Cryopreservation של עוברי עכברים ידי Vitrification אתילן גליקול מבוסס

Biology
 

Summary

אתילן גליקול מבוססי שיטה vitrification עבור עוברי עכבר מתואר. זהו יתרון לשיטות אחרות בפשטותו ורעילות נמוכה עובריים, ולכן יכול להיות ישים באופן נרחב זנים רבים של עכברים, כולל עכברים טבועה ו גנים שונה.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Mochida, K., Hasegawa, A., Taguma, K., Yoshiki, A., Ogura, A. Cryopreservation of Mouse Embryos by Ethylene Glycol-Based Vitrification. J. Vis. Exp. (57), e3155, doi:10.3791/3155 (2011).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Cryopreservation של עוברי עכברים בסיס טכנולוגי התומך מדעים ביו, כי זנים רבים של עכברים הופקו על ידי שינויים גנטיים המספר גדל בעקביות שנה אחר שנה. הפיתוח הטכני שלה התחיל עם שיטות הקפאה איטית בשנות ה -1970 1, לאחר מכן על ידי שיטות vitrification שפותחה בסוף שנות ה 1980 2. באופן כללי, הטכניקה האחרונה היא יתרון זריזות שלו, הפשטות, ושרידות גבוהה של עוברים התאושש. עם זאת, cryoprotectants הכלול הם רעילים ועלולים להשפיע על התפתחות העובר הבאים. לכן, השיטה לא יושמה על זנים מסוימים של עכברים, גם כאשר הפתרונות הם מקורר 4 ° C כדי למתן את האפקט הרעיל במהלך הטיפול העובר. לכל BioResource RIKEN המרכז, יותר מ 5000 זנים עכבר עם רקע גנטי שונה פנוטיפים מתוחזקים 3, ולכן יש לנו אופטימיזציה te vitrificationchnique שבה אנחנו יכולים cryopreserve עוברים מן זנים שונים של עכברים, עם היתרונות של הישרדות גבוה העובר לאחר vitrifying ו מפשיר (או המסה, ליתר דיוק) בטמפרטורת הסביבה 4.

כאן, אנו מציגים שיטה vitrification עבור עוברי עכבר אשר שימש בהצלחה במרכז שלנו. הפתרון cryopreservation מכיל אתילן גליקול במקום DMSO למזער את רעילות עוברים 5. הוא מכיל גם Ficoll ו סוכרוז למניעת devitrification והתאמה האוסמוטי, בהתאמה. עוברים ניתן לטפל בטמפרטורת החדר והועברו לתוך חנקן נוזלי תוך 5 דקות. בגלל השיטה המקורית היתה אופטימיזציה עבור קשיות כמו מכולות, יש לנו את הפרוטוקול שונה מעט עבור cryotubes, אשר נגיש יותר בקלות במעבדות עמידים יותר בפני נזקים פיזיים. כמו כן, אנו מתארים את הליך הפשרת עוברים מזוגגת בפירוט כי זה קריטי STEp עבור התאוששות יעיל של עכברים חיים. מתודולוגיות אלה יהיה מועיל חוקרים וטכנאים הזקוקים לשימור זנים העכבר לשימוש מאוחר יותר בצורה בטוחה וחסכונית.

Protocol

התוכנית הכוללת של הניסוי מוצג באיור. 1.

1. מגיב הכנה

  1. הפוך את המדיום הבסיס (כאן המכונה PB1) בתוך בקבוק זכוכית 100 מ"ל לפי התרשים הבא להלן:
    MW mM mg/100ml
    NaCl 58.4 136.98 800.0
    KCl 74.6 2.68 20.0
    KH 2 PO 4 136.1 1.47 20.0
    Na 2 HPO 4 0.12 H 2 O 358.14 8.04 288.1
    MgCl 2, 6 שעות 2 O 203.3 0.49 10.0
    180.2 5.56 100.0
    Na pyruvate 110 0.33 3.6
    CaCl 2, 2H 2 O 147 0.9 13.2
    פניצילין G 6.0 (בערך)
  2. הפוך את Ficoll-סוכרוז (FS) פתרון:
    1. מוסיפים את כימיקלים הבא 14 מ"ל של תמיסת PB1 בתוך שפופרת 50 מ"ל.
      Ficoll 70 6.0 גרם
      סוכרוז 3.424 גרם
      BSA 42.0 מ"ג
    2. מערבבים Ficoll 70 ו סוכרוז בתמיסה PB1 ולנער היטב עד שהיא נמסה לחלוטין.
    3. לאחר בדיקת פירוק מוחלט לעיל, להוסיף BSA על פני הפתרון ולשמור אותו4oC עד BSA הוא נמס לגמרי (> 4 שעות או למשך הלילה).
  3. הפוך את פתרון איזון (EFS20) והפתרון vitrification (EFS40) בתוך שפופרת 50 מ"ל:
    • EFS20: 20% (v / v) אתילן גליקול, 24% (w / v) Ficoll, ו 0.4 mol / L סוכרוז ב PB1 עם BSA
    • EFS40: 40% (v / v) אתילן גליקול, 18% (w / v) Ficoll, ו 0.3 mol / L * סוכרוז ב PB1 עם BSA
      * לקבלת עוברים מהלחץ BALB / c או ICR, להגדיל את הריכוז של סוכרוז כדי סוכרוז mol / L 0.9 משום שהם רגישים יותר cryodamage 6.
    EFS20 פתרון EFS40 פתרון
    אתילן גליקול 1 מ"ל 2 מ"ל
    FS פתרון 4 מ"ל 3 מ"ל
  4. לעקר את הפתרון על ידי סינון באמצעות filte 0.45 מיקרומטרr. הפוך את aliquots ב 5 צינורות פוליסטירן מ"ל ולאחסן ב 4 ° C. הם יכולים לשמש במשך כ 6 חודשים.
  5. הכנת פתרון הפשרה העובר המכיל 0.75 סוכרוז M (TS1)
    1. ממיסים 7.7 גרם סוכרוז ב PB1 (מוכן בשלב 1.1) ולהביא את הנפח הכולל עד 30 מ"ל. מערבבים על ידי ניעור עדין עד סוכרוז הוא נמס לגמרי.
    2. הוסף 90 מ"ג של ארגון ה-BSA על פני השטח את הפתרון ולהשאיר אותו לעמוד עד שהיא נמסה לחלוטין.
    3. לעקר את הפתרון על ידי סינון.
    4. Aliquot ולאחסן ב 4 ° C. הם יכולים לשמש במשך כחודש 1.

    הערה: TS1 יכול גם להיות מוכנים מ M2 זמינים מסחרית.
    1. ממיסים 7.7 גרם סוכרוז ב M2 ולהביא את הנפח הכולל עד 30 מ"ל.
    2. מערבבים על ידי ניעור עדין עד סוכרוז הוא נמס לגמרי.
    3. לעקר את הפתרון על ידי סינון.
    4. Aliquot ולאחסן בבית 4oC. הם יכולים לשמש במשך כחודש 1.
  6. (TS2 הפשרה פתרוןהמכיל 0.25 סוכרוז M):
    1. מדולל 10 מ"ל TS1 עם נפח של 20 מ"ל PB1 או M2, לפי העניין.
    2. Aliquot ולאחסן ב 4 ° C. הם יכולים לשמש במשך כחודש 1.

2. Vitrification של 2-תא עוברי עכברים

  1. הכן 2 תאים עכבר עוברי על ידי הזדווגות טבעית או קונבנציונלית טכניקות הפריה חוץ גופית.
  2. Aliquot 50 EFS40 μl לתוך cryotube. להלן, לבצע את שאר ההליך vitrification בטמפרטורת החדר.
  3. 50 Aliquot μl של EFS20 על החלק התחתון של 35 מ"מ או 60 מ"מ צלחת פטרי פלסטיק.
  4. העברת עד 30 עוברים אל EFS20 באמצעות זכוכית נימי עם כמות מינימלית בלבד של המדיום לתרבות. הפעלת טיימר 2 דקות.
    הערה: עוברים מקום בחלק התחתון של הירידה. זה גורם להתייבשות יעיל של עוברים. בדוק את המורפולוגיה של העוברים על ידי stereomicroscope. עוברים מיובש להראות מורפולוגיה מצומק, כפי שמוצג באיור. 2A.אם הם לא מספיק מיובש, לחכות עוד 1 או 2 דקות.
  5. בשלב דקות על 1.5, להרים את העוברים מירידה EFS20 עם סכום מינימלי בלבד של הפתרון. העברת אותם EFS40 ב cryotube שהוכנו 2.1 צעד. הערה: לקבלת התוצאות הטובות ביותר, להתאים את התזמון של מרים עוברים כך שכל העוברים ניתן להעביר לתוך EFS40 ב 2 דקות בערך.
  6. חכו דקות 1.
  7. שים את cryotube ישירות לתוך חנקן נוזלי (LN 2).

3. הפשרה מזוגגת 2 תא עוברי עכברים

  1. לפני הפשרה, להכין צלחת עם 10 טיפות של μl בינוני העובר תרבות עוברי התאושש (ראה שלב 3.13). מכסים את צלחת עם שמן ומניחים CO 2 באינקובטור עד לשימוש. הערה: למרות כל אמצעי התקשורת לתרבות העובר שגרתי ניתן להשתמש בניסוי זה, אנו ממליצים התקשורת עם osmolarity גבוה כגון בינוני M16.
  2. חם TS1 ל 37 ° C.
  3. לשים מסכה על הפנים cryogloves. פתח את 2 LN tank ולאחזר cryotube המכילות עוברים.
  4. לפתוח במהירות את החלק העליון של הצינור וזורקים LN 2. חכו 30 שניות כדי למנוע TS1 מן המקפיא בבית לשלב הבא.
  5. השתמש פיפטה 1000ul להוסיף 850 μl של TS1 (37 ° C) לתוך הצינור ומערבבים את הפתרון על ידי pipettings עדין (כעשר פעמים ב 25 שניות) עד הפתרון הוא מומס שווה.
  6. מעבירים את כל נפח של הצינור אל צלחת פטרי פלסטיק 60 מ"מ (או זכוכית שעון) (איור 3A). הערה: עוברים יש לטפל בטמפרטורת החדר (22-25 ° C) עד שהן ממוקמות 2 CO 3.14 חממה בכל שלב.
  7. התחל טיימר 3 דקות.
  8. ב 2 דקות בערך ב TS1, לנער בעדינות את המנה עד בינוני המכיל עוברים משתרע על פני השטח של צלחת (איור 3B). הערה: זה יעזור העוברים לרדת למטה משום שהם צפים קרוב לפני השטח, כאשר הועבר TS1.
  9. להציב שלושה 50 טיפות של μl TS2 על הדואר צלחת (איור 3 ג).
  10. אחרי 3 דקות בתוך TS1, לבדוק את המורפולוגיה של העוברים על ידי stereomicroscope, הם צריכים להיות מכווץ מעט. ראה את המורפולוגיה של העוברים קודם לכן (איור 2B) ומאוחר יותר (איור 2C) ב TS1. הערה: אם עוברים הם עדיין נפוחות, לשמור אותם במשך יותר TS1 1 עד 3 דקות.
  11. הרם את העוברים ולהעבירם ירידה הראשון של TS2 (איור 3D). התחל טיימר 3 דקות
  12. לאחר 3 דקות, העברת עוברים לירידה השני ולאחר מכן ירידה השלישי (איור 3E).
  13. העברת עוברים למדיום תרבות מוכנים בשלב 3.1. עוברים הם בצורת באיור. 2D.
  14. מניחים צלחת בתוך CO 2 באינקובטור. כ -10 דקות מאוחר יותר, העברת עוברים לירידה הבא של המדיום תרבות לשטוף את סוכרוז כי בוצעה על מ TS2.
  15. המשך התרבות חממה CO2 עד החזרת העוברים.
    הערה: העברת embryos על oviducts של נקבות הנמען ביום הפשרה. תרבות לונג במבחנה עלולה להפחית את הכדאיות של עוברים בכמה זנים של עכברים.

4. נציג תוצאות:

במבחנה - ובפיתוח-vivo של עוברים לאחר ההפשרה מוצג לוחות 1 ו -2. היתרונות של פרוטוקול זה הן שרידות גבוהה של עוברים לאחר ההפשרה ואת הישימות שלו רחב זנים שונים של עכברים.

זן מספר כולל של צינורות מספר עוברי מזוגגת ששוחזרו (מס '(%)) נורמלי מורפולוגית (מס '(%)) פיתוח ל blastocysts (מס '(%))
C57BL/6J 20 400 397 (99) 394 (99) 342 (87)
BALB / CA 15 300 296 (99) 282 (95) 238 (84)
ICR 24 480 474 (99) 443 (93) 398 (90)

טבלה 1. בפיתוח חוץ גופית של מזוגגת-מופשר עוברים זנים עכבר משותף

מצב של עוברים מספר הנמען נקבות מספר עוברי העבירה השרשה אתרים (מס '(%)) חיים צאצאים (מס '(%))
טרי 12 180 141 (78.3) 110 (61.1)
מזוגגת 16 242 202 (83.5) 125 (51.7)

טבלה 2. בפיתוח-vivo של מזוגגת-מופשר עוברי עכברים C57BL/6J.

איור 1
איור 1. התכנית הכוללת של הניסוי כולל איזון, vitrification, ואת הפשרת עוברים.

איור 2
באיור 2. המורפולוגיה של העוברים בכל שלב ההפשרה.

איור 3
באיור 3. הפשרה בהליך של עוברים. כל ההליכים מתבצעים בטמפרטורת החדר. (א), הוסף 850 μl של TS1 (37 ° C) לתוך cryotube ולהעביר את כל נפח של הפתרון cryotube על צלחת פלסטיק. בשלב זה, עוברים את המראה הנפוח, כפי שמוצג באיור. 2B. (ב), מורחים את הפתרון על פני השטח של צלחת ידי ניעור עדין. (ג), מקום three 50 טיפות של μl TS2 על צלחת הפלסטיק. (ד), מעבירים את העוברים לירידה הראשון של TS2. לאחר 3 דקות, עוברים את המראה shurunken כפי שמוצג באיור. 2C. (ה), להעבירם סדרתיly לתוך TS2 הנותרים טיפות ואז המדיום לתרבות.

Discussion

מאז הדו"ח הראשון של vitrification העובר עכבר ידי Rall ו פאהי ב -1985 2, שיפורים טכניים שונים נעשו כדי להגדיל את השרידות של עוברים לאחר ההפשרה. אחד השינויים המוצלחים ביותר הושג על ידי שימוש אתילן גליקול כמו cryoprotectant בגלל רעילות נמוכה שלה גבוהה קרום חדירות. יתרונות אלה מאפשרים לנו להתמודד עם העוברים הקפאה בטמפרטורת החדר 4; vitrification שיטות אחרות דורשות העובר מסירת בטמפרטורות קריר הם לא תמיד ישים כמה זנים של עכברים כולל BALB / c 6. אתילן גליקול first vitrification מבוססי פותחה על ידי קסאי et al. בשנת 1990 5,7. בגלל השיטה המקורית היתה אופטימיזציה עבור קשיות כמו מכולות, יש לנו את הפרוטוקול שונה מעט עבור cryotubes, אשר נגיש יותר בקלות במעבדות עמידים יותר בפני נזקים פיזיים. לכן, השיטה vitrification המתוארת כאן עשויה להיות האפליקציהlicable למעבדות רבות תוך שימוש בעכברים כמודל מחקר. השיטה זהה יכול לשמש גם עבור עוברי עכברים בבית morula ושלבי הבלסטוציסט 8 ו - 9 עוברים חולדה. עם זאת, מצאנו לאחרונה כי איכות cryotubes עשויים להשפיע על שיעורי ההישרדות של עוברים לאחר הקפאה, הפשרה. לכן, חשוב לבחון את פני השטח הפנימי של cryotubes עבור החלקות שלה לפני עוברי vitrifying (לדוגמא: לראות את לוח ריאגנטים ספציפיים וציוד).

שיטות Vitrification יש יתרונות רבים על פני שיטות קונבנציונליות הקפאה איטית, אבל הם מטבעם יש חיסרון ביחס לצורך תחבורה. כאשר עוברים מזוגגת צריך להישמר ב -120 מעלות צלזיוס מתחת לשמור על יכולת הקיום שלהם, משלחים יבשים משמשים בדרך כלל עבור תחבורה בטוחה שלהם. משלוחים יבש הם מגושמת וכבדה, ואת שלהם הלוך ושוב הוא יקר, במיוחד עבור תחבורה בינלאומי. עכשיו אנחנו כרגע מפתחים שיטה vitrification חדשאשר עוברים מזוגגת ניתן לאחסן בטמפרטורת קרח יבש (כ -80 ° C) לפחות 7 ימים 10. שיטה זו צריכה להיות vitrification של הדור הבא.

Disclosures

אין לנו שום דבר לגלות.

Acknowledgements

המחקר נערך בשיתוף פעולה עם פרויקט BioResource הלאומי, משרד החינוך, התרבות, הספורט, המדע והטכנולוגיה, יפן.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Bovine serum albumin Merck & Co., Inc. 12657
Ethylene glycol Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 058-00986
Ficoll 70 GE Healthcare 17-0310-10
Glucose Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 041-00595
NaCl Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 191-01665
KCl Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 163-03545
KH2PO4 Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 169-04245
Na2HPO4·12H2O Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 500-04195
MgCl2 ·6H2O Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 135-00165
CaCl2 ·2H2O Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 031-00435
Penicillin G Sigma-Aldrich P-4687
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P-8574
Sucrose Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 196-00015
M16 medium Sigma-Aldrich M7292
M2 medium Sigma-Aldrich M7167
Cryotube Sumitomo Bakelite Co., Ltd. MS-4501 “Cryogenic Vial”

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Whittingham, D. G., Leibo, S. P., Mazur, P. Survival of mouse embryos frozen to -196° and -269°C. Science. 187, 411-414 (1972).
  2. Rall, W. F., Fahy, G. M. Ice-free cryopreservation of mouse embryos at -196°C by vitrification. Nature. 313, 573-575 (1985).
  3. Yoshiki, A. The mouse resources at the RIKEN BioResource center. Exp. Anim. 58, 85-96 (2009).
  4. Mochida, K., Ogura, A. Cryopreservation of embryos in laboratory species. J. Mamm. Ova. Res. 27, 87-92 (2010).
  5. Kasai, M. A simple method for mouse embryos cryopreservation in a low toxicity vitrification solution, without appreciable loss of viability. J. Reprod. Fert. 89, 91-97 (1990).
  6. Dinnyes, A., Wallace, G. A., Rall, W. F. Effect of genotype on the efficiency of mouse embryo cryopreservation by vitrification or slow freezing methods. Mol. Reprod. Dev. 40, 429-435 (1995).
  7. Kasai, M., Mukaida, T. Cryopreservation of animal and human embryos by vitrification. Reprod. Biomed. Online. 9, 164-170 (2004).
  8. Miyake, T. Vitrification of mouse oocytes and embryos at various stages of development in an ethylene glycol-based solution by a simple method. Theriogenology. 40, 121-134 (1993).
  9. Han, M. S., Niwa, K., Kasai, M. Vitrification of rat embryos at various developmental stages. Theriogenology. 59, 1851-1863 (2003).
  10. Jin, B. Equilibrium vitrification of mouse embryos. Biol. Reprod. 82, 444-450 (2010).

Comments

14 Comments

  1. Please, one question about the medium EFS²0 and EFS40:
    Are they prepared simply using the proportions described in the table EG/FS 1:4 and EGFS ²:5 (table), or is it the another formula described in the text (EFS²0: ²0% (v/v) etthylene glycol, ²4% (w/v) Ficoll and 0.4mol/L sucrose in PB1 with BSA. Thanks in advance .Cleide from Brazil.

    Reply
    Posted by: Cleide S.
    May 17, 2012 - 2:23 PM
  2. Thank you for your interesting.
    The first, we prepare FS solution consist of 30% (w/v) Ficoll and 0.5 mol/L sucrose in PB1 with BSA. And mix with ethylene glycol 1:4 or ²:3 for preparation of EFS²0 and EFS40, respectively. Finally, EFS²0 consists with ²0% (v/v) ethylene glycol, ²4% (w/v) Ficoll and 0.4mol/L sucrose in PB1 with BSA.
    Keiji from Japan

    Reply
    Posted by: Keiji M.
    May 18, 2012 - 12:44 AM
  3. Thanks Keiji for your response.
    I have another question: what embryo culture medium did you use until cryopreservation?
    You have very good results.
    congratulations
    Cleide

    Reply
    Posted by: Cleide S.
    May 18, 2012 - 3:28 PM
  4. I have always used CZB medium (Chatot CL, et al. 1989, J. Reprod. Fertil. 86:679-688) containing 5.6 mM glucose, 0.1 mg/ml PVA, and 3.0 mg/ml bovine serum albumin after IVF for around ²0 hrs and after cryopreservation until embryo transfer.
    The data in table 1 were obtained with CZB medium.
    I also recommend you to use KSOM medium instead of CZB medium.

    Keiji

    Reply
    Posted by: Keiji M.
    May 20, 2012 - 9:53 PM
  5. Ok Keiji.
    Thank you very much.
    best regards
    Cleide

    Reply
    Posted by: Cleide S.
    May 21, 2012 - 9:56 AM
  6. Keiji,
    I'm very interested in your protocol. I've just a question about the preparation of the PB1 solution. Do you just dissolve all the components in the order of your list in 100mL distilled H²0 or do you readjust the pH?
    Thanks in advance.
    Maryline from Belgium

    Reply
    Posted by: Maryline K.
    July 6, 2012 - 4:49 AM
  7. Thank you for your interesting.

    About PB1 preparation , you can also find the protocol in the book, "Manipulating the Mouse Embryo" as modified D-PBS.
    We can prepare this solution to dissolve all components in the order of our list.

    However, usually we prepare PBS (-) solution first, which consists of NaCl, KCl, Na²HPO4 and KH²PO4.
    Then, after preparation of x100 concentrated MgCl² and CaCl² solutions, respectively, each 0.1 ml solution are slowly added in 98 ml of PBS(-) solution with gently mixing.
    Because this PBS(+) solution can be stored in refrigerator for several months.
    Before using, we dissolve other reagents, glucose, Na pyruvate and penicillin G.
    This PB1 solution can be used for at least a few weeks by storing in refrigerator.
    In the other hand, we can buy the powder or tablet of PBS(-) from some companies.

    And we do not adjust the pH.

    I hope this coment will be a help for you.

    Reply
    Posted by: Keiji M.
    July 8, 2012 - 11:05 PM
  8. Thank you very much! Your coment is really helpful.
    Maryline

    Reply
    Posted by: Maryline K.
    July 9, 2012 - 2:36 AM
  9. Hello,
    I wanted to try this method using 8-cell embryo. I noticed that the freezing media the PB1 is with BSA. How much BSA do you add?

    Thanks,
    Agnes
    Thanks,

    Reply
    Posted by: Anonymous
    April 5, 2016 - 5:30 PM
  10. Thank you for your interesting.

    PB1 contains 3 mg/ml of BSA. Finally, vitrification solution (EFS40) contains 1.26 mg/ml of BSA.

    And this method is effective for the embryos at each stage from 1-cell to early blastocyst include 8-cell stage.

    Reply
    Posted by: Keiji M.
    April 6, 2016 - 8:30 PM
  11. Hello,
    I tried the procedure but I found out that it is very hard to see the embryos after transferring them in EFS20. They floated and changed shape. I lost half the number of the embryos that I collected. Is there any practical tip that you can tell me to avoid this problem?
    Also, could I harvest the embryos in M2 and freeze them using you freezing media?

    Thanks again.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    April 8, 2016 - 1:22 PM
  12. Thank you for your interesting.

    If you can release embryos with small volume of medium near the bottom of EFS20 solution, you can find all embryos in small area. And we also recommend that it becomes easy to discover embryos at the surface of EFS20 solution by control of the light with the adjustment lever.

    The developmental ability of embryos will decrease at outside of incubator. However, the embryos must be left outside of incubator more than 10 min., the medium contains HEPES (ex. M2, HEPES-KSOM) or PB1 solution should be used.

    Keiji

    Reply
    Posted by: Keiji M.
    May 2, 2016 - 1:13 AM
  13. Hi,

    I think there is a mistake in the step 1.2.1: Add the following chemicals to 14 ml of PB1 solution in a 50 ml tube.
    Shouldn't it be 20ml?

    Thanks,
    Tony

    Reply
    Posted by: Tony N.
    April 28, 2016 - 4:16 AM
  14. Hi, Tony

    You are right.
    Total volume will be 20 ml.
    The conical tube of 50 ml is useful for preparation of this solution.

    Thank you.

    Keiji

    Reply
    Posted by: Keiji M.
    May 2, 2016 - 1:20 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Usage Statistics