هلسنكي الجرذ المجهرية جانب الجدار تمدد الأوعية الدموية نموذج

1Neurosurgery Research Group, University of Helsinki, Helsinki, Finland
Published 10/12/2014
0 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

Cite this Article

Copy Citation

Marbacher, S., Marjamaa, J., Abdelhameed, E., Hernesniemi, J., Niemelä, M., Frösen, J. The Helsinki Rat Microsurgical Sidewall Aneurysm Model. J. Vis. Exp. (92), e51071, doi:10.3791/51071 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

النماذج التجريبية تمدد الأوعية الدموية كيسية ضرورية لاختبار خيارات العلاج الجراحي واللف والأجهزة الجديدة قبل أن يتم إدخالها في الممارسة السريرية. وعلاوة على ذلك، هناك حاجة إلى نماذج تجريبية لتوضيح البيولوجيا تمدد الأوعية الدموية المعقدة مما يؤدي إلى تمزق تمدد الأوعية الدموية من كيسية.

وقد أنشئت عدة أنواع مختلفة من نماذج تجريبية لتمدد الأوعية الدموية كيسية في الأنواع المختلفة. كثير منهم، ومع ذلك، تتطلب مهارات خاصة، معدات باهظة الثمن، أو في البيئات الخاصة، الأمر الذي يحد من استخدامها على نطاق واسع. وهناك حاجة إلى نموذج تجريبي بسيط وقوي، وغير مكلفة كأداة موحدة يمكن استخدامها بطريقة موحدة في مختلف المؤسسات.

الفئران المجهرية البطن نموذج جدار الأبهر تمدد الأوعية الدموية يجمع بين إمكانية لدراسة كل استراتيجيات علاجية جديدة اللف والأساس الجزيئي للتمدد الأوعية الدموية في البيولوجيا موحدة وغير مكلفةالطريقة. ويتم حصاد الطعوم موحدة عن طريق الشكل والحجم، والهندسة من الانزلاق الأبهر الصدري فأر المتبرع ومن ثم نقلهم إلى الفئران المتلقي syngenic. تتم خياطة تمدد نهاية إلى جنب مع مستمرة أو توقف 9-0 خيوط النايلون إلى الشريان الأورطي البطني infrarenal.

نقدم الإرشادات الإجرائية خطوة بخطوة، معلومات عن المعدات اللازمة، ومناقشة التفاصيل التشريحية والجراحية الهامة لخلق المجهرية الناجح لجدار الأبهر البطني تمدد الأوعية الدموية في الفئران.

Introduction

تمزق في الشريان الدماغي الكيسية يسبب تمدد الأوعية الدموية نزيف يهدد الحياة مما يؤدي إلى السكتة الدماغية، والضرر العصبي الدائم أو الوفاة. تمزق يمكن الوقاية منها عن طريق إما لقطة المجهرية أو تمدد الأوعية الدموية انسداد الأوعية الدموية من الداخل. لم يتم بعد تأسيس العلاج الطبي لمنع نمو وتمدد الأوعية الدموية تمزق.

وهناك حاجة إلى نماذج تجريبية لتمدد الأوعية الدموية كيسية لدراسة علم الأحياء من تمدد الأوعية الدموية الشريانية واختبار الأجهزة واستراتيجيات علاجية جديدة. لهذه الأغراض، تم وضع عدة نماذج مختلفة في أنواع مختلفة، ونشرت 1. وتستخدم نماذج تمدد الأوعية الدموية الكبيرة في الخنازير والكلاب والأرانب ويفضل لاختبار اللف الابتكارات في مجال العمارة تمدد الأوعية الدموية المعقدة 1،2. نماذج الفئران تمدد الأوعية الدموية، من ناحية أخرى، تسمح اختبار الأسئلة البحثية في الأنواع المعدلة وراثيا 3،4 وتسهيل توضيح تمدد الأوعية الدموية في البيولوجيا الخلوية والجزيئيةمستوى أفضل بكثير من الأنواع الكبيرة 1. على الرغم من اللف العابرة للالسباتي ونشر الجهاز عبر الحرقفي يقتصر على الفئران أكبر (> 400-500 ز) والدعامات أصغر من 2.0 ملم و 1.5 ملم وقطرها 5،6، ويمكن أيضا أن توضع الدعامات من خلال الإدراج المباشر في الأبهر البطني قطاع إيواء تمدد الأوعية الدموية التجريبية. العمل السابق باستخدام الفئران المجهرية جدار الأبهر البطني نموذج تمدد الأوعية الدموية أثبتت جدواه في الأجهزة صمي اختبار الرواية واستخدامه في دراسة الأساس الجزيئي للتمدد الأوعية الدموية البيولوجيا 3،7.

العديد من النماذج التجريبية تمدد الأوعية الدموية كيسية المنشورة حاليا تتطلب معدات باهظة الثمن، وبيئات خاصة (مثل غرف العمليات المعقمة مع قدرات التنظير)، الأشعة التداخلية الكفاءة، أو استخدام الأنواع باهظة الثمن. هذه المتطلبات تحد من انتشار استخدام هذه النماذج، وتؤدي إلى استخدام نماذج مختلفة في مختبرات مختلفة، والتي ماكيس مقارنة البيانات والتحليل التلوي من الصعب، إن لم يكن مستحيلا. وهناك حاجة إلى نموذج تجريبي بسيط وقوي، وغير مكلفة كأداة موحدة يمكن استخدامها بطريقة موحدة في مختلف مختبرات من أجل الحصول على نتائج مماثلة من مؤسسات مختلفة. لهذا الغرض، أنشأنا الفئران جدار الشريان الأبهر الشرايين الكيسية نموذج تمدد الأوعية الدموية.

الهدف من هذا التقرير هو تقديم الإرشادات الإجرائية خطوة بخطوة، معلومات عن المعدات اللازمة، ومناقشة الخصائص التشريحية والجراحية الهامة لخلق المجهرية الناجح لجدار البطن تمدد الأوعية الدموية الأبهري في الفئران.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

ملاحظة: ذكر فئران ويستار (متوسط ​​وزن الجسم: 356 ± 44 غرام؛ 10-14 أسابيع من العمر) كانوا يقيمون في غرفة الحيوان في 22-24 درجة مئوية، واثني عشر ساعة ضوء / دورة الظلام مع حرية الوصول إلى نظام غذائي بيليه، ماء الصنبور العادية وتلقى أيضا الرعاية الإنسانية وفقا للمبادئ التوجيهية المؤسسية. تم استعراض التجارب التي وافقت عليها لجنة رعاية الحيوان في جامعة هلسنكي، فنلندا.

ملاحظة: في المظاهرة التالية أسلوبنا الجراحي كما يلي: تخدير الفئران بواسطة تكييفها الوزن الحقن تحت الجلد من هيدروكلوريد medetomidine (0.5 ملجم / كجم)، والحقن داخل الصفاق من الكيتامين هيدروكلوريد (50 ملغ / كلغ). اختبار لعدم وجود رد الفعل إصبع القدم قرصة للتأكد من أن الفئران هو تخدير كامل. تطبيق مرهم العين، مقطع موقع الجراحية، وتنظيف الجلد بمطهر مناسب، على سبيل المثال الكلورهيكسيدين، إما في الكحول أو الماء. غسل اليدين وارتداء ملابس واقية، وغطاء الرأس والوجهقناع، وقفازات جراحية معقمة. لديك المساعدات مساعد الجراحية في الحفاظ على الظروف جراحة العقيم وتوثيق الخصائص الجراحية (كما هو موضح في الجدول رقم 1). رصد عمق التخدير كل 15 دقيقة أثناء الجراحة باتباع معدل التنفس ومعدل ضربات القلب، وكرد فعل على تحفيز الضارة (اصبع القدم اختبار قرصة). أعطيت حقن تحت الجلد البوبرينورفين (0.03 ملجم / كجم) لتسكين بعد العملية الجراحية إذا لزم الأمر ويتكرر كل 12 ساعة.

1. الأجهزة، مستهلكات، وتحديد المواقع

  1. إبقاء الغرفة جراحة الحيوانات الصغيرة الهدوء، العقيم، والحفاظ على درجة حرارة الغرفة في 23 ± 3 درجة مئوية. لإجراء جراحة تمدد الأوعية الدموية التجريبية الحد الأدنى من المعدات التالية ضرورية:
    1. استخدام كبار المجهر الجراحي الجدول تجهيزه بشكل مثالي مع نطاق مساعد وكاميرا رقمية المجهر. استخدام سطح مسامية قابلة لإعادة الاستخدام والتشغيل للتنظيف سطح أداة لحماية مقاعد البدلاء المختبر.
    2. استخدام الأدوات الجراحية القياسية التالية: مقص جراحي، ملقط الأنسجة، رش الأنسجة اللينة أو ضام الذاتي الاحتفاظ، واثنين من البعوض المشابك الجراحية.
    3. استخدام مجموعة أساسية المجهرية الصك الذي يتضمن: حامل إبرة مجهرية منحني، واحدة المنحني واثنين microforceps على التوالي، وmicroscissor مستقيمة أو منحنية.
    4. الحفاظ على الأدوات المجهرية في طبق الكلى مليئة ملحي معقم للحفاظ على الصك غير لزجة ونظيفة أثناء الجراحة. يتم تعبئة الطبق الكلى مع حصيرة من المطاط أو القفازات الجراحية لمنع الأضرار التي لحقت نصائح من الأدوات الدقيقة. التأكد من أن جميع الإمدادات معقمة ويتم تنفيذ الإجراء مع تقنية العقيم وفقا للتوصيات الحالية لعملية جراحية بقاء على حيوانات المختبر
    5. وبالإضافة إلى ذلك، استخدم قضيب كليب الأوعية الدموية وثلاثة المشابك الأوعية الدموية مؤقتة ارضحي. من المهم أن تستخدم المشابك لديها السلطة إغلاق منخفضة لمنع إصابة الجدار رقيقة جدا من الشريان الأورطي الفئران. أيضا بإعداد حاكم بقضبان نصف ملليمتر الحجم، وسادة مطاطية صغيرة ملونة، وإبرة حادة قصيرة.
    6. وضع الفئران في موقف ضعيف، شل على حد سواء الأمامية وهند الكفوف مع الشريط الجراحية دون تطبيق التمدد أو الضغط على الجلد، وتنحني ظهورهم مع علامة سميكة أو الكي القلم بوضعه تحت منطقة الخشب من الظهر. من المهم الحصول على أكبر قدر من العمود الفقري القطني قعس ممكن من أجل تحسين التعرض خلف الصفاق والوصول إلى الشريان الأورطي infrarenal مما يسهل مفاغرة المجهرية. ويوصى هذا المواقع لإنشاء الشريان الأورطي البطني تمدد الأوعية الدموية ولكن ليس من الضروري للحصاد الكسب غير المشروع الصدري.

2. حصاد الكسب غير المشروع

  1. Uالتخدير العام التانجو، فتح التجويف الصدري (الكسب غير المشروع بدء وقت نقص التروية). تطبيق قرصة أخمص قدميه الضارة للتأكد من أن الفئران لا يستجيب قبل الشروع في الخطوات التالية. قطع طريق جدار البطن وسط السطح البطناني، التعرف على الحجاب الحاجز فقط فوق الكبد، وقطع النسيج الضام في أسفل الحجاب الحاجز للسماح بالوصول إلى القفص الصدري. مع مقص كبير، جنبا حادة أسفل، وقطع طريق الأضلاع سنتيمتر واحد فقط اليسار واليمين من خط الوسط القفص الصدري وفتح التجويف الصدري. تتم تعبئة الرئتين إلى الجانب الأيمن من القلب. التضحية الفئران عن طريق الحقن داخل القلب مع جرعة زائدة من الكيتامين hydrochloride.Pulmonary الجذع، الوريد تحت الترقوة الأيسر، غادر الوريد الأجوف الجمجمة، والوريد azygous تتداخل مع حصاد الشريان الأورطي الصدري القريبة.
  2. الذيلية إلى عروق بارزة هناك نقطة دخول جيدة لبدء تشريح الشريان الأورطي الصدري تنازلي باستخدام مقص الصغرى وmicroforceps.
  3. تتبع الشريان الأورطي الصدري بACK من الجدار الظهري من الصدر صعودا إلى قوس الأبهر من تراجع حادة لطيف وتشريح مع المشبك الجراحية البعوض.
  4. المشبك ثم قطع الأوردة مع مقص. الحفاظ على المشابك على الأوردة واستخدامه كقاعدة ضام لفضح قوس الأبهر الأساسي.
  5. وضع غير قابل للامتصاص 6-0 الحرير ربطة فقط فوق الأول الشريان الأبهر وربي ترك.
  6. قطع الشريان الأورطي النازل أسفل الشريان تحت الترقوة الأيسر ثم تحت ربطة. تقليم يمكن القيام به من أجل الحصول على متعامدة الهندسة تمدد الأوعية الدموية موحدة، أو إذا لزم الأمر، للحصول على زاوية محددة بين محور تمدد الأوعية الدموية والشريان الأورطي. قياس الكسب غير المشروع في العرض والطول.
    ملاحظة: يمكن إما أن تحصد زرع الطعوم على الفور في الفئران المتلقي أو مواصلة تجهيزها لتحقيق decellularization الجدار الكسب غير المشروع. ويمكن تخزين الطعوم Decellularized في -4 درجة مئوية حتى إعادة زرع في وقت لاحق (الشكل 1). عشروقد تبين الإلكترونية decellularization الجدار إلى تمدد الأوعية الدموية تمدد الأوعية الدموية يؤهب للتكبير 11.

3. الكسب غير المشروع Decellularization

  1. ترقيع المانحة تجميد في الفوسفات مخزنة المالحة في -4 درجة مئوية.
  2. في اليوم التالي، ذوبان الجليد الطعوم، شطف مع الماء النقي ومنزوع الأيونات في درجة حرارة الغرفة، واحتضان لمدة 10 ساعة عند 37 درجة مئوية في 0.1٪ دوديسيل كبريتات الصوديوم.
  3. أخيرا، وغسل دوديسيل الصوديوم الطعوم المعالجة كبريتات ثلاث مرات مع الإثارة لطيف، اعادة تجميد في الفوسفات مخزنة المالحة، والحفاظ على -4 درجة مئوية حتى الاستخدام.

4. تمدد الأوعية الدموية الأنشاء

  1. تشريح الشريان الأورطي البطني
    1. بعد أن تم مخدرة الحيوان، مقطع الفراء من موقع الجراحي وتنظيف البشرة بمطهر مناسب. اختبار لعدم وجود استجابة أخمص القدمين قرصة قبل شق الجلد. بدء الداني شق 1CM إلى الأعضاء التناسلية طن موقف وسط السطح البطناني (وقت بدء التشغيل). فصل بعناية الجلد من عضلات الكامنة. نهاية تشريح واحد الى اثنين سم تحت عظمة القص.
    2. بعناية ولكن بحزم سحب عضلات البطن الأساسية لتجنب الأضرار التي لحقت الأجهزة الأساسية. تمديد قطع طولية على طول الخط ألبا صعودا إلى عملية الخنجري وتنتهي في اتجاه والذيلية على مستوى المثانة.
    3. تطبق بلطف الضغط على المثانة لتفريغها من أجل تسهيل الوصول إلى الفضاء خلف الصفاق.
    4. تحريك الأمعاء الصغيرة والأعور بارز إلى اليمين أو اليسار. التعرف على الأمعاء الغليظة وهي القولون النازل على الجزء السفلي الأيسر من تجويف البطن.
    5. قطع الرباط بين الأمعاء الدقيقة والقولون الهابط في اتجاه والجمجمة للسماح التعرض أوسع من جدار الجسم الظهرية. وضع ضام الذاتي الاحتفاظ عقد أحشاء حدة.
    6. المكان المثالي لنهاية إلى جانب تمدد الأوعية الدموية مفاغرة طق وجدت على مستوى بين كلوي والأوردة الحرقفي القطني. الشريان الأورطي البطني يكمن خلف الصفاق جزءا لا يتجزأ من الأنسجة الدهنية. أثناء تشريح إيلاء اهتمام خاص إلى إقران الحالب شفافة تقريبا والأوعية الخصية.
    7. إذا كانت هناك حاجة مزيد من التراجع من الأمعاء، استخدم مقايضة الشاش أكبر. وقعس قطني العمود الفقري الناجم خلال تحديد المواقع عن طريق وضع القلم الكي أو كائن مماثل تحت أسفل الظهر من الفئران، ويقلل بشكل كبير من الحاجة إلى الأمعاء التراجع.
    8. يتم تغطية السطح البطني من جدار الجسم الظهرية مع الصفاق الجداري رقيقة. مرة واحدة يتم فتح هذا، تصور الشريان الأورطي فقط تحتها. أثناء تشريح حاد ودقيق حادة في الشريان الأورطي البطني من الأوردة الكبيرة المجاورة فهم فقط البرانية لتجنب الأضرار التي لحقت جدار الوعاء الدموي.
    9. نادرا، تنشأ الشرايين القطنية الصغيرة، سفينة قطعي من السطح الظهري من الشريان الأورطي البطني وتتداخل مع التحضير. ربط وقطع من السفينة هو نيدائرة التنمية الاقتصادية لتجنب ناز الوراء أثناء خياطة تمدد الأوعية الدموية. استخدام ملقط المنحنية الدقيقة يمكن أن تسهل وضع رباط في العمق.
  2. نهاية إلى جانب التحام
    1. وضع وسادة مطاطية ملونة تحت الشريان الأورطي البطني ونجد أنه مع مسحة الشاش الصغيرة. إزالة النسيج الضام فضفاضة والبرانية على مستوى الموقع مفاغرة المخطط له.
    2. المشبك القاصي الأبهر البطني إلى مفاغرة أولا، ثم الداني (بداية الأبهر الوقت لقط). وهذا يضمن ملء حازم السفينة ويسهل بضع الشريان لاحق.
    3. إجراء بضع الشريان باستخدام المقص الصغير مستقيمة أو منحنية. الملقط الصغير يحمل ما يصل قطعة صغيرة جدا من جدار الوعاء الدموي لقطع شكل بيضاوي الشكل.
    4. تدفق الشريان تماما مع المياه المالحة في كلا الاتجاهين باستخدام إبرة حادة الرؤوس.
    5. وضع الغرز الأولين من هذا مفاغرة نهاية إلى جنب في نهاية الداني والقاصي من بضع الشريان (وقت البدء مفاغرة). تجنب استيعاب من جدار الوعاء الدموي مع ملقط الصغرى كلما أمكن ذلك. تأكد من أن يتم وضع كل الخيط من خلال جميع طبقات من جدار الوعاء الدموي.
    6. أداء خياطة الغرز إما مستمرة أو متقطعة. إذا ما تم اختيار خياطة توقف ثم وضع الجانب الخلفي تسعة o`clock خياطة أولا. الغرز اللاحقة يمكن البدء بصرف النظر متباعدة المتاخمة للخياطة الأولى. فهم البرانية بعناية. تجنب أي عصر / استيعاب من البطانية.
    7. عند الانتهاء من الجدار الخلفي، تحقق الجزء endoluminal من مفاغرة لخياطة الجروح في غير محله. أداء نفس الإجراءات في نفس الترتيب على الجانب الأمامي. ضمان أن أول ما مجموعه ثلاثة عقدة في خياطة غير ثابتة ولكن ليس ضيق جدا.
  3. الارقاء وإغلاق
    1. بعد اكتمال النهاية إلى جانب مفاغرة (مفاغرة نهاية الوقت)، وشطف مع المياه المالحة الموقع وإزالة المشبك البعيدة أولا للسماح ارتجاعي (نهاية الأبهر تحامل الوقت ونهاية الفساد نقص التروية منظمة الشفافية الدوليةلي).
    2. في حالة حدوث نزيف واضح من ارتجاعي قد تكون هناك حاجة لغرزة اضافية (وقت البدء من الارقاء). في حالة ناز البسيط و تحقيق الإرقاء مع ضغط لطيف على الموقع النزيف باستخدام قطعة صغيرة من الشاش مسحة.
    3. إزالة المشبك الأوعية الدموية القريبة، وشطف الموقع مفاغرة مرة أخرى، وقطع نهايات المتبقية من ربطة في تمدد الأوعية الدموية القبة.
    4. تأكيد المباح من تمدد الأوعية الدموية عن طريق الملاحظة من زيادة حجم تمدد الأوعية الدموية خلال ذروة موجة نبض الشرايين. تقييم البعيدة البطن الشريان المباح من خلال مباشر "اختبار حلب".
    5. إزالة ورقة من البلاستيك ومسحة الشاش صغيرة تحتها. دوامة الدم النابض في تمدد الأوعية الدموية خلق مرئيا بوضوح.
    6. تغطية خطوط الدرز حول مفاغرة مع قطع صغيرة من الأنسجة الدهنية أو Spongostan لالإرقاء إضافية إذا ناز الصغيرة لا تزال موجودة (وقت الانتهاء من الارقاء).
    7. إزالة الأنسجة الرخوة رش ومسحات الشاش.وضع الامعاء الصغيرة، والأعور، وكتلة الدهون مرة أخرى في وضعها الصحيح.
    8. إغلاق عضلات البطن خط الوسط باستخدام 5-0، 4-0، 3-0 أو الغرز resorbable أو غير قابل للامتصاص تليها الجلد إغلاق الجرح باستخدام تقنية خياطة مستمرة مع خياطة 3-0 resorbable polyfilament (نهاية وقت التشغيل). ملاحظة: في تسامحت خبرتنا الفئران الغرز الجلد resorbable أفضل من خيوط حيدة غير قابل للامتصاص.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

تتألف سلسلة الطيار 14 الفئران. بعد ذلك تم تشغيل ما مجموعه 84 الحيوانات وفقا لبروتوكول المعروضة لعدة مشاريع بحثية بين مارس وسبتمبر 2012. إضافية 29 الحيوانات بمثابة المانحين لترقيع الشرايين كيسية. وأجريت التجارب المتبقية باستخدام الطعوم معاملة ما قبل حصادها وتخزينها من التجارب السابقة باستخدام الفئران من نفس الجنس والسلالة والوزن والعمر.

وزن الجسم، والوقت التشغيل الشامل، الأبهر الوقت لقط، والوقت لإنشاء مفاغرة، والوقت لالارقاء بعد إنشاء مفاغرة، الكسب غير المشروع وقت نقص التروية، وسجلت أبعاد تمدد الأوعية الدموية في وقت الخلق (عرض وطول تمدد الأوعية الدموية) واستخراج حالة من أشكال تقرير مكتوب . وتتلخص جميع خصائص وتصور في الجدول 1 والشكل 1.

باستثناء الحيوان الوحيد الذي خضع لعملية ثانية بسبب الجلطة من عبدهمينال القاصي الشريان الأورطي الى الموقع مفاغرة لم تكن هناك وفيات periprocedural أو الاعتلال. يعني وقت العملية كان أقل من 52 دقيقة (52 ± 12 دقيقة). في الحيوانات مع زرع تمدد الأوعية الدموية مسانج (ن = 21) يعني الكسب غير المشروع كان الوقت نقص التروية 29 ± 7 دقائق. وكان متوسط ​​الوقت الكلي لقط الأبهر 25 ± 7 دقائق. أبعاد تمدد الأوعية الدموية كشفت أن تكون ثابتة مع انخفاض حجم الانحراف (يعني عرض 2.5 ± 0.2 ملم ويعني طول 3.8 ± 0.2 ملم).

خضعت البيانات التي تم جمعها التحليل الوصفي والتصور باستخدام البرامج الإحصائية. يتم التعبير عن القيم كما يعني ± الانحراف المعياري (SD) وفاصل الثقة 95٪ (CI).

الشكل 1
الشكل 1: غير Decellularized أو Decellularized الطعوم غير المعالجة ترقيع المانحة الأم من الشريان الأورطي الصدري وعلى الفور إعادة زرعها في الفئران المتلقي (1). الطعوم لتكونيتم التعامل مع decellularized كبريتات الصوديوم دوديسيل (SDS) وتخزينها في -4 درجة مئوية حتى إعادة زرع (2). وتصور اللوحة النسيجية المقطع الطولي من خلال غير المعالجة (يسار) وdecellularized (يمين) الجدار الكسب غير المشروع. الهيماتوكسيلين يوزين تلطيخ.

الشكل 2
الشكل 2: خصائص الجراحية. الرسوم البيانية تصور توزيع القيم بيانات واحدة (نقطة سوداء صغيرة)، متوسط ​​البيانات (شريط طويل عريض)، والانحراف المعياري (أشرطة الخطأ). يرجى النقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.

سمة يعني ± SD 95٪ CI العلوي - أقل
يعني وزن الجسم (جرام) 363 47 350-373
يعني وقت تشغيل (دقائق) 50 11 48-53
يعني الأبهري الوقت لقط (دقائق) 25 7 23 - 27
يعني الوقت مفاغرة (دقائق) 18 6 16-19
يعني وقت الإرقاء (دقائق) 2 2 2 - 3
الكسب غير المشروع يعني نقص التروية الوقت (دقائق) 29 7 26 - 32
يعني العرض تمدد الأوعية الدموية (ملليمتر) 2.5 0.2 2،4-2،5
يعني طول تمدد الأوعية الدموية (ملليمتر) 3.7 0.5 3،5-3،8

الجدول 1: خصائص الجراحية. SD = الانحراف المعياري. CI = فاصل الثقة

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

التقدم في فهمنا لعلم الأحياء معقد من الشريان الدماغي الكيسية تمدد الأوعية الدموية يعتمد على تحليل البيانات الوبائية والسريرية، وتستكمل الدراسات المختبرية على عينات من المرضى والعمل التجريبي في النماذج الحيوانية 3،12،13.

الحيوانات الصغيرة مثل الفئران ترتبط بطبيعتها مع انخفاض تكاليف التجارب والإسكان، وانخفاض الحاجة من المعدات المتخصصة. متوسط ​​إجمالي وقت تشغيل أقل من 60 دقيقة لخلق المجهرية من تمدد الأوعية الدموية في جدار الفئران أقصر بكثير من الوقت المستخدم لإنشاء أكثر تعقيدا المجهرية وريدي شرياني الحقيبة التشعب تمدد الأوعية الدموية في الأرانب والكلاب 2،14،15. مزايا انخفاض التكاليف وأسرع الطرق لإنشاء تمدد الأوعية الدموية قد يسهل إجراء الدراسات مع عدد أكبر من التجارب اللاحقة وزيادة القوة الإحصائية. بالإضافة إلى ذلك، نماذج الفئران الحالية تم تنفيذها بنجاح للإجابة على الأبحاث و ح الأسئلة التي تحتاج إلى منهجية مختبر أكثر تطورا، بما يشمل الحيوانات المعدلة وراثيا 3،4. عند استخدام الفئران لإنشاء تمدد جدار، يحتاج المرء أن نأخذ في الاعتبار أن هناك حاجة توقف 11-0 الغرز تتطلب مهارات المجهرية إضافية. ويرتبط أداء نموذج تمدد الأوعية الدموية المعروضة في الفئران أيضا مع ارتفاع معدلات الوفيات (30٪، ويرجع ذلك أساسا إلى مضاعفات في توازن السوائل والتخدير وقطرها أصغر (0.5-1 مم) من الشريان الأورطي الماوس) 3.

المبادئ الأساسية للنموذج الفئران تمدد الأوعية الدموية يمكن أن يتقن في فترة قصيرة من الزمن. ويوصى دورة تمهيدية في القوارض المجهرية لأولئك الباحثين سطحي في أداء تشريح وتقنيات خياطة تحت مجهر التشغيل. وأبرز الخطوات الرئيسية في بروتوكول المعروضة مواصلة تبسيط الإجراء. ينبغي توخي الحذر بشكل خاص أثناء تشريح الشريان الأورطي البطني من الأوردة الكبيرة المجاورة.

ntent "> قطر الأوعية الدموية الطرفية صغير من الفئران متوسطة الحجم يجعل العابر للالسباتي ونشر جهاز اللف عبر الحرقفي الصعب 5،6. ومع ذلك، يمكن أيضا أن توضع الأجهزة من خلال الإدراج الأبهر البطني المباشر أو الإيداع المباشر في تمدد الأوعية الدموية التجريبي قبل نهاية تفرضه موقع مفاغرة 7،16. التغييرات الحجمي في بقايا الرقبة والهندسة تمدد الأوعية الدموية يمكن أن تكون المتابعة مع المسلسل وغير الغازية الموجات فوق الصوتية عالية التردد، والصغرى CT، أو عالية الدقة تصوير الأوعية بالرنين المغناطيسي 16. كشفت التجارب السابقة عالية بشكل عام لم يكن لوحظ معدلات المباح من 92.5٪ في متوسط ​​المتابعة من ستة أسابيع بعد خلق دون peri- أو داخل الإجرائية منع تخثر الدم وantiaggregation 3،7،16. وباستثناء نمو كبير حالة واحدة أو توسع من تمدد الأوعية الدموية التجريبية وأيا منها تمزق 3.

ومع ذلك، إذا decellularized الطعوم حصاد تمدد الأوعية الدموية ماركاonstrate نمط غير متجانسة من تخثر الدم، إعادة الاستقناء، والنمو، وتمزق في نهاية المطاف 11. تظاهر تمدد الأوعية الدموية نموا في الدراسة الأخيرة التليف البرانية ملحوظ والتهاب، واستكمال تعطيل جدار، وزيادة تراكم العدلات في خثرة داخل اللمعة غير المنظمة. بهذه الطريقة يسمح نموذج لدراسة النمو وتمزق تمدد الأوعية الدموية ويمكن أن يحتمل أن تستخدم لتقييم الاستجابات البيولوجية الناجمة عن أجهزة الانصمام في زراعة وتمدد الأوعية الدموية المعرضة للتمزق. أي من النماذج المتاحة تمدد الأوعية الدموية التي يمكن embolized مثالي يمثل الشريان الدماغي الكيسية تمدد الأوعية الدموية البشري أو إعادة إنشاء البيولوجيا المرضية الحقيقي وراء تشكيل تمدد الأوعية الدموية أو تمزق.

يبقى موضوع نقاش إلى أي مدى اختيار الكسب غير المشروع (الوريدي أو الشرياني الحقيبة) واختيار angioarchitecture (جدار أو بناء التشعب) تؤثر على ترجمة النتائج في الممارسة السريرية. بالتأكيد نماذج مختلفة هي الأمثل لمختلفالأغراض، ويمكن أن يكون الأمثل على مستوى عال جدا في بعض المؤسسات. فإن النموذج المقدم لا تجعل نماذج أخرى عفا عليها الزمن. وسوف تبقى ضرورية لمحقق للاختيار من مجموعة واسعة من النماذج الفنية المختلفة والحيوانات واحد الذي يناسب أهداف تجريبية، والاعتبارات العملية، وبيئة معملية.

ومع ذلك، ينبغي من الناحية المثالية أن يؤديها بعض التجارب في نفس نموذج موحد في مختلف المؤسسات والمختبرات، من أجل السماح للمقارنة أفضل للبيانات والأجهزة أو العلاجات. حتى الآن لا توجد مبادئ توجيهية لاختبار موحد من أجهزة اللف قبل التطبيق السريري، وتبقى النماذج الحيوانية ناقصا 1. سوف يكتسب أهمية نماذج موحدة مرة واحدة التجارب قبل السريرية العشوائية متعددة المراكز أيضا تبرز في هذا المجال من البحث.

إنشاء تمدد الأوعية الدموية المجهرية يسمح توحيد أصل الكسب غير المشروع، نسبة حجم إلى فوهة، والسفينة الأمإلى تمدد الأوعية الدموية الطويلة زاوية المحور. وتهدف هذه التقنية قدمت لتوليد تمدد الأوعية الدموية موحدة مع الحد الأدنى من الاختلاف في البعد تمدد الأوعية الدموية، والمكان، ويتعلق الشريان الأم. هذا درجة عالية من التوحيد والتكاليف المنخفضة نسبيا جعل النموذج أداة جيدة لاختبار المواد والأجهزة التي الانصمام ثم يتم اختبارها في نماذج أكثر تعقيدا ومكلفة أخرى.

في الختام جدار تمدد الأوعية الدموية المجهرية نموذج الفئران قدمت هي طريقة سريعة وبأسعار معقولة، وثابت لخلق تمدد الأوعية الدموية التجريبية التي تم توحيدها من خلال الحجم والشكل، والتكوين الهندسي للتمدد الأوعية الدموية في الشريان يتعلق الأم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

الكتاب ليس لديهم مصلحة مالية أو تجارية في أي من الأدوية أو المواد أو المعدات المستخدمة.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Medetomidine Any genericon
Ketamin Any genericon
Buprenorphine Any genericon
Phosphate buffered saline
Sodium dodecyl sulfate (0.1%)
3-0 resorbable suture Ethicon Inc., USA VCP824G
5-0 non absorbable suture Ethicon Inc., USA 8618G
6-0 non absorbable silk suture B. Braun, Germany C0761060
9-0 nylon micro suture B. Braun, Germany G1118471
Spongostan Ethicon Inc., USA MS0002
Operation microscope Leica , Germany M651
Digital microscope camera Sony, Japan SSC-DC58AP
Standard surgical instruments B. Braun, Germany Multiple See protocol 1.4
Microsurgical instruments B. Braun, Germany Multiple See protocol 1.5
Vascular clip applicator B. Braun, Germany FT495T
Temporary vascular clamps B. Braun, Germany FT250T
Graph Pad Prism statistical software  GraphPad Software, San Diego, California, USA V 6.02 for Windows

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bouzeghrane, F., et al. In vivo experimental intracranial aneurysm models: a systematic review. AJNR Am J Neuroradiol. 31, 418-423 (2010).
  2. Marbacher, S., et al. Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. AJNR. American journal of neuroradiology. 32, 772-777 (2011).
  3. Frosen, J., et al. Contribution of mural and bone marrow-derived neointimal cells to thrombus organization and wall remodeling in a microsurgical murine saccular aneurysm model. Neurosurgery. 58, 936-944 (2006).
  4. Marjamaa, J., et al. Mice with a deletion in the first intron of the Col1a1 gene develop dissection and rupture of aorta in the absence of aneurysms: high-resolution magnetic resonance imaging. at 4.7 T, of the aorta and cerebral arteries. Magn Reson Med. 55, 592-597 (2006).
  5. Oyamada, S., et al. Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis. The Journal of surgical research. 166-191 (2011).
  6. Lowe, H. C., James, B., Khachigian, L. M. A novel model of in-stent restenosis: rat aortic stenting. Heart. 91, 393-395 (2005).
  7. Marjamaa, J., et al. Occlusion of neck remnant in experimental rat aneurysms after treatment with platinum- or polyglycolic-polylactic acid-coated coils. Surg Neurol. 71, 458-465 (2009).
  8. with the support of the NC3Rs. Aseptic Technique in Rodent Surgery. Newcastle University. cited 2014 Oct 3] Available from: http://www.procedureswithcare.org.uk/aseptic-technique-in-rodent-surgery (2014).
  9. Bernal, J., et al. Guidelines for rodent survival surgery. Journal of investigative surgery : the official journal of the Academy of Surgical Research. 22, 445-451 (2009).
  10. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new. (2011).
  11. Marbacher, S., et al. Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model. Stroke. 45, 248-254 (2014).
  12. Frosen, J., et al. Remodeling of saccular cerebral artery aneurysm wall is associated with rupture: histological analysis of 24 unruptured and 42 ruptured cases. Stroke. 35, 2287-2293 (2004).
  13. Frosen, J., et al. Saccular intracranial aneurysm: pathology and mechanisms. Acta neuropathologica. 123-773 (2012).
  14. Ysuda, R., Strother, C. M., Aagaard-Kienitz, B., Pulfer, K., Consigny, D. A large and giant bifurcation aneurysm model in canines: proof of feasibility. AJNR Am J Neuroradiol. 33, 507-512 (2012).
  15. Sherif, C., et al. Microsurgical venous pouch arterial-bifurcation aneurysms in the rabbit model: technical aspects. Journal of visualized experiments : JoVE. (2011).
  16. Marjamaa, J., et al. High-resolution TOF MR angiography at 4.7 Tesla for volumetric and morphologic evaluation of coiled aneurysm neck remnants in a rat model. Acta Radiol. 52, 340-348 (2011).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Video Stats