Трансмембранного домена олигомеризации склонность определяется Пробирной ToxR

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Эффективная процедура для оценки олигомеризации склонность однопроходный трансмембранных доменов (TMDS) описывается. Химерные белки, состоящие из TMD слит с ToxR выражаются в репортеру штамма E.coli. TMD-индуцированной олигомеризации причины димеризации ToxR, активации транскрипции и производства репортер белка,-галактозидазы.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Joce, C., Wiener, A., Yin, H. Transmembrane Domain Oligomerization Propensity determined by ToxR Assay. J. Vis. Exp. (51), e2721, doi:10.3791/2721 (2011).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Protocol

1. Клонирование Соображения

  1. Коммерчески подготовленные олигонуклеотиды представляющих интерес TMD окружении NheI и сайтах BamHI ограничения и 5'-фосфорилированных можно лигируют pTox7 (изменение в нашей лаборатории вставки одной пары оснований непосредственно после сайта BamHI ограничение 14) (рис. 3) усваивается последовательно с BamHI и NheI. Например олигонуклеотидных приведен ниже:
    5'ctagcTMDSEQUENCEg3 '
    3 'gTMDSEQUENCEcctag5'

TMD последовательность должна быть 12-24 остатков (короткие последовательности, предположительно, будет удлиненный векторными закодированные остатков гидрофобных). Для того чтобы исследовать интерфейс, четыре варианта дизайна ПРО ТВД должна быть создана последовательная, где вставки остатков и сопутствующей остаток удаление приводит к вращению TMD относительно ToxR. 15,16 Наконец, концентрации арабинозы должны варьироваться от 0,001 до 0,01% (м / о) для определения концентрации, где максимальные различия в β-галактозидазы сигналов между различными TMD последовательности наблюдается; тестирования различных уровней выражение рекомендуется определить условия, при которых различные сходства можно выделить лучших. В дополнение к арабинозы и антибиотиков, 0,4 мМ IPTG может быть использован для повышения различия родства между различными TMDS. Измерение ToxR должно быть выполнено по крайней мере в четырех экземплярах. Вся процедура должна быть повторена по крайней мере в три раза с разными плазмиды преобразований.

2. Рост бактериальных культур

  1. Аккуратно оттепели FHK12 компетентных клеток (200 мкл) на льду и передачи в 15 мл в пробирку. Добавить ДНК плазмиды (200 нг) и инкубировать клетки на льду в течение 30 мин.
  2. Теплового шока клеток инкубации в течение 90 с при 42 ° C, с последующей инкубацией на льду в течение 2 мин.
  3. Добавить SOC СМИ (800 мкл) и инкубировать образцов при 37 ° C при встряхивании (300 оборотов в минуту) в течение одного часа
  4. Привить 5 мл LB среды с хлорамфеникол (30 мкг / мл) и арабинозы (0,0025% м / о) с 50 мкл преобразования смеси в 15 мл культуры труб в трех экземплярах. Инкубируйте образцы при температуре 37 ° C при встряхивании (300 оборотов в минуту) в течение 20 ч. (В качестве альтернативы 5 мкл культуры может быть использован для инокуляции 100 мкл среды в 96-луночного планшета. Этот метод полезен при работе с большим количеством образцов, хотя ошибки будут несколько выше. Во избежание испарения, которые привели бы к ошибке, заполните внешний скважин со средствами массовой информации, но не используют их для образцов. Наконец, дважды обернуть сустав между крышкой и пластиной с парафильмом).

3. Измерение β-галактозидазы

  1. Разогреть пластины для считывания до 28 ° C.
  2. Передача Z-буфера в резервуар с большим кончиком пипетки, убедившись, что только занимают верхние (водный) слой. Передача 100 мкл свежеприготовленного Z-buffer/chloroform в лунки 96-луночного планшета. Передача 5 мкл каждой культуры в лунки пластины в четырех экземплярах. Пропустить культуры из четырех скважин, которые будут служить пустым.
  3. Измерить диаметр 595 пластины, чтобы определить плотность клеток.
  4. Добавить 50 мкл Z-buffer/SDS во все лунки пластины. Встряхните пластины в пластинчатых читателя в течение 10 мин, чтобы лизировать клетки. Убедитесь, что клеточные суспензии ясны после лизиса и повторить пожимая шаг, если требуется. Неполное лизис предлагает Z-buffer/chloroform не свежеприготовленной.
  5. Добавить 50 мкл свежеприготовленного Z-buffer/ONPG во все лунки и вернуть пластину к пластине читателя и измерить диаметр 405 каждые 30 секунд в течение 20 мин.
  6. Рассчитать β-галактозидазы, используя следующее уравнение (напомним, вычесть пустым). Отношение OD 405 / мин следует рассчитывать с использованием всех точек данных в диапазоне 405 OD 0,0 до 1,0 с помощью линейного подходят модели.
    Уравнение 1
    Миллер единицы отличаются иногда, когда записанные в разные дни. Таким образом, ссылки построить как ГПД следует измерять в каждом тесте. Его значения могут быть использованы для нормализации ToxR ценностей.

4. Контроль за экспрессию белка

  1. Выполните западных промокательной проверить даже экспрессии белка между конструкциями. Комбинат 50 мкл трех экземплярах культур и центрифуги (2000 оборотов в минуту, 4 мин) в микроцентрифужных. Удаляют супернатант пипетки и ресуспендируйте остаточных осадок в 2 х буфера загрузки образца.
  2. Нагрузка 7,5 мкл на стандартный 8% геля и проведение electrophoreses при 125 V в течение 1 часа 5 мин. После передачи, инкубировать с анти-MBP HRP-конъюгированных антител и визуализации; химерных белков наблюдается приблизительно в 70 кДа с некоторыми продуктами разложения иногда рассматривается около 48 кДа. Эндогенные MBP наблюдается также в 45 кДа (рис. 5).

5. Контроль за Правильная вставка Мембранные

Клеточная линия дефицит мальтозу связывающий белок используется для оценки надлежащего вставки оболочки химерных построить ПРО ТВД. При росте на средах с минимальным мальтозы в качестве единственного источника углерода, только клетки, экспрессирующие мембрана-интеграла продукт выражение с мальтозу связывающий белок правильно расположены периплазме способны расти.

  1. Преобразование PD28 клеток (как описано для FHK12 клеток) и привить 2 мл LB среды. Рост клеток при 37 ° C при встряхивании (300 оборотов в минуту) в течение ночи.
  2. Гранул клетки центрифугированием при 3500 оборотов в минуту, 10 мин, 4 ° С и стирать ресуспендирования в PBS (2 мл), осторожно пипеткой с большим наконечником или нежный вортексе. Гранул клеток (см. выше), мытье с PBS во второй раз, пеллет и, наконец, ресуспендируют в PBS (1 мл).
  3. Используйте 25 мкл ресуспендировали клетки привить 5 мл минимальные средства массовой информации в трех экземплярах и инкубировать при температуре 37 ° C при встряхивании (300 оборотов в минуту). Возьмите OD 595 показания между 15-25 ч, примерно каждые 2 часа путем перевода 200 мкл каждого образца в 96-луночного планшета и чтения с помощью пластин-ридера.

6. Представитель Результаты:

Пример использования ToxR транскрипционный анализ репортер проанализировать олигомеризации склонность трансмембранных доменов в показано на рисунке 4. Ранее мы исследовали олигомеризации трансмембранных доменов из multispanning мембрана-интеграла мембранный белок скрытая белка-1 (LMP-1) различными методами, в том числе ToxR 14 трансмембранных домена пять (ТМ5) было показано, демонстрируют сильную склонность к oligomerize. Об этом свидетельствует высокая единиц Миллер, сравнимой с положительным контролем, ГПа, устоявшихся dimerizing последовательности. Вредные мутации в ТМ5, D150A, снижает способность последовательности oligomerize. LMP-1 TM1 существенно не oligomerize и экспонаты очень низкой Миллер Группа сигнал, чуть выше сигнала для пустой, нетрансформированных FHK12 клеток.

Рисунок 1
Рисунок 1. Мультфильм изображающий анализа ToxR репортер. Трансмембранного домена (ПРО ТВД) приводом олигомеризации приводит к димеризации ToxR и активации транскрипции LacZ. Ген продукт LacZ, β-галактозидазы может быть определена количественно, как мера склонности к ПРО ТВД oligomerize.

Рисунок 2
Рисунок 2. Гидролитического расщепления ONPG по β-галактозидазы результатов в производстве поглощающий свет видов о-nitrophenolate (ОНП).

Рисунок 3
Рисунок 3. Плазмиды карта pToxR7.

Рисунок 4
Рисунок 4. Представителю ToxR транскрипционного анализа репортер анализа олигомеризации склонность латентный мембранный белок-1 трансмембранных доменов. Трансмембранного домена 5 (ТМ5) oligomerizes сильно, в то время трансмембранного домена 1 (TM1) имеет лишь слабое взаимодействие. Мутация D150A в ТМ5 значительно снижает его способность oligomerize. ГПД входит в качестве позитивного шага управления для сильных димеризации. Пустые представляет непреобразованных FHK12 клеток.

Рисунок 5
Рисунок 5. Иммуноблоттинга для экспрессии белка.

Рисунок 6
Рисунок 6. PD28 дополнения анализа для контроля за правильным вставки мембраны периплазме. Отрицательный контроль представляет построить дефицит мальтозу связывающий белок.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

ToxR транскрипционного анализа репортер легкий способ идентифицировать трансмембранного последовательностей с потенциалом oligomerize. Поскольку взаимодействия, происходящие в бактериальной внутренней мембраной, этот анализ позволяет обойти проблемы, связанные с изучением действия систем в мембранно-миметического средах. Учитывая, что клонирование нескольких TMDS в единую плазмиды легко быть сделано параллельно и весь анализ может проводиться в 96-луночного формата пластины, результаты анализа могут быть использованы для высокой пропускной анализа большого количества белковых последовательностей. После 17 взаимодействие было обнаружено, ключевые функциональные остатки могут быть допрошены мутационный анализ, позволяющий отображение структурных особенностей участие. Во многих случаях, кристаллографических анализ трансмембранных белков является проблематичным, требующим альтернативных инструментов, таких как анализ ToxR установить молекулярные основы функции.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgments

Мы благодарим Национальных Институтов Здоровья (1R21CA138373 и резервных до рака (SU2C) за финансовую поддержку этой работы. HY благодарен за 2009 Elion награду от Американской ассоциации исследований рака, премии Kimmel ученый из Сидни Киммель фонда Исследования Рака (SKF-08-101) и Национального научного фонда факультета Рано премии Карьера (NSF0954819).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
BamHI restriction enzyme Invitrogen 15201023 Invitrogen enzymes were found to be more efficient than alternative suppliers
NheI restriction enzyme Invitrogen 15444011 Invitrogen enzymes were found to be more efficient than alternative suppliers
15 mL culture tubes Fisher Scientific 14-956-1J
SOC media TEKnova, Inc. S0225 Made up to the appropriate volume and sterilized by autoclaving.
LB media Sigma-Aldrich L7275 Made up to the appropriate volume and sterilized by autoclaving.
Chloramphenicol Sigma-Aldrich CO378 Stock solution of 30 mg/ mL in ethanol stored in freezer
Arabinose Fluka 10839 Stock solution of 2.5% (w/v) in water stored in freezer
Na2HPO4 Sigma-Aldrich S9390
NaH2PO4 Sigma-Aldrich S9638
KCl Mallinckrodt Baker Inc. 6858-06
MgSO4.7H2O Sigma-Aldrich 63138
Sodium dodecylsulfate (SDS) Sigma-Aldrich L6026
2-Nitrophenyl β-D-galactopyranoside (ONPG) Sigma-Aldrich 73660
Z-buffer 16.1 g Na2HPO4
5.5g NaH2PO4
0.75g KCl
0.246g MgSO4
Make up to 1 l, pH 7.0
Z-buffer/chloroform 200 mL β-mercapt–thanol, 2 mL chloroform, make up to 20 mL with Z-buffer. Vortex for 1 min, centrifuge for 1 min at 800 rpm. Make fresh for each plate.
Z-buffer/SDS 160 mg SDS dissolved in 10 mL Z-buffer
Z-buffer/ONPG 40 mg ONPG in 10 mL Z-buffer. Make fresh for each plate
β-mercapt–thanol Calbiochem 444203
Anti-MBP monoclonal antibody (HRP conjugated) New England Biolabs E8038S
Minimal media with maltose 1 x M9 salts, 0.4% maltose, 1 mg/ mL thiamin, 2 mM MgSO4
96-well flat bottom plate Sarstedt Ltd 83.1835.300
Plate-reader Beckman Coulter Inc. DTX880 Multimode Detector
Water bath VWR international 89032-204
Shaking incubator Forma Scientific

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Parker, M. S. Oligomerization of the heptahelical G protein coupling receptors: a case for association using transmembrane helices. Mini Rev Med Chem. 9, 329-339 (2009).
  2. Mo, W., Zhang, J. T. Oligomerization of human ATP-binding cassette transporters and its potential significance in human disease. Expert Opin Drug Metab Toxicol. 5, 1049-1063 (2009).
  3. von Heijne, G. Membrane-protein topology. Nat Rev Mol Cell Biol. 7, 909-918 (2006).
  4. Van Horn, W. D. Solution nuclear magnetic resonance structure of membrane-integral diacylglycerol kinase. Science. 324, 1726-1729 (2009).
  5. Hattori, M. Mg(2+)-dependent gating of bacterial MgtE channel underlies Mg(2+) homeostasis. Embo J. 28, 3602-3612 (2009).
  6. Ulmschneider, M. B., Sansom, M. S. Amino acid distributions in integral membrane protein structures. Biochim Biophys Acta. 1512, 1-14 (2001).
  7. Deber, C. M., Goto, N. K. Folding proteins into membranes. Nat Struct Biol. 3, 815-818 (1996).
  8. Gerber, D., Shai, Y. In vivo detection of hetero-association of glycophorin-A and its mutants within the membrane. J Biol Chem. 276, 31229-31232 (2001).
  9. Langosch, D., Brosig, B., Kolmar, H. p, Fritz, H. J. Dimerisation of the glycophorin A transmembrane segment in membranes probed with the ToxR transcription activator. J Mol Biol. 263, 525-530 (1996).
  10. Russ, W. P., Engelman, D. M. TOXCAT: a measure of transmembrane helix association in a biological membrane. Proc Natl Acad Sci U S A. 96, 863-868 (1999).
  11. Berger, B. W. Consensus motif for integrin transmembrane helix association. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 703-708 (2010).
  12. Oates, J., King, G., Dixon, A. M. Strong oligomerization behavior of PDGFbeta receptor transmembrane domain and its regulation by the juxtamembrane regions. Biochim Biophys Acta. 1798, 605-615 (2010).
  13. Sal-Man, N., Gerber, D., Shai, Y. Hetero-assembly between all-L- and all-D-amino acid transmembrane domains: forces involved and implication for inactivation of membrane proteins. J Mol Biol. 344, 855-864 (2004).
  14. Sammond, D. W. Transmembrane peptides used to investigate the homo-oligomeric interface and binding hot-spot of the oncogene, latent membrane protein 1. Forthcoming (2010).
  15. Li, R. Dimerization of the transmembrane domain of Integrin alphaIIb subunit in cell membranes. J Biol Chem. 279, 26666-26673 (2004).
  16. Ruan, W., Becker, V., Klingmuller, U., Langosch, D. The interface between self-assembling erythropoietin receptor transmembrane segments corresponds to a membrane-spanning leucine zipper. J Biol Chem. 279, 3273-3279 (2004).
  17. Finger, C., Escher, C., Schneider, D. The single transmembrane domains of human receptor tyrosine kinases encode self-interactions. Sci Signal. 2, ra56-ra56 (2009).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics