Экс естественных Мимикрия нормального и аномального человека Кровотворение

Bioengineering

Your institution must subscribe to JoVE's Bioengineering section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

3D системы кроветворения культуры описывается с помощью человеческого мозга и крови лейкозных клеток костного мозга. Метод основан на использовании синтетических пористых полиуретановых леса покрыты белки внеклеточного матрикса. Это леса также является адаптируемой, чтобы приспособить широкий диапазон ячеек.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Mortera-Blanco, T., Rende, M., Macedo, H., Farah, S., Bismarck, A., Mantalaris, A., et al. Ex vivo Mimicry of Normal and Abnormal Human Hematopoiesis. J. Vis. Exp. (62), e3654, doi:10.3791/3654 (2012).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Гемопоэтических стволовых клеток требует уникального микроокружения для того, чтобы поддерживать формирование клеток крови 1, костного мозга (КМ) представляет собой сложную трехмерную (3D) ткань которой кроветворения регулируется пространственно организованных сотовой микросреды называют ниши 2-4. Организация BM ниши является критическим для функции или дисфункции нормальных и злокачественных BM 5. Поэтому более глубокое понимание в естественных условиях микросреды использование бывших мимика естественных условиях поможет нам выяснить молекулярные, клеточные и микросреды детерминанты возникновение и развитие лейкоза 6.

В настоящее время кроветворные клетки культивируют в пробирке в двумерной (2D) культуры тканей колбы / и пластины 7, требующих, как со-культуры аллогенных или ксеногенных стромальных клеток или добавление экзогенных цитокинов 8. Эти условия являются искусственными и отличаются от в естественных условиях 9,10.

Здесь мы представляем новую 3D костного мозга культуры система, которая имитирует в естественных условиях окружающей среды роста 3D и поддерживает мультилинейной кроветворения в отсутствии экзогенных факторов роста. Высокопористые леса, используемые в этой системе из полиуретана (ПУ), способствует высокой плотности роста клеток по более высокой удельной площадью поверхности, чем обычные культуры монослоя в 2D 11. Наши работы показали, что эта модель поддерживает рост человеческой пуповинной крови (ЦБ) мононуклеарных клеток (МНК) 12 и первичных лейкозных клеток в отсутствии экзогенных цитокинов. Этот роман мимика 3D обеспечивает жизнеспособную платформу для развития человека экспериментальной моделью для изучения кроветворения, а также изучить новые методы лечения лейкемии.

Protocol

1. Леса Производство и Био-функционализации Строительные леса

  1. Для изготовления PU леса (размер пор 100-250 мм, пористость 90-95%) в виде дисков чашки Петри, используя термически индуцированного расслоения 13 Процесс приготовления раствора полимера (5 Вт в диоксане%) с последующим замораживанием и последующим растворителя сублимации (рис. 1а).
  2. Вырезать диск леса на кубики 0,5 х 0,5 х 0,5 мм до покрытия ECM белков (рис. 1б).
  3. Предварительно мокрый лесов путем погружения их в этанол (70%) в течение 1 мин, а затем передать в фосфатный буферный раствор (PBS) в течение 20 мин. Затем центрифуги в течение 10 мин при 3630 мкг и добавить раствор белка.
  4. Центрифуга лесов в растворе белка на 1420 мкг в течение 20 мин.
  5. Для того, чтобы разблокировать поверхности поры и позволяют клеткам посеяны проникнуть глубже в леса, центрифуги леса один раз в 910 мкг в течение 10 минутв PBS.
  6. Стерилизовать леса, используя комбинацию из 8 мин воздействия при 230 В, 50 Гц, 0,14 А, УФ-лампы, с погружением в течение 2 ч в этанол (70%). После этого промыть леса дважды в PBS, прежде чем добавлять Искова изменения Дульбекко среды (IMDM) с добавлением 30% эмбриональной телячьей сыворотки (FBS) и 1% пенициллина и стрептомицина (P / S). Поместите лесов в увлажненном инкубаторе в течение 3 дней при 37 ° С и 5% CO 2 до использования. Стерильные леса расположены в 24 хорошо культуре ткани пластины (одна леса на лунку).

2. Одноядерных изоляторе и леса Посев

  1. Извлечение человека MNC из пуповинной крови или лейкозных образцы костного мозга, используя Ficoll-Paque центрифугирования в градиенте плотности (35 мин со скоростью 1500 оборотов в минуту) (рис. 1в).
  2. Ресуспендируйте MNC в IMDM, содержащей 30% FBS и 1% P / S.
  3. Семенной 100 мкл суспензии МНК (2 × 10 6 кл / леса) на строительные леса помощью микро-пипетки.
  4. Инкубируйте семенами лесов при 37 ° С до 5% CO 2 в течение 10 минут для клеток, чтобы обосноваться в лесах.
  5. Пополните каждую лунку с 1,5 мл IMDM, содержащей 30% FBS и 1% P / S и место также пластин в инкубаторе при температуре 37 ° С и 5% CO 2 на протяжении всего эксперимента.
  6. Отобранный леса подвергаются ежедневно, смена всех средствах массовой информации.

3 В местах пролиферации клеток и морфология. МТС, SEM и Cytospins

  1. МТС анализа: Удалить из культуре, не-семенами и двумя семенами леса и места в чистоте и новый 24-пластины. Добавьте 1 мл среды и 200 мкл раствора МТС и инкубировать в течение 3 ч при температуре 37 ° С и 5% CO 2.
    1. Возьмите 8 х 100 мкл пробы супернатант, место в 96-луночного планшета и мерой поглощения при 490 нм с использованием планшетного.
  2. Сканирующей электронной микроскопии (SEM): В разные моменты времени в гоэлектронная культура, удалите лесов посеян с ТНК из средств массовой информации, и исправить с 2,5% PBS-буфере глутаральдегида решение в течение 40 мин при 4 ° С, затем промыть два раза PBS.
    1. Высушенные леса в серии градуированных этанола (25, 50, 70, 80, 90, 95 и 100%), каждый в течение 10 мин и сухой в асептических условиях в течение 4 часов.
    2. Раздел образцов, а затем распыление покрытия их золотом в атмосфере аргона в течение 2 мин до оценки SEM, использовать ускоряющее напряжение 20 кВ.
  3. Cytospins: собрать 2,0 х 10 4 клеток / слайд аспирации клеток из леса в различные моменты времени в культуре.
    1. Центрифуга клеток на стекле в течение 3 мин при 1500 оборотах в минуту.
    2. Пятно слайды с Райт-Гимза изменения и наблюдать с помощью оптического микроскопа. F-Soft System просмотра изображений можно использовать для съемки фотографий.
    3. Промойте скользит до микроскоп наблюдений.
  4. M ultiphoton анализа: Fix лесов в различные моменты времени с паров этанола (70%) в течение ночи, а затем сухой и хранить при температуре -20 ° C до последующего анализа. До визуализации с многофотонной разделе микроскоп леса в 30 мкм толщиной слайды и влажный с PBS.
    1. Блок семенами лесов в PBS с 10% эмбриональной телячьей сыворотки в течение 30 мин при комнатной температуре.
    2. Инкубируйте леса ночи при 4 ° С в темноте с 1:50 разведение первичных моноклональных антител: мышь анти CD71 человека.
    3. Вымойте образцы в три раза PBS и пятна с вторичными антителами: анти-мышь Alexa Fluor 488 в течение 1 часа при комнатной температуре в темноте.
    4. Вымойте образцы три раза PBS и наблюдать с использованием конфокальной микроскопии x60 воды излучение объективом.
    5. Флуорофора Alexa Fluor 488 возбуждается на 488 нм в пульсирующий лазеров. Volocity 5.3.2 программное обеспечение может быть использовано для последующего анализа изображений.
jove_title "> 4. проточной цитометрии анализа клеточной популяции

  1. Перед сотовой анализа в проточной цитометрии (FC), маркировать клетки интерес с соответствующими иммунофлюоресценции для выявления антител. Количество образцов готовят в соответствии с выбранным для обнаружения антител. Для обнаружения MNC следующую комбинацию антитела используются: CD45-FITC/CD71-PE/CD235a-PE-Cy5.
  2. Аспирируйте клеток из леса в различные моменты времени и центрифуги. Растворить осадок клеток около 1x10 6 клеток в 100 мкл буфера FC (PBS + 0,1% азида натрия) и добавить 10 мкл каждого красителя флуоресценции антител. Инкубируйте клетки в течение 30 мин при 4 ° С, мыть два раза PBS и, наконец, повторно приостанавливать в буфер FC.
  3. Загрузка образца в окрашенных цитометр потока с изотипа контроль, чтобы установить "отрицательность" антитела выражения и калибровки обнаружение каналов с контролем цитометр потока.
  4. Читайте образца окрашенных W го три различных антител и, наконец, представлять данные в использовании WinList программного обеспечения.

5. Представитель Результаты

Например гемопоэтических клеточной кинетики роста без того экзогенных факторов роста показано на рисунке 2. В связи с гетерогенный характер кроветворения, два разных клетках: нормальные и аномальные гемопоэтические клетки показано на рисунке. На рисунке 2А, клеточную пролиферацию в человека CBMNC очевидно, через 28 дней в культуре. Рисунок 2B показывает кинетики роста в мимикрии с использованием человеческих клеток первичной лейкозных. Клеточную пролиферацию оценивается с помощью анализа МТС, который измеряет сотовой метаболической активности по отношению к поглощению. В обоих случаях клетки распространились и установили в модель. Различия в кинетике роста наблюдаются, нормальный гемопоэтических клеток устанавливают культуре быстрее, чем лейкозных клеток.

_content "> морфологии собранных клеток даже после 28 дней культуры в отсутствии экзогенных факторов роста было характерно для нормальных гемопоэтических клеток (рис. 3А) и лейкозных клеток (рис. 3В). Центральный участки леса были проанализированы с помощью SEM после леса были сняты с культурой и показал распространение клеток отобранные по всему лесов, создание себя в кластерах и в "нишу как" структуры (рис. 3А "и В '). Рисунок С показывает размер пор и распределения в unseeded строительные леса используются в качестве контроля. Многофотонная микроскопия через 28 дней был использован для выделения распределение клеток в 3D леса на месте, и она показала наличие эритроидных островов в центральных частях леса (рис. 4) по выражению маркера CD71, положительная в эритробласты. Это доказывает важность зрелый и созревания клеток-дю-Кольцо эритропоэза. Наконец, проточной цитометрии графики клеток до посева показывает разницу в фенотипе гемопоэтических клеток, где рис 5А представляет нормальные гемопоэтические клетки человека: CBMNCs и рис 5B показывает аномальные гемопоэтические клетки: первичные клетки лейкозных. Уровни CD235a + и CD45 + соответствующий эритроцитов и лейкоцитов, соответственно, выше в нормальных образцов, чем в лейкозных подчеркнув hemoblastic природе лейкозов.

Рисунок 1
Рисунок 1. Иллюстрация процессов в ПУ эшафот производства и био-функциональных групп. А) PU растворяется в диоксане (5 Вт%) и термически индуцированных фаза процесса разделения и последующего растворителя сублимации леса производится, как описано Safinia и др. 13. Б) диск эшафот затем разрезается Intо кубиками 0,5 х 0,5 х 0,5 мм, а затем покрыты путем центрифугирования с внеклеточной матрицы (ECM) белков. C) MNC извлекаются из пуповины человека ЦБ или BM стремление использованием центрифугирования в градиенте плотности и семенами (2х10 6 кл / леса) в ПУ леса с пипетки.

Рисунок 2
На рис. 2 пролиферацию клеток измеряется с помощью анализа МТС) с использованием пуповинной крови человека МНК, В) с использованием человеческих клеток первичной лейкозных. Столбцы показывают рост клеток с течением времени, когда засевали в ПУ леса без добавления экзогенных цитокинов.

Рисунок 3

Рисунок 3: морфология клеток и распределение вокруг леса использованием cytospins, scanniнг электронной микроскопии. (AB) представитель Райт-Гимза окрашенных cytospins А) пуповинной крови мононуклеаров собраны из PU леса через 28 дней культуры, и б) костный атмосферный лейкозных клеток собраны из PU леса через 14 дней культуры. И эксперименты были проведены в цитокинов свободном состоянии. (А'-В ') представитель центрального участков леса PU микрофотографии РЭМ) семенами МНК пуповинной крови и B') лейкозных клеток после того, культивировали в течение 28 дней, и C) с контролем леса нет клеток.

Рисунок 4

Рисунок 4. Многофотонные микрофотография PU лесов семенами с МНК пуповинной крови после 28 дней в области культуры и окрашенные с маркером CD71 эритроидных.

Рисунок 5Рисунок 5. Проточная цитометрия 3D интернет-участки окрашиваются для CD45, CD71 и CD235a поверхностных маркеров выражения. Изотипа управления получили также представлены для сравнения относительной интенсивности флуоресценции. Группа показывает человека пуповинной крови мононуклеаров положительный для вышеуказанных маркеров, группа B показывает человека лейкозных клеток первичной.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Экс живом 3D системе культуры, представленные здесь позволяет установить 3D биомимикрия кроветворения, что повторяет оригинальный BM архитектуры и клеточный фенотип зависят от экзогенных цитокинов. 3D модель дает структуру и микросреда, которая позволяет нормальной и аномальные гемопоэтические клетки размножаться в условиях, аналогичных тем, которые встречаются в естественных условиях.

Выбор полимерного материала леса представляют собой важный шаг в биомимикрия дизайна. Важные преимущества биоматериалов привели к повышению интереса к полимерам, которые имитируют среду в естественных условиях, обеспечивая необходимую архитектуру, структурные свойства и необходимые биосигналов. Полимеры должны соответствовать минимальным требованиям, необходимых для их применения в биомедицине, потому что они всегда находятся в непосредственном контакте с живыми клетками, которые являются чувствительными к их ближайшего окружения. В общем, яСделка леса должны быть биологически совместимым, очень пористая, с достаточной механической прочностью, чтобы поддерживать определенный 3D структуру, высокую площадь поверхности на соотношение объема производства и воспроизводимыми. ПУ включает в себя все эти свойства вместе, хотя высокая пористость и механическую прочность могут быть адаптированы и изменены в зависимости от температуры закалки в процессе советы. В результате этого биомимикрия могут быть адаптированы к другим типам клеток путем увеличения или уменьшения пористости и размера пор по мере необходимости.

Леса в этом эксперименте покрыта коллагена ECM белков типа I; этот белок, вместе с другими белками ECM были протестированы ранее с нашей 3D-модели 11. Это показало, что коллаген I типа ускорился клеточной адгезии и был выбран по этой причине. Покрытие может быть изменена с помощью различных белков ECM в зависимости от типа клеток, которые изучаются. Преимуществом для включения ECM белков синтетические леса яс, что не только они обеспечивают клеточный обязательной последовательности клеточной адгезии, а также предлагают вторичное взаимодействие с другими белками ECM и взаимодействия с факторами роста, которые стабилизируют связывания клеток повышая адгезию клеток, что приводит к улучшению клеточного роста и созревания.

Многочисленные исследования были проведены на бывшего кроветворения естественных использованием 2D и 3D систем, и все они включают в себя добавление аномально высокими концентрациями экзогенных цитокинов. Эти исследования помогли выяснить молекулярные детерминанты кроветворения, но на клеточном и микросреды элементы Неотъемлемой частью этого процесса было трудно расшифровать на основе ограничения те же методы.

Метод, описанный здесь, биомимикрия БМ из высокопористых полимерных леса в сочетании с ECM покрытие является оптимальным для поддержания и стабилизации роста нормальных и аномальных кроветворения безНеобходимость любого добавление цитокинов. Мимикрия поддерживает несколько прямых кроветворения оказание систему, пригодную для использования в качестве платформы для обнаружения наркотиков и научные исследования в механизмах нормальных и аномальных естественных бывший кроветворения.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Нам нечего раскрывать.

Acknowledgements

Эта работа финансировалась Ричард Томас Лейкемия фонда, леди Тата Мемориал Trust, Northwick Парк больницы Лейкемия Целевого фонда исследований и Национального института медицинских исследований (NIHR), Великобритания.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Dioxan Invitrogen D20,186-3
PBS GIBCO, by Life Technologies 14190-094
IMDM Invitrogen 12440-053
Ficoll-Paque GE Healthcare 17-1440-02
Penicillin/Streptomycin Sigma-Aldrich P4333
MTS Promega Corp. G3580
Glutaraldehyde Fluka 49624
Wright-Giemsa Sigma-Aldrich WG32
Fetal bovine serum GIBCO, by Life Technologies 10108-165
CD71 Santa Cruz Biotechnology, Inc. sc-32272
Alexa Fluor 488 Invitrogen A11001
CD45-FITC BD Biosciences 74895
CD71-PE BD Biosciences 555537
CD235a-PE-Cy5 BD Biosciences 555570
Sodium azide Sigma-Aldrich S-8032

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Orkin, S., Zon, L. Hematopoiesis: an evolving paradigm for stem cell biology. Cell. 132, 631-644 (2008).
  2. Spradling, A., Drummond-Barbosa, D., Kai, T. Stem cells find their niche. Nature. 414, 98-104 (2001).
  3. Panoskaltsis, N., Mantalaris, A., Wu, D. Engineering a mimicry of bone marrow tissue ex vivo. J Biosci. Bioeng. 100, 28-35 (2005).
  4. Lo Celso, C. Live-animal tracking of individual haematopoietic stem/progenitor cells in their niche. Nature. 457, 92-96 (2009).
  5. Mantalaris, A., Bourne, P., Wu, J. Production of human osteoclasts in a three-dimensional bone marrow culture system. Biochem. Eng. J. 20, 189-196 (2004).
  6. Placzek, M. Stem cell bioprocessing: fundamentals and principles. J. R. Soc. Interface. 6, 209-232 (2009).
  7. Dexter, T., Testa, N. Methods in Cell Biology. Prescott, D. 14, Academic Press Inc. New York. 387-405 (1976).
  8. Piacibello, W. Differential growth factor requirement of primitive cord blood hematopoietic stem cell for self-renewal and amplification vs proliferation and differentiation. Leukemia. 12, 718-727 (1998).
  9. Yoshida, T., Takagi, M. Cell processing engineering for ex vivo expansion of hematopoietic cells: a review. Biochemical Engineering Journal. 20, 99-106 (2004).
  10. Lim, M. Intelligent bioprocessing for haemotopoietic cell cultures using monitoring and design of experiments. Biotechnol. Adv. 25, 353-368 (2007).
  11. Mortera-Blanco, T., Mantalaris, A., Bismarck, A., Panoskaltsis, N. The development of a three-dimensional scaffold for ex vivo biomimicry of human acute myeloid leukaemia. Biomaterials. 31, 2243-2251 (2010).
  12. Mortera-Blanco, T., Mantalaris, A., Bismarck, A., Aqel, N., Panoskaltsis, N. Long-term cytokine-free expansion of cord blood mononuclear cells in three-dimensional scaffolds. Biomaterials. 32, 9263-9270 (2011).
  13. Safinia, L., Datan, N., Hohse, M., Mantalaris, A., Bismarck, A. Towards a methodology for the effective surface modification of porous polymer scaffolds. Biomaterials. 26, 7537-7547 (2005).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics