Protein standard Bio-Rad 1610375
Glass slides Fisher Scientific 12545-78
Glass coverslips VWR international 101400-042
Vimentin antibody S-20 Santa Cruz Biotechnology, Inc. SC-7558
α-smooth muscle actin antibody Abcam ab5694
CK14 antibody Santa Cruz Biotechnology, Inc. sc-53253
CK18 antibody Abcam ab668
DAPI Sigma-Aldrich D9542
Anti-mouse biotinylated Vector Laboratories BA9200 Distributed through Fisher
Anti-mouse-alexa-568 Invitrogen A10037
Anti-mouse- alexa-488 Invitrogen A11001
Streptavidin- alexa-488 Invitrogen S11226
DAPI Invitrogen D21490
Prolong antifade Invitrogen P-36930
Surgical scissors Fine Science Tools 91400-12
Fine spring scissors Fine Science Tools 15000-02
Blunt forceps Fine Science Tools 11002-12
# 5 fine forceps Fine Science Tools 11251-10
Gut chromic suture Fisher Scientific NC9326254
Glass Pasteur pipet Fisher Scientific 22-042-815
Ethanol Fisher Scientific A406P 4
betadine Fisher Scientific NC9386574
Wound clips Fisher Scientific 12032-07
Wound staple Fisher Scientific 12031-07

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References

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