Isolement des vaisseaux sanguins dérivés multipotentes précurseurs du muscle squelettique humain

Biology

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Summary

Les vaisseaux sanguins à l'intérieur du squelette port musculaire plusieurs populations de précurseurs multi-lignée humaine qui sont idéales pour les applications de régénération. Cette méthode permet l'isolement de purification simultanée de trois populations de cellules précurseurs pluripotentes respectivement à partir de trois couches de structure des vaisseaux sanguins: les cellules myogéniques endotheliales de l'intima, média de péricytes et les cellules de l'adventice de l'adventice.

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Chen, W. C., Saparov, A., Corselli, M., Crisan, M., Zheng, B., Péault, B., Huard, J. Isolation of Blood-vessel-derived Multipotent Precursors from Human Skeletal Muscle. J. Vis. Exp. (90), e51195, doi:10.3791/51195 (2014).

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Abstract

Depuis la découverte de cellules souches stromales / mésenchymateuses (CSM), l'identité d'origine et la localisation des cellules souches mésenchymateuses ont été obscurcies par leur isolement rétrospective en culture. Récemment, en utilisant le tri de cellules activé par fluorescence (FACS), nous et d'autres chercheurs ont identifié et purifié de façon prospective les trois sous-populations de cellules précurseurs pluripotentes associées à la vascularisation du muscle squelettique humain. Ces trois populations de cellules: les cellules endothéliales myogéniques (CEM), les péricytes (PC), et les cellules de l'adventice (ACS), sont localisés respectivement aux trois couches structurelles des vaisseaux sanguins: intima, les médias, et l'adventice. Tous ces cellules souches humaines vaisseaux sanguins dérivés (hBVSC) les populations non seulement expriment des marqueurs de MSC classiques mais possèdent également des potentiels de développement du mésoderme similaires à MSC typiques. Auparavant, CEM, PC, et les CA ont été isolés au moyen de protocoles distincts et caractérisé par la suite dans des études séparées. La prot d'isolement courantocol, grâce à des modifications au processus d'isolement et des ajustements dans les marqueurs de surface cellulaire sélectifs, nous permet de purifier simultanément les trois sous-populations hBVSC par FACS à partir d'une seule biopsie musculaire humaine. Cette nouvelle méthode permettra non seulement de simplifier l'isolement de plusieurs sous-populations de BVSC mais aussi faciliter futures applications cliniques de hBVSCs à des fins thérapeutiques distincts.

Introduction

Muscle squelettique humain a été considéré comme une source cliniquement intéressante de cellules souches / progénitrices. Le muscle squelettique contient pas seulement commis progéniteurs myogéniques myoblastes squelettiques, mais aussi des cellules souches myogéniques primitives, y compris les cellules satellites et les cellules souches dérivées du muscle (MDSC) 1. L'utilisation de cellules humaines dérivées du muscle souches / progénitrices, autologues ou allogéniques, en médecine régénérative a été étudiée dans des modèles animaux précliniques et des essais cliniques. Les applications de régénération des cellules souches / progénitrices musculaires vont de la régénération du muscle dystrophique dystrophie musculaire de Duchenne (DMD) pour la réparation de patients blessés dans le cœur des patients avec crise cardiaque.

Depuis la découverte de souches de cellules mésenchymateuses / stromales (CSM) et d'autres populations de cellules précurseurs pluripotentes, comprenant des cellules de moelle osseuse dérivées multipotentes progénitrices adultes (PCMA) et les cellules souches du tissu adipeux (ADSCs), souches adultes /cellules souches ont été étudiées à ce jour 1-9. Néanmoins, leur identité et à la localisation native in situ ont été obscurcies par les méthodes d'isolement rétrospective. Récemment, en utilisant la cellule activé par fluorescence (FACS), nous et d'autres groupes avons prospectivement identifiés et trois populations de cellules précurseur multipotentes purifiés à partir de vaisseaux sanguins dans le muscle squelettique humain et plusieurs autres organes: les cellules endothéliales myogéniques (CEM), les péricytes (PC), et les cellules de l'adventice (AC) 10. Ces trois sous-populations de cellules souches vaisseaux sanguins humaines dérivées (hBVSCs) se retrouvent respectivement dans les trois couches de structure des vaisseaux sanguins: intima, la média et adventice. Plus précisément, les CEM et les PC sont détectés dans les microvaisseaux capillaires et tout AC sont localisés dans la couche de l'adventice des artères et des veines plus larges. Chaque sous-ensemble de cellules précurseurs exprime une combinaison unique d'antigènes de surface cellulaire CEM: (CD34 + / 56 + / 144 + / 45 -), PC (CD146 + / 34 - / 45 - / 56 -), et AC (CD34 + / 31 - / 45 - / 56 - / 146 -).

Une caractérisation supplémentaire de ces sous-ensembles de hBVSC a révélé que les trois populations de cellules précurseurs possèdent des potentiels de développement de cellules souches mésenchymateuses mésodermiques similaires typiques, y compris la myogenèse squelettique, l'ostéogenèse, la chondrogenèse, et l'adipogenèse. Tous les sous-ensembles hBVSC présentent également des marqueurs de MSC classiques, y compris CD44, CD73, CD90, CD105 et, fraîchement et dans la culture. Ensemble, ces éléments de preuve faveur de l'origine vasculaire des cellules souches mésenchymateuses. En outre, les capacités thérapeutiques de CEM, les PC, et les CA ont récemment été démontré dans des études séparées. CEM triés à partir de biopsies musculaires humaines adultes ont été présentés pour régénérer les muscles blessés et dystrophiques squelettiques et la réparation blessés myocarde plus efficacement que les myoblastes squelettiques et vasculaire endocellules épithélial (ECS). Ont également été montré PC purifiés provenant de différents organes humains pour réparer / régénérer les muscles squelettiques blessés et dystrophiques et de contribuer à la piscine des cellules satellites 13-16. Très récemment, nous avons démontré que les PC issus de muscle squelettique humain réparer efficacement le myocarde infarctus par effet paracrine indirecte et interactions cellulaires directes 17. CA, d'autre part, ont été directement isolé à partir de vaisseaux sanguins ou explantées purifié par FACS de tissu adipeux et le muscle squelettique humain. Un effet pro-angiogénique notable de CA a été démontrée chez la souris des membres postérieurs modèle d'ischémie 19. En outre, les CA ont également été montré pour réparer le myocarde infarci plus efficacement que les cellules souches mésenchymateuses classiques, indiquant le potentiel thérapeutique solide de CA dans la réparation de tissu ischémique 20.

Les subventions du protocole de purification courants simultanés, purification prospective de CEM, les PC, etCA de la vascularisation d'un seul squelette biopsie musculaire humaine. Cela nous permet d'étudier et / ou choisir la sous-population de hBVSC optimale à des fins thérapeutiques distincts. En outre, cette nouvelle technique élargit encore le répertoire de cellules souches / progénitrices qui peuvent être dérivées à partir de muscle squelettique humain, ce qui en fait une source de cellules précurseurs pluripotentes idéal pour la médecine régénératrice.

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Protocol

1. Muscle traitement biopsie

  1. Conserver biopsie musculaire squelettique humain sur de la glace dans du milieu Eagle modifié par Dulbecco (DMEM) supplémenté avec du sérum de 5% de fœtus bovin (FBS) et 1% de pénicilline-streptomycine (P / S) pendant le transport.
  2. Après la réception de la biopsie musculaire, retirer l'échantillon du récipient de transport et le laver deux fois dans une solution saline tamponnée au phosphate (PBS) additionné de solution d'antibiotique-antifongique 2% (A / A) dans des conditions stériles.
  3. Retirez le joint adipeux et du tissu conjonctif avec des ciseaux et des pinces stériles dans DMEM additionné de 2% A / A.
  4. Enlever les grands vaisseaux sanguins sous la dissection microscope, puis couper l'échantillon de muscle en petits morceaux (<1 cm 2 en taille).
  5. Préserver pièces musculaires coupées (<5 grammes) dans 20 ml de milieu de conservation (PM; DMEM supplémenté avec 10% de FBS et 1% P / S) à 4 ℃ pour un maximum de 5 jours.

2 Muscle Dissociation et cellules d'isolement

  1. Le jour de l'isolement des cellules, enlever des morceaux de muscles de PM et laver deux fois dans du PBS additionné de 2% P / S. Pour rendre la solution de digestion et de type I, type II et de type IV collagénases (100 mg / ml) fraîchement en PM.
  2. Hacher finement et hacher mécaniquement morceaux de muscle avec des ciseaux et des pinces stériles dans une boîte de Pétri avec une petite quantité de PM jusqu'à ce que la solution passe 10 ml pipette sérologique sans coagulation. Retirer le tissu adipeux et le tissu conjonctif résiduel lors de ce processus. Utilisez au moins 8-10 grammes de muscle adulte ou 2 grammes de muscle fœtal pour chaque isolement cellulaire.
  3. Transfert 4-5 grammes de muscle adulte haché 20 ml (ou 2 grammes de muscle fœtal haché dans 10 ml) DELA solution de digestion avec une pipette sérologique de 10 ml. Digérer pour 50 - 60 minutes à 37 ℃ sur un agitateur orbital à 70 à 80 tours par minute. D'optimiser le rendement de la cellule et la préservation de l'antigène de surface en ajustant le temps de digestion et / ou la vitesse d'agitation en conséquence sur la base de la quantitéde tissu. Observer l'état de la digestion toutes les 15-20 minutes jusqu'à ce que la turbidité disparaît presque.
  4. Vigoureusement la pipette le tissu digéré 3-5 fois avec une pipette sérologique de 10 ml. Ajouter la même quantité de PM pour arrêter la réaction et puis centrifuger à 400 g pendant 4 min.
  5. Retirez délicatement le surnageant; remettre en suspension la pastille avec 10 ml h à laver, et ensuite filtré à travers un tamis cellulaire de 100 um.
  6. Centrifuger à 400 g pendant 4 min et retirez délicatement le surnageant. granulés de remettre en suspension dans un tampon de lyse des érythrocytes (155 mM de NH 4 Cl, 10 mM de KHCO 3, 0,1 mm EDTA), filtrer à travers un tamis de 70 um de la cellule pour obtenir une suspension cellulaire unique, puis incuber pendant 10 min à température ambiante. Filtrer à travers un tamis cellulaire de 70 m de nouveau le cas échéant on observe une précipitation.
  7. Centrifuger à 400 g pendant 4 min et remettre en suspension le culot cellulaire dans 0,5 ml de PBS. Compter le nombre de cellules. Obtenir un total d'au moins 5 millions de cellules pour le tri de cellules. Diluer le single suspension cellulaire à moins de 5 millions de cellules par ml avec du PBS pour la coloration. Sortez 50-100 ul de la suspension cellulaire et divisée en 11 tubes pour les colorations de contrôle (contrôle sans tache, témoins négatifs, et d'une seule couleur de contrôles positifs).

3. cellulaire étiquetage et de tri

  1. Incuber la suspension de cellules individuelles pendant 10 min à 4 ℃ dans le sérum de souris (dilué à 1:10 dans du PBS) pour bloquer le but, si nécessaire.
  2. Ajouter CD34-APC, CD45-APC-Cy7, CD56-PE-Cy7, CD144-PE, et CD146-FITC (tous 1: 100) dans la suspension cellulaire unique et incuber pendant 20 min à 4 ℃. Pour le contrôle négatif, ajouter des concentrations équivalentes de APC-APC-Cy7-, PE-Cy7-, PE, et des anticorps IgG isotype conjugués au FITC et incuber pendant 20 min à 4 ℃. Pour une seule couleur contrôles positifs, ajouter des concentrations équivalentes de CD34-APC, CD45-APC-Cy7, CD56-PE-Cy7, CD144-PE, et CD146-FITC individuellement dans chaque tube et incuber pendant 20 min à 4 ℃.
  3. Après incubation, Centrifuger à 400 g pendant 4 min à laver. Remettre en suspension le culot cellulaire dans 1 - 2 ml de milieu DMEM additionné de 5% de FBS et 1% de P / S. La concentration finale de la suspension cellulaire doit être inférieure à 5 millions de cellules par ml. Ajouter 7-AAD (1: 100) et incuber pendant 15 min à température ambiante pendant exclusion mort cellulaire. Pour le contrôle négatif et d'une seule couleur témoins positifs, des pastilles de cellules remise en suspension dans 0,5 ml de DMEM additionné de 5% de FBS et 1% de P / S.
  4. Transférer toutes les suspensions cellulaires à fond rond de flux de polystyrène cytométrie tubes. Préparer des tubes de prélèvement de cellules (chaque tube est pré-remplie avec 500 pi de milieu de culture approprié: MPM pour CEM; EGM-2 pour PC, support CA pour CA). Des suspensions de cellules de transport sur de la glace à la trieuse de cellules.
  5. Suspensions cellulaires sur Exécuter dans le trieur de cellules dans l'ordre de la commande sans tache, contrôles négatifs, une seule couleur contrôles positifs, et la suspension de cellules principale tout en ajustant l'intensité du laser, compensation de canal, et la population de cellules gating rigoureusement afin de maximiser cellule purity (s'il vous plaît se référer à des articles publiés par Jupiter et d'autres revues pour plus de détails de la cytométrie de flux).
  6. Recueillir des populations de cellules désirées dans les tubes de collecte appropriés. Magasin cellules recueillies à 4 ℃ sinon ensemencement immédiatement.

4. post-tri culture cellulaire

  1. Semences CEM fraîchement triées (P0) à <10 000 cellules / cm 2 dans MPM sur des plaques pré-revêtues de collagène de type I. Pour des passages ultérieure de CEM, semences 3500 - 4000 cellules / cm 2 à MPM sur plaques / flacons pré-revêtues de collagène de type I.
  2. Graine PC fraîchement triées (P0) à <20 000 cellules / cm 2 dans EGM-2 sur des plaques fraîchement enduites de gélatine à 0,2%. Pour la suite des passages d'ordinateurs, à fractionner les cellules rapport 1: 3 dans du milieu PC (DMEM supplémenté avec 20% de FBS et 1% de P / S) sur des plaques de culture en polystyrène réguliers jusqu'à ce que P2. De P3 en avant, les cellules de semences à 6.500 - 7.000 cellules / cm 2 dans le milieu de PC sur réguliers culture de polystyrène plaques / flacons.
  3. Graine fraîchement triées CA (P0) à <20 000 cellules / cm 2 dans un milieu AC (DMEM supplémenté par 20% de FBS et 1% de P / S) sur des plaques de culture en polystyrène réguliers. Pour des passages ultérieure de CA, les cellules de semences à 6.500 - 7.000 cellules / cm 2 en moyenne sur AC réguliers culture de polystyrène plaques / flacons.

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Representative Results

Les paramètres de FACS sont d'abord corrigées sur la base des données obtenues à partir du témoin non coloré, des témoins négatifs, et une seule couleur témoins positifs. Après exclusion de cellules mortes, d'une suspension de cellules marqué par fluorescence est soumis à une série de sélections positives et négatives marqueurs de surface cellulaire. Tout d'abord, les cellules CD45 + sont déclenchés avant CD56 + et CD56 - les cellules sont séparées du CD45 - fraction. La fraction CD56 + sont en outre soumises à une sélection CD34-CD144 + CD34 où seulement / CD144 + cellules (double-positives) sont marqués comme CEM (cellules CD34 + / 56 + / 144 + / 45 -) et ensuite recueillies (Figure 1). De même, le CD56 - fraction est en outre soumis à la sélection CD34-CD146 où seulement CD34 - / CD146 + cellules sont marquées comme PC (CD146 + / 34 - / 45 - / 56 -) et recouvré par la suite ( + / CD146 - fraction est soumise à une sélection de CD31 négative supplémentaire à exclure les EC (CD34 + / CD31 +), et que CD34 + / CD31 - sous-ensemble est marqué comme AC (CD34 + / 31 - / 45 - / 56 - / 146 -) de la collection (figure 1). Pour simplifier le processus, CD144 peut être utilisé pour remplacer CD31 pour l'exclusion des contraceptifs d'urgence.

Fraîchement cellules triées peuvent être ensemencées dans des conditions de culture spécifiés dans le protocole d'expansion ou utilisées immédiatement pour des expériences in vivo. L'expansion clonale de sous-ensembles hBVSC peut être réalisé par le système de AutoClone FACS Aria ou limitant la méthode de dilution 13, 21. Contrairement aux cellules souches mésenchymateuses hétérogènes typiques, des cultures de sous-ensembles hBVSC restent homogènes même après l'expansion à long terme. Morphologie représentant des sous-ensembles de hBVSC culture, purifiée à partir de biopsies musculaires d'unseul donneur, est illustrée dans la figure 2. comparaisons entre les MSC et les caractéristiques des sous-ensembles de hBVSC purifiés sont résumés dans le tableau 1.

Figure 1
Figure 1: tri Représentant des trois sous-ensembles de cellules humaines souches vaisseaux sanguins dérivés (hBVSCs) à partir d'un unique squelette biopsie musculaire humaine. Pureté de chaque population de cellules triées est en outre confirmée par une analyse post-tri. S'il vous plaît cliquer ici pour voir une plus grande version de ce chiffre.

Figure 2
Figure 2 Les trois sous-populations hBVSC, triées à l'homogénéité, présentaient une morphologie distincte dans culture (de gauche à droite): myogénique des cellules endothéliales (MEC), péricytes (PC), et la cellule de l'adventice (AC) (au passage 4, barres d'échelle = 100 mm). S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

MSC CEM PC AC
Pureté Hétérogène Homogène Homogène Homogène
le profil de l'antigène de surface cellulaire pour la purification N / A CD34 + CD56 + CD144 CD45- + CD31- CD34 + CD45- CD146-
L'expression du marqueur MSC en culture CD29 + CD44 + CD73 + CD90 + CD105 + CD29 + CD44 + CD90 + CD105 + CD44 + CD73 + CD90 + CD105 + CD44 + CD73 + CD90 + CD105 +
Multipotence Myogenèse (+) Adipogenesis (+) ostéogenèse (+) Chondrogenèse (+) Myogenèse (+) Adipogenesis (+) ostéogenèse (+) Chondrogenèse (+) Myogenèse (+) Adipogenesis (+) ostéogenèse (+) Chondrogenèse (+) Myogenèse (N / A) Adipogenesis (+) ostéogenèse (+) Chondrogenèse (+)
Les applications potentielles Skeletomuscular réparation / régénération: os, cartilage, tendons, ligaments et muscles squelettiques; La réparation cardiaque; Réparation vasculaire; La cicatrisation des plaies; Immunoregulation La réparation cardiaque; Squelettique réparation musculaire / régénération; Os / cartilage de réparation / régénération La réparation cardiaque; Vasculaire réparation / régénération; Squelettique réparation musculaire / régénération; la régénération de l'os La réparation cardiaque; Vasculaire réparation / régénération; la régénération de l'os
Localisation anatomique in situ N / A vaisseaux sanguins Intima Vaisseau sanguin médias adventice des vaisseaux sanguins

Tableau 1: Comparaison des CSM typiques et des sous-populations de hBVSC multipotentes.

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Discussion

Identification et la purification des sous-populations hBVSC représentent une avancée majeure dans la compréhension de MSC ontogenèse. Il ya des preuves croissantes indiquant l'origine périvasculaire des cellules souches mésenchymateuses et l'association entre les cellules précurseurs spécifiques de tissus et les vaisseaux sanguins 22-25. En outre, la capacité d'isoler des sous-populations homogènes de hBVSCs sida davantage la compréhension de MSC hétérogénéité et la biologie vasculaire cellule 26.

Au cours des dernières années, les CEM, les PC, et les CA ont été identifiés individuellement et isolé par des protocoles distincts dans des études distinctes. Cependant, aucune tentative n'a été faite pour purifier tous les trois sous-ensembles hBVSC simultanément à partir de muscle squelettique humain en raison des difficultés pour optimiser la procédure de dissociation des tissus et la combinaison de marqueurs de la lignée cellulaire sélectifs identifier CEM, PC et CA total. Ici, nous avons décrit un nouveau protocole d'isolement cellulaire qui permet Purif concurrenteication de MEC, PC, CA et d'un seul biopsie musculaire humaine en modifiant le processus de dissociation du tissu et l'application d'une nouvelle combinaison de marqueurs de surface cellulaire sélective (figure 1). Pour le meilleur résultat, les étapes critiques dans le protocole actuel qui exigent plus d'attention sont les suivants: 1 Fraîcheur et conservation de l'échantillon de tissu; 2 Optimisation du rendement de la cellule et l'antigène de surface de préservation par une surveillance étroite du processus de digestion et l'ajustement du temps de dissociation du tissu; 3. calibrage précis de la couleur six cytométrie de flux. Ces paramètres doivent être déterminées par chaque laboratoire en fonction de sa configuration offre / un équipement spécifique.

En mettant en oeuvre ce nouveau protocole, on peut non seulement de simplifier l'isolement synchrone de plusieurs sous-populations de hBVSC mais également de faciliter l'utilisation de hBVSCs pour la recherche fondamentale et de la demande de traduction, tel que la comparaison des comportements cellulaires différentielles entre HBVsLes sous-ensembles C et le sous-ensemble de l'optimisation de hBVSC unique ou combinatoire (s) pour diverses applications thérapeutiques personnalisés. Cependant, l'isolement simultané de toutes les trois sous-ensembles hBVSC est actuellement limitée au muscle squelettique en raison du fait que les CEM n'ont pas été identifiés dans d'autres tissus humains. En outre, il est au-delà de la limitation de l'actuel protocole de distinguer la transition et / ou hiérarchie cellulaire entre ces trois sous-populations hBVSC.

Caractérisation des fraîchement isolées et cultivées CEM, PC, et AC a été démontré séparément dans des études antérieures CEM dans la culture maintenir l'expression du marqueur CD56 myogénique mais perdent progressivement l'expression des marqueurs CD34 et CD144 CE. Au niveau clonal, CEM expriment des marqueurs de MSC, y compris CD29, CD44, CD90, CD105 et, et affichent des potentiels de différenciation mésenchymateuses telles que chondrogénèse, l'ostéogenèse, l'adipogenèse, et la myogenèse. En outre, CEM clonales conservent leur angiogencapacité ic après culture à long terme, la formation de réseaux de capillaires comme dans la culture Matrigel et de participer à la néovascularisation in vivo 21.

PC, fraîches ou de culture, ont été montré pour exprimer non seulement des marqueurs de MSC, y compris CD44, CD73, CD90, CD105 et, mais aussi présenter des capacités de développement du mésoderme, par exemple, la myogenèse squelettique, l'ostéogenèse, la chondrogenèse, et l'adipogenèse 13. PC sécrètent robuste un certain nombre de facteurs trophiques, même sous hypoxie, et servent les unités de régénération à travers leur fonction paracrine, la différenciation directe, et l'interaction cellulaire au cours de l'/ processus de régénération réparation des tissus AC, similaire à un PC, ont été présentés à exprimer des marqueurs de MSC classiques et se différencier en lignées majeures de cellules mésenchymateuses 18. Avec les PC, AC ont également été proposées comme l'une des origines développementales de la MSC. Un résumé de la comparaison de l'expression des marqueurs de surface cellulaire, la capacité de différenciation et de la papplications de traduction ossible entre MSC et hBVSCs typiques ont été énumérés dans le tableau 1. Récemment, des cellules Tang et al. identifiés multipotentes vasculaires de troncs (MVSCs) de la média des gros vaisseaux sanguins chez le rat et l'homme 29. MVSCs non seulement se différencient en cellules de muscles lisses, mais contribuent également à un remodelage vasculaire et l'hyperplasie de la néo-intima après une lésion vasculaire 29. Que MVSCs partager une connexion de développement avec BVSCs résidant dans la microvascularisation et petits vaisseaux nécessite une enquête plus approfondie.

Le protocole prévoit que l'isolement cellulaire en temps opportun de frais biopsie musculaire humaine, qui, parfois, peuvent ne pas être accessibles dans les milieux cliniques. En variante, sur la base d'un jeu modifié de marqueurs de surface cellulaire sélective, il est possible de purifier les CEM et les ordinateurs à partir de cultures primaires humains cryoconservés du squelette des cellules musculaires par cytométrie de flux 30. Cette méthode permet purif prospectiveication de deux sous-ensembles hBVSC de la culture de muscle squelettique humain en banque à des fins thérapeutiques. Néanmoins, en raison de l'absence d'expression de CD34 dans les cellules cultivées de muscle humains, il n'est pas possible de séparer davantage les AC avec ce protocole particulier.

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Acknowledgments

Les auteurs tiennent à remercier Alison Logar pour son excellente assistance technique avec la cytométrie de flux. Ce travail a été soutenu par des subventions du ministère de la Défense (JH), la chaire J. Mankin Henry (JH), et le ministère de l'Éducation et de la Science de la République du Kazakhstan (AS). CWC a été financé en partie par la bourse pré-doctorale de l'American Heart Association (11PRE7490001). M.Corselli a été soutenu par le California Institute for Regenerative Medicine bourse de formation (TG2-01169).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Collagenase type 1 Sigma C5894 Sterile vial
Collagenase type 2 Sigma C1764 Sterile vial
Collagenase type 4 Sigma C1889 Sterile vial
Anti-human CD34 APC BD Pharmingen 555824 Keep sterile
Anti-human CD45 APC-Cy7 BD Pharmingen 557833 Keep sterile
Anti-human CD56 PE-Cy7 BD Pharmingen  557747 Keep sterile
Anti-human CD144 PE Beckman Coulter A07481 Keep sterile
Anti-human CD146 FITC AbD Serotec MCA2141F Keep sterile
FACS Aria II Flow Cytometer Becton-Dickinson
EGM-2 complete medium Lonza CC-3162 For culturing PCs (only P0)
DMEM high glucose (1X), liquid, with L-glutamine, without sodium pyruvate Invitrogen 11965 For culturing PCs
DMEM high glucose (1X), liquid, with L-glutamine, with sodium pyruvate Invitrogen 11995 For culturing MECs and ACs
Fetal bovine serum Invitrogen 10437-028
Heat-inactivated horse serum Invitrogen 26050-088
Penicillin/streptomycin Invitrogen 15140-122
Antibiotic-antimycotic (100X) Invitrogen 15240-062
Trypsin-EDTA 0.5% (10X) Invitrogen 15400-054
Dulbecco’s PBS without calcium and magnesium Invitrogen 14190-250
Chick embryo extract Accurate Chemical CE650T-10 Filter before use

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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