Medición de niveles hemo síntesis en células de mamífero

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Hooda, J., Alam, M., Zhang, L. Measurement of Heme Synthesis Levels in Mammalian Cells. J. Vis. Exp. (101), e51579, doi:10.3791/51579 (2015).

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Abstract

Heme sirve como el grupo prostético para una amplia variedad de proteínas conocidas como hemoproteínas, tales como hemoglobina, mioglobina y citocromos. Está implicada en diversos procesos moleculares y celulares, tales como la transcripción de genes, la traducción, la diferenciación celular y la proliferación celular. Los niveles de biosíntesis de hemo varía en los diferentes tejidos y tipos de células y se alteran en condiciones de enfermedad como la anemia, neuropatía y el cáncer. Esta técnica utiliza [4- 14 C] de ácido 5-aminolevulínico ([14 C] 5-ALA), uno de los primeros precursores en la ruta de biosíntesis de hemo para medir los niveles de síntesis de hemo en células de mamífero. Este ensayo implica la incubación de las células con [14 C] 5-ALA seguido de la extracción de hemo y la medición de la radiactividad incorporada en hemo. Este procedimiento es precisa y rápida. Este método mide los niveles relativos de la biosíntesis del grupo hemo, más que el contenido total de hemo. Para demostrar el uso de esta technIQUE los niveles de biosíntesis de hemo se midieron en varias líneas celulares de mamíferos.

Introduction

Hemo, un complejo de hierro ferroso y protoporfirina IX es una molécula central para el transporte y la utilización de oxígeno en los organismos que viven prácticamente todos 1-3. La estructura única de hemo le permite funcionar como un portador de gases diatómicos y electrones, así como para realizar diversas otras funciones 1-5. Por ejemplo, hemo se une al oxígeno en la hemoglobina y la mioglobina para la transferencia y el almacenamiento de 6,7 oxígeno. También funciona como un transportador de electrones en los citocromos durante la respiración y actúa como un donador de electrones para las reacciones redox catalizadas por enzimas del citocromo P450 8,9. Una de las características más significativas de hemo es que, puede desempeñar un papel regulador en los procesos celulares y moleculares, tales como la transcripción de genes, síntesis de proteínas y micro-ARN biogénesis 4. Por ejemplo, afecta a la transcripción de muchos genes mediante el control de la actividad de represor transcripcional de mamífero Bach1 y la rec nuclear de mamíferoeptor Rev-erbα 10-15. Heme regula la activación de la proteína activadora de hemo (Hap) 1 que desempeña un papel importante en la activación de genes implicados en la respiración y controlar el daño oxidativo, en respuesta a heme o de oxígeno 16. Heme también regula la transcripción de genes en las células neuronales a través de factor de crecimiento nervioso (NGF) de señalización 3,17-20. También regula la síntesis de proteínas en las células eritroides de mamífero mediante la modulación de la actividad de quinasa eIF2α hemo-regulados (HRI) 21-24. Además, hemo afecta a la actividad de las proteínas de señalización clave como la tirosina quinasa Src y Jak2, que son esenciales para el funcionamiento adecuado de las células y 4,20,25 crecimiento celular. Se encontró que en células HeLa inhibición heme provoca la detención del ciclo celular y la activación de marcadores asociados con la senescencia y apoptosis 26. Tanto la deficiencia de hemo o aumento de los niveles de hemo se asocian con efectos graves para la salud en los seres humanos 27. Recientes un molecularnd estudios epidemiológicos han mostrado una asociación positiva de alto consumo hemo y aumento del riesgo de enfermedades, tales como diabetes tipo 2, enfermedad coronaria y varios tipos de cáncer, incluyendo cáncer de pulmón, cáncer colorrectal y cáncer de páncreas 27,28. El uso de un par emparejado de laboratorio de células pulmonares normales y cancerosas autores han encontrado que las células cancerosas se han incrementado los niveles de consumo de oxígeno, la síntesis del grupo hemo y proteínas implicadas en la captación de hemo y oxígeno utilización 28. Curiosamente, la inhibición de la síntesis de hemo disminuyó el consumo de oxígeno, la proliferación, la migración y la formación de colonias de células de cáncer 28. Por lo tanto, la fluctuación en los niveles de hemo endógeno juega un papel importante en la regulación de procesos moleculares y celulares 3,4,28,29.

En los mamíferos, la biosíntesis de hemo se produce en ocho etapas, que implican enzimas localizadas en la mitocondria y el citosol 4 (Figura 1). Bios hemotesis comienza en la matriz de la mitocondria con la condensación de glicina y succinil-CoA reductasa para formar ácido 5-aminolevulínico (5-ALA), catalizada por ALA sintasa (ALAS) 4,31. Este es el paso limitante en la biosíntesis de hemo en células no eritroides. 5-ALA entonces se exporta hacia el citosol, donde se producen los siguientes cuatro pasos para formar coproporfirinógeno III (CPgenIII), que luego se importa de nuevo a las mitocondrias, donde se convierte en la protoporfirina IX (PPIX). Finalmente, una molécula de hierro se incorpora a la protoporfirina IX (PPIX) para producir hemo, una reacción catalizada por ferroquelatasa (FECH) 2,4.

El nivel de la biosíntesis de hemo depende principalmente del nivel de enzima ALAS que está estrechamente controlada por el hierro hemo intracelular y 4. La biosíntesis de hemo puede verse afectada por defectos genéticos, la disponibilidad de ciertos minerales y vitaminas (por ejemplo, riboflavina, zinc), la exposición a toxinas (por ejemplo, aluminio, plomo), Anoxia, fiebre, y los niveles de ciertos esteroides (por ejemplo, estrógeno) 32-35. El nivel de la síntesis de hemo se altera en diversas condiciones de enfermedad. Disminución de la biosíntesis del grupo hemo puede causar anemia, así como enfermedades neurológicas 3,36. Alternativamente, el aumento de la biosíntesis de hemo juega un papel importante en la progresión de ciertos cánceres 28,37. Heme ha demostrado ser crítico para el crecimiento, la diferenciación y la supervivencia de los mamíferos adiposo, eritroides y células neuronales 4,38-41. Por ejemplo, la deficiencia de hemo conduce a un daño de neuritas en neuronas corticales de ratón primaria a través de la inhibición de glutamato NMDA (N-metil-D-aspartato) receptor 17. Además, la inhibición de la síntesis de hemo causa la muerte celular programada en el carcinoma de cuello uterino humano epitelial células HeLa 26,41. Por lo tanto, la medición de los niveles de biosíntesis de hemo en diversas células bajo diferentes condiciones es importante para el estudio de la etiología y progressien de muchas enfermedades.

Aquí se describe un método rápido y sensible para medir el nivel de la síntesis de hemo intracelular mediante el uso de [4- 14 C] de ácido 5-aminolevulic. Este es un método alternativo a otros métodos que utilizan 55 o 59 Fe Fe. Preferimos utilizando 14 C porque su radiación es muy débil. Por el contrario, se requiere una fuerte protección para trabajar con isótopos Fe. Además, este método está destinado a medir y comparar la síntesis de hemo en diferentes células en paralelo de una manera rápida. Con el fin de medir los niveles de hemo absolutos, se puede utilizar el método previamente establecido que implica el uso de HPLC 42,43.

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Protocol

PRECAUCIÓN: Mientras trabajaba con radiactividad, tomar las precauciones adecuadas para evitar la contaminación del experimentador y el entorno. Deshágase de todos los desechos siguiendo las directrices locales de seguridad radiológica.

1. Preparación de las células

  1. Células de semillas en 3,5 cm placas de tal manera que la confluencia alcanza el 80% -90% en el día de ensayo.
    1. Tenga en cuenta que la siembra de confluencia para las células depende del tipo celular y su tasa de crecimiento. Cuando el tratamiento de las células con un reactivo para un cierto número de días, semilla de células de modo que la confluencia es 80% -90% en el día de la medición de hemo. Si el número de células obtenido a partir de 3,5 cm placas es insuficiente, utilizar placas de 6 cm con la misma cantidad de ALA radiactivo como en el siguiente paso.
      Nota: El uso de placas individuales se recomienda porque es más fácil de manejar platos individuales.
  2. Un día antes de la medición hemo, añadir 0,1-0,3 Ci [14 C] 5-ALA y ALA frío para llegar a un final Concentración de 20 M del total ALA a cada placa de cultivo en un ataque área de trabajo para trabajar con materiales radiactivos y poner las placas de nuevo en la incubadora. Idealmente, se incuba con ALA radiactivo durante 16 horas.
    Nota: radiomarcado 5-ALA requiere puede variar entre líneas celulares. Se requiere un recuento radiactivo por minuto (cpm) de al menos 100 para reducir al mínimo el error asociado con el conteo. Es aconsejable para determinar una cantidad mínima de [14 C] 5-ALA requerida para las líneas celulares estudiadas. Para la mayoría de experimentos 0,1-0,3 Ci es suficiente para obtener una buena medición. La adición de frío ALA es opcional.

2. El hemo Extracción

  1. Coloque las placas de cultivo de células en hielo y llevarlos a la zona en condiciones de trabajar radiactividad.
    1. Realizar todo el proceso de extracción y evaporación en una campana a prueba de explosiones. Debido a que el éter almacenado puede explotar, utilizar el éter en pequeñas botellas y evaporar los líquidos restantes, no almacene en el éteruna botella abierta durante más de un mes. No utilice acetona cerca de llamas abiertas y calentadores, ya que es altamente inflamable. Acetona tienda que contiene reactivos en botellas de vidrio, ya que disuelve plástico de cultivo de tejidos.
  2. Aspirar el medio utilizando una pipeta. Lavar las células una vez con 1 ml de PBS 1x frío. Aspirar PBS.
  3. Añadir 1 ml de PBS 1x frío a las placas y recoger las células en la parte inferior de la placa utilizando una goma de policía. Transferir las células recogidas de cada plato a un tubo ml preenfriado 2 etiquetados. Recoge todas las células en tubos de 2 ml.
    Nota: Utilice un policía de caucho fresco para cada placa para raspar las células de cada placa. Para cada placa que requeriría cuatro 2 ml tubos, un tubo de 1,5 ml y un vial de centelleo.
  4. Centrifugado a 15.000 xg durante 1 min a 4 ° C.
  5. Saque PBS utilizando una pipeta, dar un breve centrifugado y retire el PBS residual. Resuspender las células en 100 l de PBS 1x. Vortex para volver a suspender las células y mantener en hielo.
  6. Tome 10 y# 956; l desde el paso 5 y la transferencia a un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml y almacenar en hielo para medir la concentración de proteínas.
    Nota: tampón de lisis celular, debe añadirse a las células y se mantuvo en hielo para medir la concentración de proteínas más tarde.
  7. Haga girar los 90 l restantes de la etapa 5 a 5.000 xg durante 30 segundos a 4 ° C; eliminar completamente PBS utilizando una punta de pipeta 200 l.
  8. Añadir 300 l de tampón de extracción hemo (ver Lista de Materiales) a cada tubo. Entonces vórtice durante 15 segundos para mezclar y poner en hielo durante 1 min, repetir esto 3 veces.
    1. Añadir tampón de extracción hemo (HEB) y agitar el tubo rápidamente para volver a suspender el sedimento, hacer sólo una o dos tubos a la vez porque la pastilla debe resuspendió rápidamente sin quedarse en el HEB durante demasiado tiempo. Una vez HEB se añade a todos los tubos y sedimento se resuspende a continuación, siga el vórtice 15 seg y 1 min en el ciclo de hielo como en el paso 8. Nota pellet que puede no ir completamente en el HEB si la pastilla se deja en el tampón de HEB para una mástiempo y no se resuspendieron rápidamente.
  9. Añadir 1,2 ml de éter dietílico a cada tubo y agitar durante 30 seg. Centrifugado a 15.000 xg durante 5 min a 4 ° C.
    Nota: El éter dietílico se queda sin puntas de pipeta rápidamente. Para controlar esto, dietil éter pipeta arriba y abajo una vez o dos veces, haciendo así que ayuda a mantener el éter de dietilo en la pipeta. Repita esto cada vez que se utiliza una punta de pipeta nueva.
  10. Transferencia de fase superior (éter) con 1 ml de la pipeta a un nuevo tubo de microcentrífuga. Añadir 0,5 ml de HCl 2 N, vórtice de mezclar y giro como en el paso 9.
    Nota: Es difícil ver la separación entre fases de éter y HCl. Por lo tanto, añadir pequeñas cantidades de azul tripán en solución de HCl 2 N para ser utilizado durante el experimento, lo suficiente como para darle un color azul pálido. Esto le ayudará a distinguir las dos fases. La fase inferior será azul y la fase etérea superior será incoloro. Transferir la fase etérea incoloro superior a un tubo nuevo y desechar la fase inferior HCl (azul).
  11. Repita el paso 10 de dosmás veces para lavar la fase etérea con HCl 2 N. Transferir sólo la fase de éter arriba a un nuevo tubo durante cada repetición y desechar la fase inferior HCl.
  12. Después del tercer lavado con HCl, transferir la fase superior con 1 ml de la pipeta a un vial de centelleo. Secar las muestras por evaporación del éter dietílico, manteniendo las muestras en la campana química O / N.

3. Medición de la radiactividad

  1. Al día siguiente, añadir 5 ml de líquido de centelleo de las muestras secas desde el paso 2.12.
  2. Agitar bien para mezclar. Medir la radiactividad usando un contador de centelleo.

4. Cálculos

  1. Lisar las células del paso 2.6 utilizando la misma cantidad de tampón CelLytic M (ver Lista de Materiales) y centrifugado a 14.000 xg durante 5 min a 4 ° C.
  2. Tomar una alícuota del sobrenadante y medir la concentración de proteínas utilizando el kit de ensayo de proteína BCA.
    La cantidad total de proteína en mg (TP) = (90 * l conc. De proteína en81; g / l) / 1000
    Nivel de síntesis del grupo hemo (radiactividad / TP) = pmol / mg de proteína.

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Representative Results

Este método se utilizó para comparar los niveles de síntesis de hemo en normal (HBEC30KT) vs. cáncer (HCC4017 células pulmonares). La Figura 2 muestra un nivel más alto de la síntesis de hemo en células de cáncer (HCC4017) que las células pulmonares normales (HBEC30KT). El nivel de la síntesis de hemo también se midió en células normales y cancerosas en la presencia de cianuro de carbonilo desacoplador mitocondrial 3-clorofenilhidrazona (CCCP). Las células fueron tratadas con CCCP 10 mM durante 24 horas antes de la medición de los niveles de síntesis del grupo hemo. Como era de esperar, los niveles de síntesis de hemo (Figura 2) se redujo en presencia de CCCP tanto en las células normales y cancerosas. Se ha demostrado previamente que la síntesis de heme puede ser inhibida por acetona succinil (SA), un inhibidor potente y específico de deshidratasa ácido 5-aminolevulínico (ALAD) que es la segunda enzima en heme ruta biosintética 41. Usando este método, se midieron los niveles de síntesis del grupo hemo en células HeLa en presencia y abscia de 0,5 mM SA. La Figura 3 muestra que los niveles de síntesis del grupo hemo se redujo en más de 10 pliegues en presencia de SA. Para demostrar aún más el uso de esta técnica, se midieron y se compararon en 4 cáncer y en líneas de células HEK293T tal como se muestra en la Figura 4 los niveles de síntesis de hemo.

Figura 1
Figura 1. La biosíntesis del hemo vía en humanos ALAS, 5-aminolevulínico sintasa de ácidos.; 5-ALA, el ácido 5-aminolevulínico; ALAD, ALA deshidratasa; PBG, porfobilinógeno; HMBS, sintasa hidroximetilbilano; HMB, hidroximetilbilano; UROS, uroporfirinógeno III sintasa; UPgenIII, uroporfirinógeno III; UROD, uroporfirinógeno descarboxilasa; CPgenIII, coproporfirinógeno III; CPOX, coproporfirinógeno III oxidasa; PPgenIX, protoporfirinógeno IX; PPOX, protoporfirinógeno IX oxidasa; PPIX, protoporfirina IX; FECH, Ferroquelatasa. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2
Figura 2. Los niveles de la biosíntesis del grupo hemo en normal (HBEC30KT) y el cáncer (HCC4017) líneas celulares, en ausencia y presencia de 10 mM CCCP desacoplador mitocondrial. El nivel de fondo fue similar al nivel de la muestra en blanco (líquido de centelleo sola) y se fue inferior al 2% del control. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3
Figura 3. Niveles de la biosíntesis del grupo hemo en células HeLa en absENCE y la presencia de 0,5 mM de inhibidor de la síntesis del grupo hemo succinil acetona (SA). Las células fueron tratadas con SA durante 3 días antes de la medición hemo. El nivel de fondo fue similar al nivel de la muestra en blanco (líquido de centelleo solo) y fue inferior al 2% del control. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4
Figura 4. Comparación de los niveles de biosíntesis de hemo en 4 cancerosas y líneas de células HEK293T. El ensayo se realizó según el protocolo. HCC4017 se cultivaron en ACL4 medios de comunicación, A549 y H1395 en RPMI1640 suplementado con 5% de FBS, HEK293T y HeLa en DMEM suplementado con 10% FBS. Para el análisis estadístico, los niveles de síntesis de hemo en las células cancerosas y las células HEK293T fueron comparados con el nivel de la síntesis de hemo en HCC4017 células, mediante el uso de Welch 2 muestra de t-test. **, P valor <0,005. El nivel de fondo fue similar al nivel de la muestra en blanco (líquido de centelleo solo) y fue inferior al 2% del control. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Discussion

Heme juega un papel clave en la generación de energía celular a través de la respiración 26. El metabolismo del hemo Altered se sabe que está asociado con varias enfermedades, incluyendo el cáncer 28,41. La inhibición de la síntesis del grupo hemo se sabe que causa la detención del ciclo celular y la apoptosis en células HeLa 26,41. Se ha demostrado que el nivel de la síntesis de hemo alta se asocia con la progresión de las células de cáncer de pulmón 28. Por lo tanto, sería de gran importancia para medir los niveles de biosíntesis de hemo en células bajo diferentes condiciones. El método descrito aquí no cuantificar la cantidad total de hemo, por lo tanto, no proporciona el valor absoluto de hemo presente en las células. Hay una variedad de métodos colorimétricos y kits disponibles para medir las cantidades totales de hemo en las células. Por ejemplo, heme puede ser extraído de las células y las mitocondrias en una mezcla de acetona y HCl y se mezcla con 50% (v / v) de acetonitrilo. Después, la mezcla se puede aplicara una columna C18 Bondclone 3,9 x 300 mm, seguido de elución de hemo en un gradiente de acetonitrilo que contiene 0,05% (v / v) de ácido trifluoroacético y la identificación de compuestos hemo a 400 nm 44,45.

Anteriormente, para medir los niveles de la biosíntesis de hemo en los tejidos de mamíferos y extractos de células [14 C] glicina y [14 C] 5- ALA se utilizaron 46,47. Aunque glicina etiquetado entra en la ruta de biosíntesis de hemo en el primer paso, pero se drena por otras vías metabólicas que resultan en su limitada incorporación en hemo. La glicina no es un metabolito específico para ruta de biosíntesis de hemo 48. Por otro lado, la etiqueta 5-ALA es específico de ruta de biosíntesis de hemo. Esta característica confiere una ventaja cuantitativa de la utilización de 5-ALA sobre glicina 46,48,49. Por lo tanto, el uso de radiactivo 5-ALA es un método más específico y preciso para medir y comparar los niveles de la biosíntesis del grupo hemo.

Las mayoría de las critical pasos para obtener resultados consistentes son: 1) asegúrese de que la confluencia de células no subir más de un 100% y no por debajo de 70% a través de diversas condiciones; 2) la cantidad de radiactividad añadida por placa debe ser idéntica ya que este método es muy sensible; 3) tampón de extracción hemo no debe ser viejo, se recomienda hacer fresco cada vez. El volumen de radiactividad requerida por placa es muy pequeño y es difícil mantener las cantidades idénticas a través de las muestras. Por lo tanto, se recomienda para hacer una solución madre de trabajo en el medio de cultivo, si se utiliza el mismo medio para todas las muestras, los demás PBS (tampón fosfato salino) se puede utilizar. Trabajando solución madre se puede preparar de una manera tal que el volumen dispensado por placa está bajo 10 l. Además, para ser más exactos, el medio de las muestras idénticas para una condición se puede sacar en un tubo de 50 ml y las cantidades apropiadas de radiactividad puede ser añadido de la solución madre de trabajo, entonces prescindir de vuelta de correoQual cantidades de medio a las placas. Si el número de células están limitados, tales como en cultivos primarios, de 12 pocillos o placas de 24 pocillos se pueden utilizar para cultivar las células y reducen la cantidad de radiactividad añadida por pocillo proporcionalmente.

Este protocolo es sencillo, simple, y proporciona medidas precisas de los niveles de síntesis de hemo. A veces, puede ser difícil para volver a suspender el sedimento celular en el tampón de extracción hemo (paso 2.8) completamente. Para evitar que esto sea rápido en el paso 2.8, añadir tampón de extracción hemo de 1-2 muestras a la vez, vórtice y ponerlos en hielo. Asegúrese de que el tampón de extracción hemo no es demasiado viejo. Si la desviación estándar entre las muestras replicadas es demasiado alto, prestar atención a los siguientes pasos: 1) PBS se eliminó por completo en el paso 2.7; 2) evitar derramar la muestra cuando se encuentra en fase de éter dietílico, siga la punta en el paso 2.9; 3) asegurarse de que la radiactividad añadido por placa y la confluencia de las muestras repetidas eran los mismos.

28 en condiciones normales no maligno (HBEC) vs. cáncer de células (HCC), desarrollados a partir de la misma paciente. La técnica descrita aquí requiere el uso de [14 C] 5-ALA, un precursor en la biosíntesis de hemo vía (Figura 1), y mide la radiactividad incorporada en hemo. En esta técnica, las porfirinas, incluyendo hemo, se extrajeron de las células en una mezcla de acetona, HCl concentrado y 50,51 de agua. El hemo se separó más lejos de porfirinas mediante la extracción en éter dietílico y el lavado de la fase de éter con HCl 2 N 50,51. Entonces, la radiactividad incorporada en heme se determinó usando un contador de centelleo. Los resultados pueden ser normalizados por la cantidad total de proteína o el número de células. Síntesis del grupo hemo en células HeLa fue inhibida mediante el uso de acetona succinil (SA) y una disminución en el nivel de la síntesis de hemo se observó como se muestra preriormente 26 (Figura 3).

Este método es muy útil para la comparación de los niveles de síntesis de hemo en diferentes condiciones o entre las líneas celulares (Figura 4). Se requiere un pequeño número de células y proporciona una medición y comparación de los niveles de síntesis de hemo en diferentes células específico. No se pretende para la medición precisa de los niveles absolutos hemo en las células. Es mejor se utiliza para comparar los niveles de síntesis de hemo en células con diferentes propiedades, tales como diferentes células cancerosas. Debido a que el cobalto, en lugar de hierro, se puede incorporar en hemo en el último paso de la síntesis de hemo y se extrajo 51, este método no puede rendir comparación precisa de la síntesis de hemo, si los medios de crecimiento contienen diferentes niveles de cobalto o de otros iones metálicos. No obstante, la vía de síntesis de hemo a partir de ácido 5-aminolevulínico a porfirinas y heme es muy específica, la medición de los niveles de flujo de todo el pathway es probable que sea más reflexivo de las actividades metabólicas pertinentes a hemo, independientemente de los iones metálicos. En contraste, el método que utiliza 59 Fe detecta sólo la parte de la vía de la incorporación de Fe para formar hemo 52. Aunque esto es más específico, en presencia de niveles significativos de iones metálicos, los niveles de síntesis de hemo detectado puede no reflejar el potencial metabólico de ciertas células como las células cancerosas. Por otra parte, Fe puede ser secuestrado en otras localizaciones celulares junto mitocondrias para hacer heme. En general, creemos que el uso de [4- 14 C] 5-ALA es un método más práctico para la medición de los niveles de hemo cuando se comparan diferentes células con diferentes propiedades.

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Disclosures

No tenemos nada que revelar.

Acknowledgments

Las líneas de células HCC4017 y HBEC30KT fueron amablemente proporcionados por el laboratorio del Dr. John Minna. Este trabajo fue apoyado por los fondos de Cecil H. e Ida verdes al Dr. Li Zhang.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Acetone Sigma 650501
Diethy ether Sigma 296082
HCl (Hydrochloric acid) Fisher A481-212
Liquid Scintillation cocktail  MP Biomedicals 882470
Trypan blue Gibco 15250
Radiolabeled 4-14C aminolevulinic acid Perkin-Elmer life sciences Store at -80 °C
CelLytic M Sigma C2978 Mammalian cell lysis reagent
Pierce BCA Protein Assay Kit  Thermo Scientific 23227
Specific reagent Component Dispense
Heme extraction buffer:
Acetone:HCl:Water (25:1.3:5)
Acetone
Concentrated HCl
Water
25 ml
1.3 ml
5 ml

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References

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Comments

1 Comment

  1. Could you please share where did you get the 14C-ALA?
    thanks a lot

    Reply
    Posted by: abel g.
    February 24, 2018 - 5:52 PM

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