Создание вирусом Эпштейна-Барра роста трансформированных лимфобластоидных клеточных линий

Immunology and Infection
 

Summary

Мы описываем метод генерации преобразован В-клеток линий с использованием вируса Эпштейна-Барра. Мы также иллюстрировать роман анализа, которая позволяет обнаруживать В-клеток суждено трансформироваться еще в три дня после заражения.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Hui-Yuen, J., McAllister, S., Koganti, S., Hill, E., Bhaduri-McIntosh, S. Establishment of Epstein-Barr Virus Growth-transformed Lymphoblastoid Cell Lines. J. Vis. Exp. (57), e3321, doi:10.3791/3321 (2011).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Заражение В-клеток с вирусом Эпштейна-Барр (ВЭБ) ведет к увековечению распространения и последующего, в результате создания лимфобластоидных клеточных линий (LCL) в пробирке. Поскольку LCL являются латентно инфицированных ВЭБ, они обеспечивают модели системы расследования EBV задержки и вирусов управляемой B пролиферации клеток и опухолей 1. LCL были использованы для представления антигенов в различных иммунологических анализах 2, 3. Кроме того, LCL может быть использован для создания человеческих моноклональных антител, 4, 5 и обеспечивают потенциально неограниченный источник, когда доступ к первичным материалам биологических ограничено 6, 7.

Различные методы были описаны для создания LCL. Ранее методы включали использование митогены, таких как фитогемагглютинином, липополисахарид 8 и 9 pokeweed митоген увеличить эффективность EBV-опосредованной увековечение. Совсем недавно, другие использовали immunosupprизобразительных средств, таких как циклоспорин для подавления Т клеточного убийства зараженных клеток B 7, 10-12.

Значительный период времени от инфекции EBV к созданию клеточных линий диски требование для более быстрого и более надежные методы ВЭБ-приводом B преобразования рост клеток. Используя сочетание высокого титра ВЭБ и иммуносупрессивных агентов, мы способны постоянно заражают, преобразования и создания LCL из В-клеток в периферической крови. Этот метод использует небольшое количество мононуклеарных клеток периферической крови, которые заражены в пробирке скопления клеток может быть доказана. Присутствие CD23 с ВЭБ в присутствии FK 506, Т-клеток иммунодепрессанты. Традиционно, следствием пролиферации клеток контролируется визуализации микроскопических кластеров клеток примерно через неделю после инфицирования ВЭБ. Сгустки LCL можно увидеть невооруженным глазом в течение нескольких недель. Мы описываем анализ, чтобы определить рано, если ВЭБ-опосредованной гrowth преобразование успешным еще до того, микроскопические скопления клеток может быть доказана. Присутствие CD23 привет CD58 + клеток наблюдалось уже через три дня после инфекции указывает на успешный результат.

Protocol

1. ВЭБ массоподготовки

  1. Субкультура экспоненциально растущей В95-8 клеток (АТСС CRL # 1612; 13) при 3 х 10 5 клеток / мл в 75 см 2 культуре ткани колбу с использованием стерильной техники. Клетки, выращенные в полной RPMI 1640, содержащей 10% тепла инактивированной эмбриональной телячьей сыворотки (FBS), пенициллина / стрептомицина на 100U/ml и 100 мкг / мл, соответственно, и амфотерицин на уровне 0,5 мкг / мл при 37 ° С в присутствии 5% CO 2.
  2. Сорок восемь часов спустя, ресуспендирования клеток в свежей полной RPMI 1640 на 1 х 10 6 клеток / мл. Для стимулирования производства вируса, стимулируют клетки с 20ng/ml tetradecanoyl форбол ацетат (ДТС) в течение 1 часа в стандартной СО 2 инкубатора. Вымойте клетки трижды RPMI 1640, чтобы удалить тонн в год.
  3. Ресуспендируют клеток в первоначальный объем полной RPMI 1640 (от 1,2) и поместить колбу в CO 2 инкубаторе в течение 96 часов. Этот метод был показан для получения высоких титров инфекционной номинальной вирусчастиц 6.
  4. Центрифуга при 600 х г в течение 10 мин при 4 ° С до отдельных EBV-содержащих супернатант культуры из клеток. Фильтры супернатанта через 0,45-микронный фильтр, Алиготе, и хранить при температуре -70 ° С в течение более года.
    Альтернативой является получение супернатант из В95-8 клеток, содержащих EBV из АТСС (VR-1492) и использовать в разведении рекомендованных АТСС.

2. Выделение мононуклеарных клеток периферической крови (МКПК)

  1. Ничья 10 мл крови от донора в гепаринизированной шприца или гепаринизированной трубки крови. Развести крови с 20 мл PBS при комнатной температуре в 50 мл коническую трубку.
  2. Подложка разбавленной крови с 15 мл Ficoll Hypaque лимфоцитов средой разделения. Центрифуга при 225 х г без тормозов при комнатной температуре в течение 30 минут.
  3. Удалить лейкомассы и передачи в новый 50 мл коническую трубку. Повышение объема до 50 мл PBS и спина при 600 мкг при комнатной температуре в течение 10 минут.
  4. Pouт от супернатант. Вымойте клеток ресуспендирования гранул в 50 мл PBS и вращается со скоростью 600 х г при комнатной температуре в течение 10 минут. Мыть два раза больше в подобной манере.
  5. Ресуспендируют отмытых клеток в 1 мл полной RPMI. Используйте 5 мкл клеток для подготовки 1 / 10 разведения в Трипановый синий. Граф живых клеток использованием гемоцитометра.
  6. Отрегулируйте громкость с помощью полной RPMI в 25 см 2 колбы культуры ткани для получения концентрации клеток из 2 х 10 6 / мл.

3. Инфекция EBV

  1. Добавить FK506 (А. Г. Научно) для клеточной суспензии от 2,6 до конечной концентрации 20 нМ. Место колбу в CO 2 инкубаторе при температуре 37 ° С в течение одного часа.
  2. Быстрое таяние аликвоту ВЭБ. Удалить колбу из инкубатора и добавить к EBV клеток в 1 / 10 разведения. Как правило, это разведение обеспечивает МВД 50-100. Swirl колбы перемешать и поместить его в вертикальном положении в CO 2 инкубаторе при температуре 37 ° C.

Примечание йна шаге 4, выполнены, чтобы предсказать успех, это необязательный шаг. Если Шаг 4 должны быть выполнены, то вам нужно для инкубации дополнительные колбы ООН-инфицированных РВМС на 2 х 10 6 клеток / мл в качестве контроля.

4. Определение пролиферирующих популяцию клеток (Необязательный шаг)

  1. Подготовка FACS буфера: PBS + 5% FBS. Хранить при температуре 4 ° С.
  2. Сделайте следующее антител смесей в объеме 50 мкл каждого для окрашивания клеток в шаге 4.6. Антитела разведения должны быть сделаны в FACS буфера, содержащего 1mg/ml мыши IgG (Sigma) для подавления неспецифическое связывание антителами.
    1. одной окрашивали PE сопряженных анти-CD23 антител (1 / 50 разбавления)
    2. одной окрашивали FITC сопряженных анти-CD58 антител (1 / 50 разбавления)
    3. одной окрашивали PE-Cy5 сопряженных анти-CD19 антител (1 / 50 разбавления)
    4. тройной окрашивают в течение CD23, CD58, CD19 и (1 / 50 разбавления каждого)
    5. одной окрашивали PE сопряженных контроль изотипаантител соответствуют CD23-PE (в той же концентрации, как анти-CD23 антитела)
    6. одной окрашивали FITC конъюгированных антител контроль изотипа согласован с CD58-FITC (при той же концентрации, как анти-CD58 антитела)
    7. одной окрашивали PE-Cy5 конъюгированных антител контроль изотипа согласован с CD19-PE-Cy5 (при той же концентрации, как анти-CD19 антитела)
    8. тройной окрашивали все три антитела изотипа контроля.
    Временного хранения смесей при температуре 4 ° С в темноте.
  3. В третий день после контакта с ВЭБ, мягко водоворот колбу для получения более равномерного клеточной суспензии. Удалить из колбы 2 мл в 2 мл пробирку Эппендорфа. Спиновые трубки в микроцентрифужных при 3000 оборотов в минуту при комнатной температуре в течение 3 минут.
  4. Аспирируйте супернатант и ресуспендирования клеток в буфер FACS на 5 х 10 6 до 1 х 10 7 клеток / мл.
  5. Удалить восемь 50 мкл аликвоты в отдельных трубок Эппендорф или 96-и V-нижней пластине. Спиновые трубы или пластины при 1500 х гв течение 3 минут.
  6. Удалите супернатант и вихревые трубки / пластины. Ресуспендируют клеток в каждой пробирке / лунку в 50 мкл FACS буфера, содержащего соответствующие разведения антител подготовлен в 4.2.
  7. Инкубируйте труб / пластин на льду в темноте в течение 30 минут. Центрифуга клеток при 3000 оборотов в минуту в течение 3 минут, удалить супернатант, и добавьте 200 мкл буфера FACS. Центрифуга клетки снова и удалите супернатант для завершения стирки. Повторить еще два стирок.
  8. Ресуспендируют клеток в 200 мкл FACS буфера и получить данные с помощью проточного цитометра, приобретя 20 000 событий / трубы.
  9. Анализ данных с помощью WinMDI (бесплатный для FACS анализ данных на ПК). Ворота на живые клетки с использованием форвардных и боковые профили разброс. Затем ворота живых клеток на экспрессию CD19 + (В-клеток маркера) после сравнения с клетками окрашивали антителами изотипа контроля соответствуют анти-CD19 антител. Участок CD19 +-клеток жить с интенсивность флуоресценции для CD23 на оси х и интенсивность флуоресценции для CD58 на оси Y.. Определите CD23 + CD58 + и клеток по сравнению с ВЭБ, подвергшихся воздействию клеток, окрашенных соответствие антитела изотипа контроля. Присутствие CD23 привет CD58 +-клеток в ВЭБ, подвергшихся воздействию культуры (рис. 2C) прогнозирует успешный результат ВЭБ-инфицированных роста трансформированных клеток. В противоположность этому, CD23 привет CD58 + клеток не возникают, когда клетки не подвергаются EBV (рис. 2A) или подвергаться без увековечивания штамм EBV (рис. 2В). CD23 + CD58 привет клетки были экспериментально продемонстрировано пройти распространение и впоследствии установить LCL (14).

5. Расширение и криоконсервации LCL

  1. Визуализация клеток с помощью световой микроскопии: По неделю после инфицирования EBV, кластеры клеток видны под световым микроскопом. На рисунке 3 показан пример ранних микроскопических кластеров (рис. 3В) в колбу.
  2. С течением времени микроскопические кластеры становятся большими, что скопления виднымакроскопически в колбу. Рис 3C показывает большие скопления клеток в установленном LCL с помощью световой микроскопии.
  3. Кормление клетки: Двойной объем культуральной среды в культуре колбу на 12 день. Впоследствии расширить культуру, увеличивая его объем в 2-3 раза использованием полной RPMI.
  4. Периодичность кормления клетки должны быть определены на основе скорости роста клеток. При культуральной среде становится желтым, как правило, время, чтобы заменить средства массовой информации, что и выше. Как правило, это происходит один раз в неделю. Однако, некоторые клеточные линии, возможно, придется питаться более или менее часто. Развернуть культуры до 75-100 мл в течение ближайших нескольких недель.
  5. Криоконсервация: При замораживании до клетки, клетки центрифуге при 600 х г в течение 10 минут при комнатной температуре. Удалить супернатант и ресуспендируют осадок клеток в холодную среду замораживания содержащей 90% FBS и 10% диметилсульфоксида при 1 х 10 7 клеток / мл. Место трубки в жидком азоте.

6. Представитель результаты:

Успешный результат предсказывается наличие CD23 + CD58 привет клеток. Примерно 2-3% живых клеток на 3-4 день после контакта с ВЭБ должны иметь эту анкету (рис. 2С). Другие субпопуляции CD23 +, CD23 -, CD58 + и CD58 - клеток наблюдается после контакта с ВЭБ показать минимальное распространение 14. Un-инфицированные клетки (рис. 2A) и клетки подвергаются EBV от HH514-16 клетки (рис. 2В), укрывательство, не увековечивать штамм EBV, не демонстрируют CD23 + CD58 привет клеток.

Вы также можете визуализировать клетки с помощью световой микроскопии для контроля успеха: Как упоминалось ранее, в течение недели после инфицирования EBV, небольшие скопления клеток в колбе видны с помощью световой микроскопии (рис. 3В). Как прогрессирует время и клетки развиваются в LCL, микроскопические кластеры становятся крупнее (рис. 3C), что скопления видны макроскопически в колбу.


Рисунок 1. Workflow для генерации и криоконсервации лимфобластоидных клеточных линий. Периферической крови центрифугируют через градиент Ficoll. РВМС присутствует в пальто Баффи установленного градиента подвергаются FK506 с последующим добавлением ВЭБ. EBV, подвергшихся воздействию клетки выращивают при температуре 37 ° С в присутствии 5% CO 2, установить и в дальнейшем расширять LCL для криоконсервации.

Рисунок 2
Рисунок 2. Определение субпопуляции лимфоцитов ожидается пройти распространение после контакта с ВЭБ. Un-инфицированных РВМС () или РВМС подвергается EBV основе HH514-16 клеток (B) или В95-8 клеток (C) в присутствии FK506 было собрано на 3 день. Клетки окрашивали флуорохромом сопряженных антител, направленных против CD19, CD23, CD58 и. После стробирования на живой клеткес, не-инфицированных () и ВЭБ, подвергшихся воздействию (В и С) CD19 +-клетки были исследованы на экспрессию CD23 и CD58. Субпопуляции В-клеток CD58 выражения и высокий уровень CD23 (CD23 привет CD58 +), наблюдается только в клетках, подвергавшихся к трансформации компетентных EBV (производный от В95-8 ячеек), изображен.

Рисунок 3
Рисунок 3. Визуализация клеточных кластеров в ВЭБ-инфицированных клеток. РВМС лечили FK506 и инфицированы EBV. Un-инфицированных (А) и ВЭБ, подвергшихся воздействию (В) клетки были рассмотрены одной недели после заражения фазовый контраст микроскопии (10х увеличение). Пять-недельных клеточной линии лимфобластоидных показано на C.

Discussion

Метод, описанный в этой статье генерирует LCL-доноров периферической крови с быстрым увековечение и криоконсервации раз. Благодаря использованию FK 506, Т-клеток иммунодепрессанты, а также высокие титры инфекционного вируса, мы можем способствовать распространению ВЭБ-инфицированных В-клеток из периферической крови мононуклеаров. Эти меры делают описанный метод более эффективным, в результате быстрого роста клеток для последующих экспериментов.

Традиционно, рост трансформация была контролируется визуализации скопления клеток с помощью световой микроскопии примерно через неделю после контакта с ВЭБ 6, 15. Тем не менее, кластеризация клеток не из конкретных показателей ВЭБ-опосредованного роста трансформации. Ранее мы уже продемонстрировали последовательную идентификацию пролиферирующих клеточных популяций с помощью проточной цитометрии 14, обеспечивая точный и конкретный метод для определения успешного результата уже в три дня на кормеэ воздействия В-клеток в ВЭБ.

Disclosures

Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgments

Это исследование финансировалось за счет грантов NIH K08 AI062732, K12 HD001401 и 1UL1RR024139-02 и Исследования здоровья детей Грант Чарльз Х. Гуда Фонда SB-M. и Фонд исследований в Университете штата Нью-Йорк в Стони Брук.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Amphotericin B Fisher Scientific BP 928-250
Dimethylsulfoxide Sigma-Aldrich D 2650
Fetal bovine serum, heat-inactivated Sigma-Aldrich F 4135
Ficoll Hypaque lymphocyte separation media Mediatech, Inc. 25-072
FK506 A.G Scientific F 1030
IgG from mouse serum Sigma-Aldrich I 8765
Mouse anti-human CD23 conjugated to PE BD Biosciences 555711
Mouse isotype IgG1 conjugated to PE BD Biosciences 554680
Mouse anti-human CD58 conjugated to FITC Pierce, Thermo Scientific MA1-82159
Mouse isotype IgG1 conjugated to FITC BD Biosciences 550616
Mouse anti-human CD19 conjugated to PE-Cy5 BD Biosciences 555414
Mouse isotype IgG1 conjugated to PE-Cy5 Dako X 0955
Penicillin/Streptomycin GIBCO, by Life Technologies 15140-122
RPMI 1640 media Sigma-Aldrich R 8758
Tetradecanoyl phorbol acetate (TPA) Calbiochem 407952
FACS Buffer (1X Phosphate Buffered Saline + 5% Fetal Bovine Serum)

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Thorley-Lawson, D. A., Gross, A. Persistence of the Epstein-Barr virus and the origins of associated lymphomas. N. Engl. J. Med. 350, 1328-1337 (2004).
  2. Kubuschok, B. Use of spontaneous Epstein-Barr virus lymphoblastoid cell lines genetically modified to express tumor antigen as cancer vaccines: mutated p21 ras oncogene in pancreatic carcinoma as a model. Hum. Gene Ther. 13, 815-827 (2002).
  3. Kuppers, R. B cells under influence: transformation of B cells by Epstein-Barr virus. Nat. Rev. Immunol. 3, 801-812 (2003).
  4. Traggiai, E. An efficient method to make human monoclonal antibodies from memory B cells: potent neutralization of SARS coronavirus. Nat. Med. 10, 871-875 (2004).
  5. Bernasconi, N., Traggiai, E., Lanzavecchia, A. Maintenance of serological memory by polyclonal activation of human memory B cells. Science. 298, 2199-2202 (2002).
  6. Oh, H. -M. An efficient method for the rapid establishment of Epstein-Barr virus immortalization of human B lymphocytes. Cell Prolif. 36, 191-197 (2003).
  7. Ventura, M. Use of a simple method for the Epstein-Barr virus transformation of lymphocytes from members of large families of Reunion Island. Hum. Hered. 38, 36-43 (1988).
  8. Henderson, E. Efficiency of transformation of lymphocytes by Epstein-Barr virus. Virology. 76, 152-163 (1977).
  9. Bird, A. G. Characteristics of Epstein-Barr virus activation of human B lymphocytes. J. Exp. Med. 154, 832-839 (1981).
  10. Neitzel, H. A routine method for the establishment of permanent growing lymphoblastoid cell lines. Hum. Genet. 73, 320-326 (1986).
  11. Pelloquin, F., Lamelin, J. P., Lenoir, G. M. Human B lymphocytes immortalization by Epstein-Barr virus in the presence of cyclosporin A. In Vitro Cell Dev. Biol. 22, 689-694 (1986).
  12. Pressman, S., Rotter, J. I. Epstein-Barr virus transformation of cryopreserved lymphocytes: prolonged experience with technique. Am. J. Hum. Genet. 49, 467-467 (1991).
  13. Miller, G. Epstein-Barr virus: Transformation, cytopathic changes, and viral antigens in squirrel monkey and marmoset leukocytes. Proc. Nat. Acad. Sci. 69, 383-387 (1972).
  14. Megyola, C., Ye, J., Bhaduri-McIntosh, S. Identification of a sub-population of B cells that proliferates after infection with Epstein-Barr virus. Virol. J. 8, 84-84 (2011).
  15. Tosato, G., Cohen, J. Generation of Epstein-Barr virus (EBV)-immortalized B cell lines. Current Protocols of Immunology. Chapter 7, 22-22 (1991).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics